Élimination de la glande lacrymale supérieure : une technique chirurgicale pour enlever les parties palpébrale et orbitale de la glande lacrymale supérieure du modèle de lapin

Résumé

Source : Honkanen, R. A. et al., Établissement d’un modèle de sécheresse oculaire sévère à l’aide de la dacryoadénectomie complète chez le lapin. J. Vis. Exp. (2020).

Cette vidéo décrit l’intervention chirurgicale visant à enlever les deux parties : palpébrale et orbitaire de la glande lacrymale supérieure d’un lapin afin de créer un modèle de sécheresse oculaire. Ce modèle de lapin convient aux études de l’homéostasie de la surface oculaire, de la physiopathologie et des thérapies oculaires.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

Utiliser des lapins New Zealand White (NZW) pesant 2 à 3 kg Des animaux légèrement sédatifs placés dans un sac de contention avec de l’acépromazine sous-cutanée comme ci-dessus (1 mg/kg). Retirez toute la fourrure du visage et de la surface dorsale du crâne pour visualiser les repères chirurgicaux. Coupez la fourrure à l’aide d’un sécateur coupant en laissant une fourrure fine résiduelle d’environ 1 mm de longueur. Retirez toute la fourrure résiduelle à l'aide d'une crème dépilatoire douce en suivant les instructions du fabricant.

1. Suppression d’OSLG

1. Infiltrer les sites d’incision (lignes de stylo de marquage chirurgical et paupière postérieure supérieure) avec un mélange 50:50 de lidocaïne à 2 % avec 1:100 000 d’épinéphrine et de bupivacaïne à l’aide d’une seringue de 5 cc avec une aiguille de 30 G (figure 1A).
   note: La taille de la seringue et de l’aiguille n’est pas critique.
2. Utilisez une aiguille Colorado connectée à un appareil électrochirurgical pour faire les incisions cutanées le long des marques chirurgicales. Les paramètres peuvent varier en fonction de la réponse clinique et se situent généralement entre 10 et 15 unités pour l’incision et la coagulation (figure 1B).
3. Appliquez une tension opposée sur l’incision cutanée pour séparer les tissus et exposer les fibres musculaires fronto-scutulaires sous-jacentes.
4. Appliquez une pression médiale sur le globe pour faciliter la visualisation de l’OSLG, vu comme un tissu bombé situé juste médialement ou profondément par rapport aux fibres musculaires fronto-scutulaires. Si nécessaire, déplacez ces fibres musculaires sur le côté afin d’exposer l’incisure sous-jacente.
5. À l’aide d’une pince dentée (0,3) et de ciseaux de capsulotomie, rétractez doucement et coupez la capsule fibreuse recouvrant l’OSLG. L’OSLG a généralement une couleur beige pâle (figure 1C).
6. À l’aide d’une pince dentée ou non dentée, saisissez le tissu de la glande OSLG et retirez-le doucement par l’incisure supérieure en utilisant une technique de « main sur main ». Coupez de petites bandes fibreuses à l’aide de ciseaux de capsulotomie pour libérer la glande de sa position sur l’orbite (Figure 1D).
   note: Au fur et à mesure que le tissu de la glande OSLG est retiré, il commence à se fondre en une grande structure en forme de tube (canal excréteur principal).
7. Lorsque la glande a été retirée aussi complètement que possible, utilisez une cautérisation généreuse avec l’aiguille Colorado pour créer un charbon tissulaire, en tronquant la glande à l’intérieur de l’incisure aussi profondément que possible. Cela servira plus tard de point de repère de confirmation lors de la suppression du PSLG.

2. Suppression de PSLG.

1. Retournez la paupière supérieure à l’aide d’un applicateur à bout de coton. L’extrémité bulbeuse du PSLG est généralement facilement visible.
   note: Dans certaines dissections anatomiques, il peut être possible de visualiser le conduit excréteur principal sous la forme d’une structure linéaire pâle d’environ 1 ou 2 mm de large.
2. Engagez le PSLG à l’aide d’une pince dentée (0.3) et rétractez-le de la surface de la paupière tout en utilisant des ciseaux de capsulotomie pour couper autour de sa base en le séparant du tarse sous-jacent (Figure 2A).
3. Contrôlez les saignements modérés avec le cautérisation monopolaire.
4. Appliquez une traction continue sur le tissu séparé pour maintenir un plan tissulaire pour la dissection. Cela permettra également d’enlever le conduit excréteur principal du SLG (Figure 2B).
   note: Au fur et à mesure que la dissection est effectuée, elle progresse généralement vers le bord orbitaire supérieur où il est possible de voir les marques de cautérisation laissées par l’ablation de l’OSLG plus supérieur et situé médialement.

Résultats

Figure 1 : Retrait de l’OSLG.(A) Les sites chirurgicaux sont infiltrés avec un anesthésique à l’aide d’une combinaison 50:50 de lidocaïne à 2 % avec 1:100 000 d’épinéphrine et 0,5 % de bupivacaïne, qui est injectée dans la paupière supérieure et le long des lignes d’incision pour minimiser l’inconfort pendant la procédure. (B) Une aiguille de microdissection C...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
acépromazine, Aceproinj	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	NDC11695-0079-8	0,1 ml/kg d’injection sous-cutanée pour la sédation du lapin
sac de contention pour animaux	Henry Schein Animal Health, Dublin, OH	Jorvet J0170	Utilisez un sac de taille appropriée.
bupivacaïne, 0,5 %	Hospira Inc, Lake Forest IL	NDC : 0409-1162-02	Mélangé 50:50 avec 2 % de lidocaïne et 1:100 000 d’épinéphrine pour l’infiltration des sites d’incision.
Aiguille Colorado	Stryker Craniomaxillofacial, Kalamazoo, MI	N° N103A	À utiliser avec un appareil électrochirurgical pour faire des incisions
Bistouri électrique à plaque de cautérisation monopolaire	Valleylab, Boulder, Colorado	Force FXc	À utiliser avec un appareil électrochirurgical pour faire des incisions
forceps, évêque Harmon	Bausch et Lomb (Storz), Bridgewater	NJ E1500-C	Utiliser une pince dentée pour la dacryoadénectomie
Aiguille, calibre 30	BD, Franklin Lakes, NJ	RÉF 305106	Pour l’infiltration des sites d’incision, la taille de la seringue et de l’aiguille n’est pas critique
lapin, Nouvelle-Zélande Blanc	Charles River Labs, Waltham, MA	(NZW) 2-3 kg	Animaux de recherche
ciseaux, Vannas McKesson	Médico-chirurgical, San Francisco, Californie	Miltex 2-130	Ciseaux de capsulotomie pour la dacryoadénectomie
Seringue, 5 cc	BD, Franklin Lakes, NJ	RÉF 309603	Pour l’infiltration des sites d’incision, la taille de la seringue et de l’aiguille n’est pas critique