Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Coloration au violet cristallin : une technique pour visualiser des cellules cancéreuses résistantes aux médicaments à l’aide de tests de formation de colonies

12.3K vues

8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Mohr, L. et al., Génération de modèles de cellules cancéreuses de la prostate de résistance à l’agent anti-mitotique docétaxel. J. Vis. Exp. (2017)

Dans cette vidéo, nous démontrons un test de viabilité cellulaire à l’aide d’une procédure de coloration au violet cristallin pour les cellules cancéreuses chimiothérapeutiques résistantes aux médicaments.

Protocole

1. Caractérisation fonctionnelle de la résistance acquise au docétaxel par essai de formation de colonies

REMARQUE : Dans ce protocole, la chimiorésistance a été évaluée à l’aide de tests de formation de colonies. D'autres méthodes utilisées pour évaluer la viabilité cellulaire (c.-à-d. les tests MTS) peuvent être utilisées en fonction des préférences des chercheurs.

  1. Plaquez 2 000 cellules (DU145 ou 22Rv1, parentales et résistantes au docétaxel) par puits dans des plaques à 6 puits, en utilisant 2 mL de milieu par puits.
  2. Après 24 h, ajouter des concentrations croissantes de Docétaxel (cellules parentales : 0,25, 0,5, 1, 2,5 et 5 nM ; Cellules DR : 50, 125, 250, 500 et 1 000 nM) pour les lignées cellulaires DU145 et 22Rv1. Ajouter du DMSO uniquement à un puits en tant que témoin au même volume que celui utilisé pour la dose la plus élevée de Docétaxel.
  3. Après 72 h, aspirer le milieu contenant du médicament et ajouter un milieu frais sans Docétaxel.
  4. Incuber les plaques pendant 1 à 2 semaines jusqu’à ce que les colonies soient visibles au microscope.
  5. Pour colorer les colonies, lavez-les délicatement avec 2-3 mL de PBS et incubez-les avec 2-3 mL de solution de violet cristallin (0,1 % p/v dans 10 % de formol) pendant 20 min à l’intérieur de la hotte de culture tissulaire ou d’une hotte.
  6. Enlever la solution tachante et laver les plaques avec 2-3 mL de H2O, retirer H2O et sécher les plaques à l’air.
  7. Analysez le résultat en visualisant les puits et en comptant manuellement les colonies à l’aide d’un marqueur (pour éviter de compter deux fois les mêmes colonies) et représentez le pourcentage de viabilité cellulaire dans un graphique. Prenez des images numériques des plaques pour la représentation de figures (Figure 1).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Caractérisation fonctionnelle et phénotypique des modèles cellulaires résistants au docétaxel. Essais représentatifs de formation de colonies de cellules parentales et résistantes au docétaxel traitées avec les concentrations indiquées de docétaxel pendant 72 h. Le pourcentage de colonies pour chaque concentration de traitement est représenté dans le graphique ci-dessous. Les expériences sont triples et les données...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Cellules DU145 ATCC HTB-81
Cellules 22Rv1 ATCC CRL-2505
Docétaxel Produits chimiques Selleck S1148 en DMSO (10mM)
Plaques de culture tissulaire à 6 puits Faucon 353046
RPMI 1640 Moyen Gibco 11875093Complété par 10 % de FBS et 1 % de péniciline/streptomycine
Sérum fœtal bovin Foundation B Gémeaux 900208
1X solution saline tamponnée au phosphate (PBS) Corning Référence 21-040-CM
Cristal Violet Sigma-Aldrich C0775
Solution de formol à 10 % Sigma-Aldrich HT501128

Étiquettes

Essai de formation de coloniesEssai de viabilit cellulaireTraitement au doc taxelLavage au PBSSolubilisation l thanolComptage manuel des coloniesFormation de colonies tumoralesR ponse la concentration du m dicament