Techniques de coloration

Dans cette vidéo, nous démontrons la coloration in vitro de lipides neutres dans les hépatocytes pour détecter une stéatose hépatique ou une accumulation excessive de graisse dans le foie. L’excès de graisse s’accumule dans les cellules sous forme de gouttelettes lipidiques. Oil Red O est un colorant liposoluble qui se lie aux lipides neutres intracellulaires dans ces gouttelettes lipidiques. Lorsqu’elles sont observées au microscope optique, ces gouttelettes lipidiques intracellulaires...

Dans cette vidéo, nous démontrons la coloration négative d’échantillons de virus enveloppés à l’aide d’une capsule de traitement dans l’environnement de bioconfinement. Les virus colorés négativement peuvent être visualisés à l’aide de la microscopie électronique à transmission pour étudier la structure et la morphologie virales avec une résolution nanométrique.

Dans cette vidéo, nous démontrons une méthode de coloration à l’argent des gels de polyacrylamide pour la visualisation des protéines totales à l’aide de sondes fluorogéniques.

Cette vidéo démontre la technique de coloration à la phosphatase acide résistante au tartrate pour détecter la présence de granules contenant TRAP à l’intérieur des ostéoclastes. La technique forme des dépôts de granules de colorant de couleur magenta dans le cytoplasme des ostéoclastes, les rendant visibles au microscope inversé.

Dans cette vidéo, nous montrons une procédure de coloration combinée au bleu d’Alcian et à l’argent de fragments d’oligosaccharides de glycosaminoglycane sulfatés. Cette technique de coloration combinée amplifie considérablement les bandes de polymères de glycosaminoglycanes de différentes longueurs dans les gels de polyacrylamide.

Cette vidéo décrit la coloration rouge picrosirius des tissus fibrotiques pour détecter un dépôt excessif de collagène dans les coupes de tissu fibreux. La technique de coloration permet d’évaluer l’expression du collagène dans les maladies du tissu conjonctif.

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de coloration de Wiesner pour colorer la lignine présente dans des cellules végétales spécialisées. Cette technique de coloration permet de visualiser les parois cellulaires lignifiées dans les tiges d’Arabidopsis thaliana et de quantifier la lignification des parois cellulaires de différents types de cellules.

Dans cette vidéo, nous décrivons la technique de coloration Maule pour colorer la lignine syringylique présente dans les cellules végétales spécialisées. Cette technique de coloration permet de caractériser la distribution de la lignine dans le xylème et les fibres interfasciculaires.

Dans cette vidéo, nous démontrons la méthode de coloration au rouge du Congo pour visualiser les dépôts de cellulose dans les coupes de tiges d’Arabidopsis thaliana.

Dans cette vidéo, nous décrivons une procédure de coloration pour visualiser le dépôt de cellulose dans les parois cellulaires d’Arabidopsis thaliana, une plante dicotylédones, en utilisant du blanc de calcofluor, qui se lie spécifiquement aux glucanes liés à β, présentant une fluorescence sous la lumière UV.

Cette vidéo présente un protocole de détection et de quantification des lipides neutres dans les cellules d’algues en les colorant rouge du Nil.

Cette vidéo présente une technique de coloration pour évaluer la calcification artérielle médiale des cellules musculaires lisses vasculaires in vitro. La méthode von Kossa utilise une réaction photochimique pour déposer de l’argent métallique sur les sites de calcification et conférer une coloration noire.

Dans cette vidéo, nous décrivons la procédure de coloration au bleu de méthylène pour quantifier la charge métastatique en comptant les colonies colorées obtenues par culture de cellules cancéreuses prélevées sur des organes éloignés d’un modèle murin après injection.

Cette vidéo présente la technique de coloration périodique à l’acide de Schiff pour évaluer in vitro les niveaux de glycogène des cellules mononucléées du sang périphérique. La coloration donne une couleur magenta aux granules de glycogène intracellulaires, les rendant visibles au microscope.

Dans cette vidéo, nous démontrons un test de viabilité cellulaire à l’aide d’une procédure de coloration au violet cristallin pour les cellules cancéreuses chimiothérapeutiques résistantes aux médicaments.

Cette vidéo démontre la coloration par gouttelettes lipidiques dans les œnocytes larvaires de la drosophile - cellules semblables à des hépatocytes - à l’aide du colorant fluorescent lipophile à base de BODIPY. Ces cellules servent de modèle pour l’étude du métabolisme des lipides au cours du développement et en réponse à un stress environnemental tel que la famine.

Cette vidéo présente une technique de coloration permettant de détecter l’étendue de la minéralisation ou du dépôt de calcium dans des ostéoblastes primaires cultivés à l’aide d’un colorant rouge d’alizarine.

Dans cette vidéo, nous démontrons la procédure de coloration de Giemsa pour évaluer le potentiel prolifératif des cellules souches mésenchymateuses à former des colonies viables. La coloration Giemsa est une coloration neutre principalement composée de colorants azur et éosine, qui ont une affinité sélective pour les composants cellulaires en fonction de leur charge.

Cette vidéo décrit la procédure de coloration au bleu d’alcian pour localiser les protéoglycanes sécrétés par les chondrocytes fonctionnels. Cette méthode permet de déterminer le succès de la différenciation in vitro des cellules souches mésenchymateuses en chondrocytes matures.

Dans cette vidéo, nous démontrons un protocole modifié de coloration de Papanicolaou pour étudier la cytologie tubaire. Cette technique peut être utilisée pour visualiser les caractéristiques cytologiques des cellules épithéliales malignes et non malignes des trompes de Fallope.

Cette vidéo montre une méthode de double coloration utilisant du rouge de ruthénium et du bleu de coton lactophénol pour visualiser les pectines et les chitines lors des interactions plante-champignon dans une plante de rouille du café. La procédure aide à comprendre les mécanismes de défense des plantes lors d’infections fongiques.

Cette vidéo montre la procédure d’acidification de l’ensemble du rein de souris avec fixation suivie d’une coloration à l’éosine Y. Cette méthode de coloration à l’éosine spécifique au cytoplasme permet de visualiser et d’identifier les structures anatomiques des tissus.

Dans cette vidéo, nous décrivons une technique de coloration à l’hématoxyline et à l’éosine de coupes de tissus inclus dans de la paraffine pour étudier leur histologie. La procédure comprend la déparaffinisation du tissu suivie d’une coloration des cellules du tissu. Lors de la coloration, le noyau apparaît distinctement bleu et les protéines du cytoplasme présentent une coloration rose.

Dans cette vidéo, nous montrons une procédure de coloration du cartilage à l’aide de safranine-orange. Cette méthode permet de visualiser le cartilage et de détecter tout dommage.

Cette vidéo montre la technique de coloration de coupes nerveuses périphériques de rats enrobées de résine et traitées au tétroxyde d’osmium à l’aide de bleu de toluidine. Les sections nerveuses colorées aident à visualiser les structures fines des nerfs périphériques.

Cette vidéo décrit la procédure de coloration au violet crésyl pour visualiser les os et le cartilage dans les coupes coronales d’embryons de souris congelés. Cette technique de coloration aide à différencier les os et le cartilage avec des couleurs distinctes des tissus environnants.

Cette vidéo décrit une technique de coloration des amyloïdes dans des coupes de tissus à l’aide d’un colorant oligothiophène conjugué luminescent - l’acide heptamère-formyl thiophène acétique, ou hFTAA - pour l’imagerie par fluorescence. Les amyloïdes sont des agrégats de protéines anormaux riches en feuillets β. Leur détection dans des échantillons de tissus est utile dans le diagnostic et le traitement des maladies associées à l’amyloïde ou des protéinopathies.

Cette vidéo décrit la procédure de coloration au chlorure de 2,3,5-triphényl-2H-tétrazolium pour visualiser les coupes de tissu cérébral de rat et différencier les tissus viables et endommagés après l’occlusion et la reperfusion de l’artère cérébrale moyenne.

Cette vidéo montre la coloration différentielle des fibres de collagène, des noyaux et du cytoplasme dans le tissu cardiaque pour visualiser la croissance fibrotique associée aux pathologies cardiaques.

Cette vidéo montre une procédure utilisant la coloration Sudan IV pour colorer les dépôts graisseux dans l’arc aortique de souris récolté afin de visualiser les plaques d’athérosclérose et de déterminer l’étendue de l’athérosclérose.