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Microscopie à fluorescence des pièges extracellulaires neutrophiles ou TNE : une technique pour observer l’interaction adhésive entre les cellules cancéreuses et les TNE

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30 avril 2023

Dans cet article

Résumé

Source : Kanamaru, R. et al. Pièges extracellulaires à neutrophiles générés par des neutrophiles de faible densité obtenus à partir d’un liquide de lavage péritonéal médient la croissance et l’attachement des cellules tumorales. J. Vis. Exp. (2018)

Cette vidéo montre la coloration fluorescente des pièges extracellulaires des neutrophiles, les composants extracellulaires de l’ADN expulsés par les neutrophiles. Cette technique permet de visualiser l’interaction adhésive entre les cellules cancéreuses et les TNE.

Protocole

1. Coloration des cellules tumorales avec un colorant de liaison de cellules fluorescentes rouges

  1. Préparez les lignées cellulaires cancéreuses humaines MKN45, NUGC et OCUM-1.
  2. Laver 1 x 107 cellules avec du PBS + 0,02 % d’EDTA dans un tube de 15 mL et centrifuger à 270 x g pendant 7 min à RT.
  3. Ajouter 1 mL de solution pour coloration aux pastilles et pipeter doucement.
  4. Dissoudre 4 μL de colorant Red Fluorescent Cell Linker dans 1 mL de solution pour coloration et mélanger avec la suspension cellulaire de l’étape 1.2.
  5. Incuber les granulés pendant 4 min à RT.
  6. Ajouter 4 ml de DMEM (10 % FBS) pour arrêter la réaction de coloration.
  7. Centrifuger 270 x g pendant 7 min et jeter le surnageant.
  8. Répétez deux fois les étapes 1.6 et 1.7.
  9. Vérifiez au microscope à fluorescence (excitation = 551 nm, émission = 567 nm) que les cellules tumorales sont colorées en rouge.

2. Analyse de l’adhésion des cellules tumorales aux TNE

  1. Cultiver des cellules neutrophiles de faible densité dans une plaque enrobée de poly-L-lysine à 6 puits (6 cm de diamètre) pendant 2 h à 37 °C dans 5 % de CO2, ce qui permet la production de pièges extracellulaires de neutrophiles ou TNE
  2. Transférez les cellules tumorales colorées par fluorescence rouge (1 x 106) dans 1 mL de RPMI 1640 complété par 0,1 % de BSA.
  3. Ajoutez les cellules tumorales à la culture de LDN qui a produit les TNE.
  4. Incuber pendant 5 min à 37 °C, ce qui permet aux cellules tumorales de contacter les TNE.
    note: Une longue incubation induit l’adhésion des cellules tumorales à la LDN ou aux plaques.
  5. Retirez le milieu et lavez délicatement les puits en ajoutant 2 ml de milieu préchauffé (0,1 % BSA + RPMI 1640) et en remuant le plat.
  6. Répétez deux fois la procédure de lavage à l’étape 2.5.
    note: Étant donné que les TNE se fixent faiblement à la plaque, le lavage doit être effectué aussi doucement que possible pour éviter de retirer les TNE elles-mêmes.
  7. Ajouter un colorant fluorescent vert pour colorer le noyau et les chromosomes à une concentration finale de 5 μg/mL pour visualiser les TNE.
  8. Observez les TNE et les cellules tumorales attachées à l’aide des filtres appropriés (vert, excitation = 504 nm, émission = 523 nm ; rouge, excitation = 551 nm, émission = 567 nm).
  9. Fusionnez les figures pour montrer les cellules tumorales qui sont piégées par les TNE.
    note: Dans certaines expériences, l’enzyme de dégradation de l’ADN a été ajoutée à la culture de LDN (concentration finale de 100 U/mL) 5 min avant la co-incubation pendant 5 min.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Coloration d’acide nucléique vert SYTOX 5 mM solution dans du DMSO Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, États-Unis Réf. S7020
PKH26 Kit de liaison cellulaire fluorescent rouge pour le marquage général de la membrane cellulaire Sigma-Aldrich, St Louis, MO, États-UnisRéf. P9691
RPMI1640 Moyen Sigma-Aldrich, St Louis, MO, États-UnisR8758
Poudre lyophilisée d’albumine sérique bovine, ≥96 % (électrophorèse sur gel d’agarose) Sigma-Aldrich, St Louis, MO, États-Unis A2153
MICROPLAQUE enrobée de poly-L-lysine 6Well IWAKI, Japon Référence 4810-040
Stéréomicroscope à fluorescéine BX8000, Keyence, Osaka Japon BZ-X710
Lignée cellulaire du cancer gastrique humain MKN45 Riken, Tukuba Japon n/a
Lignée cellulaire du cancer gastrique humain NUGC-4 Riken, Tukuba Japon n/a
Lignée cellulaire du cancer gastrique humain OCUM-1 Université de la ville d’Osaka, Japon n/a Don du Dr M. Yashiro
DNase I Worthington, Lakewood NJLS002138
Solution 0,5 mol/l-EDTA (pH 8,0) Nacalai tesque, Japon Référence 06894-14
Eagle modifié de Dulbecco à teneur moyenne-élevée en glucose (DMEM) Sigma-Aldrich, St Louis, MO, États-Unis D5796

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Mots-clés

Formation de NETAdh sion des cellules canc reusesNeutrophiles faible densitMarquage fluorescentInteraction entre cellules tumoralesRev tement la poly L lysineMilieu RPMI 1640Colorant imperm able la membrane

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