Article de méthode

Transfection in vitro basée sur la magnétoflexion : une technique assistée par champ magnétique pour délivrer des plasmides dans des cellules neuronales primaires de souris à l’aide de nanoparticules magnétiques

8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Jacquier, A. et al. Modélisation de la maladie de Charcot-Marie-Tooth in vitro par transfection de motoneurones primaires de souris. J. Vis. Exp. (2019)

Dans cette vidéo, nous démontrons la transfection guidée magnétiquement de l’ADN plasmidique dans une culture de cellules neuronales primaires. La magnétoflexion utilise un champ magnétique externe pour guider la livraison de plasmides liés à des nanoparticules magnétiques dans le cytoplasme cellulaire.

Protocole

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1. Revêtement de vaisselle en poly-ornithine/laminine (Po/L)

REMARQUE : Les volumes sont adaptés pour revêtir une plaque de 24 puits.

  1. Si nécessaire, placez une lamelle stérile de 12 mm dans le puits.
  2. Enduire les puits de 500 μL de solution de poly-L-Ornithine de 10 μg/mL dissoute dans l’eau.
  3. Laissez les puits se déposer à température ambiante pendant 1 h.
  4. Retirer la solution de Poly-L-Ornithine et laisser sécher à l’air libre pendant 30 min.
  5. Enduire les puits pendant la nuit à 37 °C avec 500 μL de laminine de 3 μg/mL dans du bicarbonate L-15.
    note: Les puits peuvent être conservés à 37 °C pendant 7 jours dans l’incubateur. Pour les longues incubations, l’ajout de PBS stérile entre les puits peut aider à éviter l’évaporation du milieu.

2. Culture de motoneurones

  1. Diluer les MN à la densité appropriée, généralement de 5 000 à 10 000 cellules dans 500 μL de milieu de culture par puits dans une plaque de 24 puits.
    note: La densité d’ensemencement est d’environ 30 000 et 1 500 cellules pour les plaques à 6 et 96 puits, respectivement.
  2. Retirez la solution de laminine avec un P1000.
  3. Transférez immédiatement les MN dilués dans le milieu de culture dans les plaques d’enrobage pour éviter le dessèchement.
  4. Incuber la culture pendant 2 jours à 37 °C.

3. Magnétofection des motoneurones

REMARQUE : Dans les étapes suivantes, les quantités utilisées sont destinées à la transfection d’un puits d’une plaque de 24 puits. Veuillez vous référer au protocole du fabricant pour un autre format.

  1. Pour la préparation de l’ADN, remettre en suspension 1 μg d’ADN dans 50 μL de milieu de culture neuronal et agiter pendant 5 s. Ici, des plasmides de 9 kb avec un promoteur CAGGS (pCAGEN) contrôlant l’ADNc du neurofilament sont utilisés.
  2. Pour la préparation du tube de billes, remettre en suspension 1,5 μL de billes dans 50 μL de milieu de culture neuronal.
  3. Ajouter la solution de billes de 50 μL à la solution d’ADN de 50 μL et incuber pendant 20 minutes à température ambiante (volume total = 100 μL).
  4. Au cours de cette incubation, prélever 100 μL de milieu de culture du puits qui sera transfecté.
    REMARQUE : Placez la plaque magnétique dans l’incubateur pour la réchauffer à 37 °C.
  5. Transférez 100 μL du mélange ADN/billes dans le puits et incubez la plaque pendant 20 à 30 minutes sur la plaque magnétique à 37 °C.

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Déclarations de divulgation

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plasmide pCAGENAddgeneRéf. 11160
Milieu de culture de cellules de neuronesThermoFisher ScientificA3582901Neurobasal Plus moyen
Poly-DL-OrnithineSigma-AldrichRéf. P8638
LaminineSigma-AldrichL2020
Bicarbonate de sodiumThermoFisher Scientific25080094
L-15 moyenThermoFisher Scientific11415056
PBS sans Ca MgThermoFisher Scientific14190144Sans Mg2+ Ca2+
Lamelle rondeNeuVitro, verre KnittelGG-12-Pré12 millimètres

Réimpressions et autorisations

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Mots-clés

ADN plasmidiquecellules neuronales primairesformation de polyplexesendocytosechappement endosomaltranslocation nucl aireexpression de prot ines fluorescentes

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