Élimination de la membrane nictitante : une intervention chirurgicale pour enlever la membrane nictitante de l’œil de lapin

Résumé

Source : Honkanen, R. A., et al. Établissement d’un modèle de sécheresse oculaire sévère à l’aide de la dacryoadénectomie complète chez le lapin. J. Vis. Exp. (2020).

Dans cette vidéo, nous démontrons une intervention chirurgicale pour enlever la membrane nictitante de l’œil de lapin.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Retrait de la membrane nictitante

REMARQUE : Pour simplifier, la technique de l’œil droit est décrite ci-dessous. Effectuez cette procédure sur l’œil gauche de la même manière. Retirez la membrane nictitante bilatéralement pendant la période d’acclimatation (généralement la première semaine).

1. Placez le lapin dans un sac de contention de taille appropriée.
2. Administrer une injection sous-cutanée d’acépromazine (1 mg/kg) sur les épaules à l’aide d’une seringue de 1 cc et d’une aiguille de 26 g pour endormir le lapin. Le point final de cette sédation légère est lorsque l’animal maintient une position de tête détendue sans mouvements de balayage normaux et que ses oreilles ne sont plus complètement droites.
3. À l’aide d’une micropipette, appliquez 25 μL de lidocaïne sans conservateur (1 %) sur l’œil. Insérez un spéculum de couvercle métallique entre les paupières.
4. Saisissez la membrane nictitante à son sommet avec une pince de 0,3 (ou équivalent) et tirez-la sur la surface cornéenne. Injectez 1 % de lidocaïne avec 1:100 000 d’épinéphrine dans l’espace sous-conjonctival de la membrane nictitante à l’aide d’une aiguille de 26 G. Injectez environ 0,3 mL pour former une bulle de taille modeste sur la membrane nictitante. Les volumes d’injection supérieurs à 1 mL se situent bien dans la plage de doses sûres pour les lapins (2 à 4 mg/kg).
5. Retirez le spéculum métallique. Attendez environ 5 minutes pour que la lidocaïne et l’épinéphrine fassent effet. Pendant ce temps, effectuez la même procédure dans l’autre œil.
6. Replacez le spéculum du couvercle métallique. Saisissez et étendez la membrane nictitante sur la surface de la cornée à l’aide d’une pince de 0,3. Coupez la membrane à sa base avec des ciseaux à ténotomie ou équivalent.
   note: La purge est généralement minime, mais gardez une unité de cautérisation à batterie à haute température à proximité et utilisez-la au besoin pour minimiser les saignements. Une pression directe sur la base coupée de la membrane nictitante peut également être utilisée pour arrêter les petits saignements s’ils se produisent.
7. Retirez le spéculum du couvercle métallique. Placez une pommade antibiotique topique (néomycine, polymyxine, bacitracine et hydrocortisone) sur la surface de la cornée.
8. Effectuez une procédure identique à celle de l’autre œil, comme indiqué par le protocole.
9. Replacez les animaux dans des cages individuelles et laissez-les cicatriser pendant au moins une semaine, ou jusqu’à ce que la surface conjonctivale soit complètement cicatrisée d’un point de vue clinique, avant d’effectuer d’autres tests ou interventions.
   note: La guérison clinique complète est indiquée par l’absence de gonflement, d’injection ou d’écoulement des surfaces conjonctivales. Les animaux doivent garder les yeux ouverts normalement, sans la présence d’une ptose protectrice.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
acépromazine, Aceproinj	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	NDC11695-0079-8	0,1 ml/kg d’injection sous-cutanée pour la sédation du lapin
sac de contention pour animaux	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	Jorvet J0170	Utilisez un sac de taille appropriée.
unité de cautérisation, haute température, alimentée par batterie	Medline Industries Inc, Northfield, IL	RÉF ESCT001	Garder à portée de main en cas de saignement, protocole 2.7
pinces, 0,3	Bausch et Lomb (Storz), Bridgewater, NJ	ET6319	Pour l’ablation de la membrane nictante, protocole 2.5
couvercle spéculum, fil	Bausch et Lomb (Storz), Bridgewater, NJ	Barraquer SUH01	Pour l’élimination de la membrane nictante, protocole 2.4
lidocaïne 2 % avec épinéphrine 1:100 000 ; mélange 50:50	Hospira Inc, Lake Forest IL	NDC 0409-3182-02	Prétraitement avant l’ablation des membranes nictitaneuses, protocole 2.4
Lidocaïne, sans conservateur	Sigma-Aldrich, Saint-Louis, Missouri	L5647	1 % dans le PBS pour l’agent anesthésique, pour l’application à l’œil, protocole 2.4
Micropipette	Eppendorf	Recherche Plus 100 uL	Pour l’application de lidocaïne sans conservateur sur les yeux, protocole 2.4
pointes de micropipette	Produits médicaux dans le monde entier	41071052	Pour l’application de lidocaïne sans conservateur sur les yeux, protocole 2.4
Aiguille, calibre 26	BD, Franklin Lakes, NJ	RÉF 305115	Pour l’injection de lidocaïne/épinéphrine, protocoles 2.3 et 2.5
lapin, Nouvelle-Zélande Blanc	Charles River Labs, Waltham, MA (NZW)	2-3 kg	Animaux de recherche
ciseaux, ténotomie de Westcott	McKesson Médico-Chirurgical, San Francisco, Californie	Miltex 18-1480	Pour l’ablation de la membrane nictante, protocole 2.7
Seringue, 1 cc	BD, Franklin Lakes, NJ	Réf 309659	Pour l’injection de lidocaïne/épinéphrine, protocoles 2.3 et 2.5