Article de méthode

Purification de noyaux par centrifugation en gradient : une technique pour obtenir une fraction ultrapure de noyaux intacts à l’aide de la centrifugation par gradient de densité

30 avril 2023

Dans cet article

Résumé

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Source : Narayanan, A. et al. Nuclei Isolation from Fresh Frozen Brain Tumors for Single-Nucleus RNA-seq et ATAC-seq. J. Vis. Exp. (2020)

Dans cette vidéo, nous décrivons un protocole simple et efficace utilisant la centrifugation par gradient pour isoler des noyaux uniques. Une fois isolés, ces noyaux peuvent être utilisés pour le séquençage et l’analyse du génome.

Protocole

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1. Centrifugation par gradient

  1. Ajouter 200 μL de solution d’iodixanol à 50 % (tableau 1) pour obtenir une concentration finale d’iodixanol à 25 %. Bien mélanger 10 fois avec une pipette posée sur 300 mL.
  2. Ajouter 300 μL de solution d’iodixanol à 29 % (tableau 2) sous le mélange à 25 %. Utilisez une pointe fine P1000 pour éviter le mélange des couches.
  3. Ajouter 300 μl de solution d’iodixanol à 35 % (tableau 3) sous le mélange à 29 %. Utilisez une pointe fine P1000 pour éviter le mélange des couches.
    prudence: Cette étape nécessite un retrait progressif de la pointe de la pipette pendant le pipetage afin d’éviter un déplacement de volume excessif.
  4. Placez les échantillons dans une centrifugeuse à godets oscillants, faites tourner pendant 20 min à 3 500 x g à 4 °C avec le frein desserré.
  5. Prélever délicatement les échantillons sans les secouer et observer à la lumière. Une bande blanche claire de noyaux purs à 95 % doit être visible entre la deuxième et la troisième couche (Figure 1).

2. Isolement des noyaux

  1. Aspirez les couches supérieures jusqu’à ce que les noyaux blancs se forment à l’interphase de 29 % à 35 %.
  2. Prélever la bande des noyaux dans un volume de 200 ml, transférer dans un tube frais et filtrer avec un filtre de 20 μm (Table des matériaux).
    note: Les noyaux n’ont pas besoin d’être remis en suspension avant la filtration.
  3. Vérifier au microscope optique l’enlèvement des gros débris et l’intégrité de la membrane nucléaire. Les noyaux doivent être ronds et la membrane nucléaire ne doit pas être déformée.
  4. Compter les noyaux à l’aide de la coloration au bleu de trypan sur un hémocytomètre et des noyaux aliquotes pour le snRNA-seq/snATAC-seq.

Tableau 1 : Préparation du Master Mix stable de tampon d’homogénéisation 6x

stable finale
6x Tampon d’homogénéisation Master Mix
RéactifConc.Vol pour 100 (mL)
1 M CaCl₂30 millions d’euros3,0
1 M Mg(Ac)₂18 millions d’années1.8
1 M Tris pH 7,860 millions de mètres6,0
H₂O89,2
Conserver à température ambiante, éviter l’exposition directe à la lumière

Tableau 2 : Préparation de 1 M de saccharose

1 M de saccharose
34,23 g de saccharose
Dissoudre dans 78,5 mL d’eau
Remplissez jusqu’à 100 ml d’eau

Tableau 3 : Préparation d’une solution instable de tampon d’homogénéisation 6x (650 μL par échantillon)

finale
6x Tampon d’homogénéisation Solution instable (650 mL par échantillon)
RéactifConc.Vol par échantillon (μL)
6x tampon d’homogénéisation stable6 fois648,84
100 mM PMSF (fluorure de phénylméthylsulfonyle)0,1 million d’euros1,08
14,3 M β-mercaptoéthanol1 million d’euros0,08

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Résultats

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figure-results-1
Figure 1 : Organigramme pour l’isolement des noyaux. L’organigramme donne un bref aperçu des étapes de l’isolement de noyaux uniques à partir d’un tissu de gliome fraîchement congelé. Des images représentatives de l’échantillon de tumeur et de la bande nucléaire après le gradient iodixanol/saccharose (entouré d’une ligne pointillée rouge) sont présentées.

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Déclarations de divulgation

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
EDTA (0,5 M)Thermo ScientificRéf. R1021
Falcon 15 mL Centrifugeuse conique
Tubes
Fisher Scientific352096
Iodixanol (alias Optiprep)Technologies des cellules souchesRéférence 07820
NP-40AbcamAB142227
Tubes de verrouillage de sécurité 1,5 mLEppendorf0030120086
Tubes de sécurité 2,0 mLEppendorf0030120094
saccharosesigmaS0389
Pointes de pipette à alésage large (1000 μL)Themo Fisher Scientific2079GPK
Pointes de pipette à alésage large (200 μL)Themo Fisher Scientific2069GPK

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Mots-clés

Isolation des noyauxSolution d iodixanolMicroscopie optiqueMembrane nucl airelimination des d brisNoyau uniqueTumeurs c r brales

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