Article de méthode

Immunomarquage à l’or des coupes exosomiques : une technique pour visualiser les marqueurs diagnostiques dans la lumière exosomale

30 avril 2023

Dans cet article

Résumé

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Source : Jung, M. K., Mun, J. Y. Préparation d’échantillons et imagerie d’exosomes par microscopie électronique à transmission. J. Vis. Exp. (2018)

Dans cette vidéo, nous démontrons l’immunocoloration à l’or de biomarqueurs localisés dans la région de la lumière de coupes exosomiques ultraminces. Cette technique permet un diagnostic précoce des maladies par visualisation des molécules cibles dans les exosomes sécrétés par les cellules malades.

Protocole

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1. Immuno-coloration de coupes d’exosomes et imagerie

  1. Préparez des coupes ultraminces de 60 nm d’un bloc d’exosomes à l’aide d’un ultra-microtome et collectez-les sur une grille de nickel.
  2. Incuber les grilles dans des gouttes de 50 μL de glycine 0,02 M pendant 10 min pour tremper les groupes aldéhydes libres.
  3. Rincer dans 100 μL de DW trois fois chacune pendant 10 min. Incuber à température ambiante pendant 1 h dans du PBS contenant 1 % de BSA.
  4. Incuber les grilles dans des gouttes de 50 à 100 μL d’anticorps anti-KRS (1:100 dans du PBS contenant 0,1 % de BSA) pendant 1 h (si nécessaire, cette étape doit être effectuée à 4 °C pendant la nuit.)
  5. Lavez les grilles avec cinq gouttes distinctes (50 μL) de PBS contenant 0,1 % de BSA pendant 10 minutes chacune.
  6. Transférez les grilles dans des gouttes d’anticorps secondaires pendant 1 h (IgG anti-lapin conjuguées à une particule d’or de 10 nm (1:100) dans du PBS contenant 0,1 % de BSA).
  7. Lavez les grilles avec cinq gouttes distinctes (50 μL) de PBS contenant 0,1 % de BSA toutes les 10 min.
  8. Colorer deux fois avec de l'acétate d'uranyle à 2 % pendant 20 min dans l'obscurité et avec du citrate de plomb de Reynolds pendant 10 min, respectivement.
  9. Observez les grilles sous microscopie électronique à transmission à 80 kV.
  10. Cliquez sur « Acquérir », puis sur « Fichier » et « Enregistrer sous » dans le système de caméra CCD sous le TEM à 80 kV. Le temps d’exposition suivait les réglages automatiques.

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Déclarations de divulgation

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Acétate d’uranyle Ems Référence 22400Produit chimique dangereux
Citrate de plomb Ems N° 17900
Microscopie électronique à transmission Hitachi N° H7600
Grille en cuivre Ems G200-Cu
glycine sigma Référence 022K5404
Tampon phosphate salin sigma Réf. P4417
Albumine sérique bovine Aurion Référence 25557
Anticorps anti-humain CD274 purifié (B7-H1,-L1)BioLégende Référence 329710Mont entier Immumogold
Souris purifiée IgG2b, κ Isotype Ctrl BioLégende401202Monture entière Immumogold (Contrôle)
2ème particule d’or conjuguée 9-11 nm IgG anti-souris sigma G7652
paraformaldéhyde Ems19210

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Mots-clés

Exosome ImmunostainingGold Nanoparticle LabelingTransmission Electron MicroscopyExosome Section PreparationPrimary Antibody IncubationSecondary Antibody BindingGlycine QuenchingBlocking Buffer TreatmentUranyl Acetate StainingLead Citrate Contrast

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