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Article de méthode

Surveillance multisystémique d’anomalies épileptiques chez le lapin : méthode d’enregistrement simultané de l’EEG, de l’ECG, de la canographie et de l’oxymétrie pendant les crises induites

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Bosinski, C., et al. Surveillance multi-systèmes pour l’identification des convulsions, des arythmies et de l’apnée chez les lapins conscients maîtrisés. J. Vis. Exp. (2021).

Dans cette vidéo, nous démontrons une méthode de surveillance multisystème pour évaluer les anomalies neurologiques et cardiorespiratoires lors de l’injection intraveineuse d’un médicament provoquant des crises. La surveillance simultanée des paramètres vidéo EEG, ECG, oxymétrie et capnographie permet de comprendre les changements physiologiques en temps réel associés aux crises d’épilepsie.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Pour permettre aux lapins de s’acclimater dans les dispositifs de contention et pour que l’enquêteur puisse confirmer objectivement la stabilisation des fréquences cardiorespiratoires, instrumentez tous les lapins avec les capteurs cardiorespiratoires et neuronaux et effectuez une surveillance vidéo continue pendant > 1 heure, 1 à 3 fois par animal.

2. Expérience de médication intraveineuse (Pentylènetétrazol, PTZ)

  1. Pour visualiser la veine marginale de l'oreille, rasez la surface postérieure de l'oreille du lapin. Utilisez une lingette à l’éthanol à 70 % pour désinfecter le site et dilater la veine marginale de l’oreille. Ceci est indiqué par l’ovale pointillé noir de la figure 1F.
  2. À ce stade, demandez à un expérimentateur de couvrir le visage du lapin avec sa main pour réduire le stress de la procédure pour le lapin. Un deuxième expérimentateur canule soigneusement la veine marginale de l’oreille à l’aide d’un angiocathéter stérile de 25 G.
  3. Une fois le cathéter dans la veine, placez un bouchon d’injection stérile à l’extrémité du cathéter afin qu’une aiguille puisse introduire le médicament par voie intraveineuse. L’emplacement du bouchon d’injection est indiqué par un cercle bleu sur la figure 1G.
  4. Fabriquez une attelle en enveloppant une gaze de 4 x 4 pouces avec du ruban adhésif afin qu'elle forme un tube et en la plaçant à l'intérieur de l'oreille du lapin. Ensuite, collez l’attelle sur l’oreille de manière à ce que le cathéter soit fixé en place et reste droit, comme l’oreille non cathétérisée.
  5. Injecter 1 mL de 10 unités USP par mL de solution saline héparinisée.
    note: Le cathéter et le vaisseau doivent être visiblement débarrassés de l’air et rester perméables. Si le cathéter n’est pas dans le vaisseau, la seringue ne poussera pas facilement et il y aura une accumulation de solution saline dans le tissu sous-cutané.
  6. Donnez aux lapins des doses progressives de PTZ par voie intraveineuse de 1 mg/kg à 10 mg/kg par incréments de 1 mg/kg toutes les 10 min. Notez au début de chaque dose l’animal qui reçoit l’injection et la concentration du médicament.
    note: Cela permet d’évaluer les effets aigus et additifs de l’administration de PTZ. Alternativement, pour évaluer davantage les effets chroniques du PTZ à faible dose, le lapin reçoit des doses répétées à chaque concentration à faible dose, 7 doses à 2 mg/kg, 3 doses à 5 mg/kg, puis 3 doses à 10 mg/kg, chaque dose est séparée de 10 min.
  7. Après chaque dose, surveiller attentivement la vidéo-EEG-ECG-capnographie-oxymétrie pour détecter toute anomalie neurocardiaque, électrique et respiratoire et des signes visuels d’activité épileptiforme. Notez ces changements en temps réel et lors de la post-analyse.
    note: L’activité convulsive commence souvent dans les 60 secondes suivant l’administration du PTZ.

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Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Lapin connecté à l’équipement.(A) L’emplacement des électrodes ECG, le bras gauche est indiqué par un point jaune. Le bras droit est indiqué par un point blanc. La jambe gauche est indiquée par un point rouge. Le sol antérieur à la jambe droite est indiqué par un point vert. (B) Lapin en contention avec électrodes ECG et EEG attachées. (C

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Irrigation au chlorure de sodium à 0,9 %, USP - Conteneur flexiblePFIZER (HOSPIRA)Référence 7983-09Diluant
Seringue Luer Lock 10cc avec aiguille 20G x 1"Sur-VetSS-10L2025Utilisé comme chasse d’eau après l’injection de médicament
Éponges de gaze 4x4Fisher ScientificTél. : 22-415-469Roulé dans un tube pour attelle d’oreille avec angiocathéter
ordinateurvallonOrdinateur Optiplex 5040Ordinateur d’acquisition
Électrode ECGLien RythmiqueRLSND116-2,5Électrodes sous-cutanées de 13 mm pliées à 35 degrés (0,4 mm de diamètre)
Électrode EEGLien RythmiqueRLSP513Électrodes sous-cutanées droites à 5 torsions de 13 mm (0,4 mm de diamètre)
EEGLAB (2020)Centre Swartz pour les neurosciences computationnellesLibre accèsPeut effectuer une analyse spectrale de l’EEG
Adaptateur Ethernet vers EthernetLinksysUSB3G16Adaptateur pour connecter l’appareil photo à l’ordinateur
Héparine Lock FlushMedlineEMZ50051240Pour maintenir la perméabilité de l’angiocathéter
Lumière IRBoschEX12LED-3BD-8WFacilite les enregistrements dans l’obscurité
LabChart Pro (2019, version 8.1.16)ADInstrumentsn/aAnalyse ECG
JELCO PROTECTIV Cathéters de sécurité I.V., calibre 25Smiths Medical3060Utilisé pour cathéter la veine marginale de l’oreille
MATLAB (R2019b, mise à jour 5)MathWorksn/aRequis pour exécuter EEGLAB
microphoneStéréo SonyECM-D570PEnregistrement des manifestations audibles des crises
Ruban médical Micropore, papier, blanc3mN° 1530-1Utilisé pour sécuriser les fils et créer une attelle d’oreille
Natus NeuroWorksNatusRéférence LC101-8Logiciel d’acquisition et d’examen
Pentylènetétrazol (1 à 10 mg/kg, toujours dans un volume de 1 ml)Sigma-AldrichRéférence 88580Dilutions préparées dans une solution saline
Amplificateur quantiqueNatusRéférence 13926Amplificateur / numériseur
Amplificateur Quantum HeadBoxNatusRéférence 22134Boîte de dérivation à 64 broches
Contention pour lapinPlas-Labs501-TCDes contentions pour lapins de différentes tailles sont disponibles. 6 » x 18 » x 6 » dans cette étude.
Clip d’oreille SpO2NONINRéférence 61000PureSAT/SpO2
Adaptateur de capteur SpO2NONINRéférence 13931XPOD PureSAT/SpO2
Caméra PTZ 1080p SRG-X120 avec sortie HDMI, IP et 3G-SDISonySRG-X120Caméra Impela
Terumo Sur-Vet Seringue à tuberculine 1cc 25G x 5/8" Luer régulierSur-VetRéférence 13882Utilisé pour injecter des médicaments par voie intraveineuse
Bouchon d’injection vétérinaire Luer LockSur-VetSRIP2VBouchon d’injection pour l’insertion de l’aiguille pour la médication intraveineuse
Webcol Préparation à l’alcool, stérile, grand, 2 plisCovidienRéférence 5110Pour préparer la veine de l’oreille avant le cathétérisme

Mots-clés

Enregistrement EEG vid osurveillance ECGanalyse de la capnographiemesure de l oxym trieinduction de crisesmod le lapininjection intraveineuseanomalies neurocardiaquesparam tres respiratoires