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Article de méthode

Réalisation d’une injection dans le lobe orbitaire de la glande lacrymale supérieure : une technique pour induire la sécheresse oculaire dans un modèle de lapin

2.9K vues

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Honkanen, R. A. et al, A Rabbit Model of Aqueous-Deficient Dry Eye Disease Induced by Concanavalin A Injection in the Lacrimal Glands : Application to Drug Efficacy Studies. J. Vis. Exp. (2020).

Cette vidéo décrit la procédure d’induction de la sécheresse oculaire dans un modèle de lapin par une injection de Concanavalin A dans le lobe orbitaire de la glande lacrymale supérieure. Le modèle développé est utile pour étudier l’efficacité de divers médicaments dans le traitement de la sécheresse oculaire.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Préparation des animaux

REMARQUE : Les parties du système de glandes lacrymales orbitales sont injectées.

  1. Sédater les lapins avec de l’acépromazine 0,2 mg/kg par voie sous-cutanée.
  2. Cisaillez la fourrure dans la zone périorbitaire et du cuir chevelu et enlevez complètement toute fourrure résiduelle à l’aide de Nair. Laisser la peau entièrement lisse pour une meilleure visualisation des caractéristiques anatomiques et l’injection de concanavaline A guidée par l’échographie (figure 1).
  3. Induire une sédation modérée comme décrit ci-dessus.

2. Injection de la glande lacrymale supérieure orbitaire (OSLG)

REMARQUE : OSLG suit en succession rapide.

  1. Appliquez une pression médiane sur le globe, ce qui fait saillir l’OSLG de l’incisure postérieure. Appliquez une pression médiane sur le globe (figure 2, flèche rouge) avec la protubérance de l’OSLG à partir de l’incisure postérieure. La protubérance sert de localisation macroscopique pour trouver l’incisure postérieure.
  2. Utilisez des pinces incurvées avec les pointes fermées pour indenter la zone jusqu’à ce que l’ouverture osseuse du crâne se fasse sentir. Celle-ci sera en forme de fente avec une direction avant/postérieure sous la protubérance.
  3. Appliquez une pression modeste à l’aide d’une pince pour laisser une empreinte dans la peau, qui servira de point de repère pour la mise en place de l’aiguille (figure 3A).
  4. Insérez une aiguille (seringue à tuberculine avec une aiguille de calibre 27 de 5/8 de pouce) perpendiculairement à la peau au-dessus de la marque d’indentation (figure 3B) ~ 1/4 de pouce dans l’incisure, puis redirigez l’aiguille vers l’arrière et l’extérieur vers le canthus latéral en visant le point médian entre le site d’injection et le bord orbitaire osseux.
    note: Si l’incisure n’est pas ciblée avec précision avec l’aiguille, le crâne bloque sa progression.
  5. Une fois que le moyeu de l’aiguille est atteint, injectez lentement 1000 μg de Con A dans un volume de 0,2 mL (figure 3C).
  6. Terminez l’injection du PSLG et de l’OSLG en 2-3 minutes
  7. Retirer l’animal de la sédation à l’isoflurane (si ce n’est pas déjà fait). L’injection de la glande lacrymale inférieure (ILG) peut généralement être effectuée sans sédation supplémentaire.

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Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Préparation du lapin pour les injections de concanavalin A.(A) De petits sécateurs sont utilisés pour enlever la fourrure, ce qui permet de visualiser plus facilement les points de repère pour identifier la glande lacrymale supérieure orbitale. (B) Nair est utilisé pour enlever les poils qui restent après la tonte.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Objectif macro 100 mmCanon EF 100mm f/2.8L IS USMRéférence 3554B002
Aiguilles de calibre 26 (5/8)Becton Dickinson et Cie,
Franklin Lakes, NJ
305115Aiguilles pour l’injection de ConA dans le
glandes lacrymales
Aiguilles de calibre 27 (5/8)Becton Dickinson et Cie,
Franklin Lakes, NJ
305921Aiguilles pour l’injection de ConA dans le
glandes lacrymales
Aceproinj (acépromazine)Henry Schein Santé animale
Dublin, OH
NDC11695-0079-80,1 ml/kg par injection sous-cutanée
pour la sédation chez le lapin
Vaporisateur d’anesthésieVetEquip, Pleasanton, CalifornieArticle #911103
Forceps de l’évêque HarmonBausch et Lomb (Storz),
Bridgewater, NJ
E1500-CPinces à tissus
étrierBausch et Lomb (Storz),
Bridgewater, NJ
E-2404Pied à coulisse utilisé pour mesurer la longueur de
aiguille lors de l’injection de ConA
Concanavalin ASigma, Saint-Louis, MissouriC2010Faire 5 mg/ml dans du PBS pour injection
dans les glandes lacrymales du lapin
Lapin, Nouvelle-Zélande Blanc ou
Néerlandais ceinturé (tel que décrit dans le texte)
Charles River Labs, Waltham, MA2-3 kgAnimaux de recherche
Loupes chirurgicales +1,50Designs pour Vision, Bohemia, NYArticle de spécialitéFournir un grossissement de l’oculaire
surface lors de l’observation de la rupture de déchirure
Concanavalin A
Injections.

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