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Article de méthode

Élimination de la glande lacrymale supérieure : une technique chirurgicale pour enlever les parties palpébrale et orbitale de la glande lacrymale supérieure du modèle de lapin

4.6K vues

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Honkanen, R. A. et al., Établissement d’un modèle de sécheresse oculaire sévère à l’aide de la dacryoadénectomie complète chez le lapin. J. Vis. Exp. (2020).

Cette vidéo décrit l’intervention chirurgicale visant à enlever les deux parties : palpébrale et orbitaire de la glande lacrymale supérieure d’un lapin afin de créer un modèle de sécheresse oculaire. Ce modèle de lapin convient aux études de l’homéostasie de la surface oculaire, de la physiopathologie et des thérapies oculaires.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

Utiliser des lapins New Zealand White (NZW) pesant 2 à 3 kg Des animaux légèrement sédatifs placés dans un sac de contention avec de l’acépromazine sous-cutanée comme ci-dessus (1 mg/kg). Retirez toute la fourrure du visage et de la surface dorsale du crâne pour visualiser les repères chirurgicaux. Coupez la fourrure à l’aide d’un sécateur coupant en laissant une fourrure fine résiduelle d’environ 1 mm de longueur. Retirez toute la fourrure résiduelle à l'aide d'une crème....

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Résultats

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Figure 1 : Retrait de l’OSLG.(A) Les sites chirurgicaux sont infiltrés avec un anesthésique à l’aide d’une combinaison 50:50 de lidocaïne à 2 % avec 1:100 000 d’épinéphrine et 0,5 % de bupivacaïne, qui est injectée dans la paupière supérieure et le long des lignes d’incision pour minimiser l’inconfort pendant la procédure. (B) Une aiguille de microdissection C.......

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
acépromazine, Aceproinj Henry Schein Animal Health, Dublin, OH NDC11695-0079-80,1 ml/kg d’injection sous-cutanée pour la sédation du lapin
sac de contention pour animaux Henry Schein Animal Health, Dublin, OH Jorvet J0170Utilisez un sac de taille appropriée.
bupivacaïne, 0,5 % Hospira Inc, Lake Forest ILNDC : 0409-1162-02 Mélangé 50:50 avec 2 % de lidocaïne et 1:100 000 d’épinéphrine pour l’infiltration des sites d’incision.
Aiguille Colorado Stryker Craniomaxillofacial, Kalamazoo, MIN° N103AÀ utiliser avec un appareil électrochirurgical pour faire des incisions
Bistouri électrique à plaque de cautérisation monopolaire Valleylab, Boulder, ColoradoForce FXcÀ utiliser avec un appareil électrochirurgical pour faire des incisions
forceps, évêque Harmon Bausch et Lomb (Storz), BridgewaterNJ E1500-CUtiliser une pince dentée pour la dacryoadénectomie
Aiguille, calibre 30 BD, Franklin Lakes, NJ RÉF 305106Pour l’infiltration des sites d’incision, la taille de la seringue et de l’aiguille n’est pas critique
lapin, Nouvelle-Zélande Blanc Charles River Labs, Waltham, MA(NZW) 2-3 kg Animaux de recherche
ciseaux, Vannas McKesson Médico-chirurgical, San Francisco, Californie Miltex 2-130Ciseaux de capsulotomie pour la dacryoadénectomie
Seringue, 5 cc BD, Franklin Lakes, NJRÉF 309603 Pour l’infiltration des sites d’incision, la taille de la seringue et de l’aiguille n’est pas critique

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