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Coloration de Giemsa pour le test de formation de colonies : une procédure de coloration in vitro pour évaluer la capacité de prolifération des cellules souches mésenchymateuses

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Schlaefli, P. et al. Une méthode enzymatique pour sauver des cellules souches mésenchymateuses à partir d’échantillons de moelle osseuse coagulée. J. Vis. Exp. (2015)

Dans cette vidéo, nous démontrons la procédure de coloration de Giemsa pour évaluer le potentiel prolifératif des cellules souches mésenchymateuses à former des colonies viables. La coloration Giemsa est une coloration neutre principalement composée de colorants azur et éosine, qui ont une affinité sélective pour les composants cellulaires en fonction de leur charge.

Protocole

1. Ensemencement pour la culture cellulaire d’expansion et les plaques UFC

  1. Remettre en suspension les cellules (constituées d’érythrocytes et de cellules mononucléaires) dans 50 ml de milieu basal : Alpha-MEM complété par 10 % de sérum de veau fœtal (FBS), 100 U/ml de pénicilline, 100 mg/ml de streptomycine et 2,5 mg/ml d’amphotéricine B. Compter les cellules diluées 1:10 dans une solution de Trypan Blue à l’aide d’une chambre de Neubauer.
  2. Plaquez les cellules dans des flacons de culture cellulaire à la densité de 5 x 10⁷ cellules/cm² et incubez dans un incubateur humidifié à 37 °C. Si possible, utilisez des conditions hypoxiques (5 % d’oxygène). Pour le contrôle du test UFC, plaquez 10⁹ cellules dans une boîte de culture cellulaire de 10 cm de diamètre.
  3. Après 3 jours de culture, les cellules souches mésenchymateuses sont attachées à la boîte de culture cellulaire tandis que les autres cellules restent en suspension. Changez le milieu avec un milieu basal complété par 5 ng/ml de facteur de croissance des fibroblastes basiques (bFGF). Pour le contrôle du test CFU, traitez également la boîte de culture cellulaire.
  4. Poursuivre la culture cellulaire pendant 2 semaines au total, en échangeant les milieux trois fois par semaine. Si les cellules dépassent 80 % de confluence, divisées par trypsinisation. Pour le contrôle du test CFU, remplacez également les milieux, mais ne divisez pas les cellules pendant les deux semaines.

2. Coloration de Giemsa pour le dosage CFU

  1. Préparez 10 ml de solution de Giemsa par plat : diluez la solution mère (7,6 g/l de Giemsa dans du glycérol : méthanol) 1:10 dans de l’eau stérile (préparez toujours une dilution de travail fraîche).
  2. Retirez le milieu de la boîte de culture cellulaire et lavez les cellules avec du PBS. Soyez très prudent lorsque vous appliquez du liquide sur la boîte de Pétri et évitez de laver les cellules.
  3. Fixez les cellules dans du méthanol pur pendant 5 min à RT. Jetez le méthanol. Ajouter la solution Giemsa et laisser incuber pendant 60 min dans un incubateur humidifié à 37 °C.
  4. Lavez deux fois avec du PBS. Faites sécher l’assiette à l’air libre sur une serviette en papier. Comptez les colonies manuellement. Le meilleur moyen d’y parvenir est d’utiliser un marqueur à l’arrière de la plaque.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Composantes du milieu de base
PenStrep 100XGibco15140122
FGF humain de basePeprotech100 à 18 milliards
MEM Alpha avec nucléoside, avec glutamine stableAmimed1-23S50-I
FBS Inactivé par la chaleurAmimedRéf. 2-01F36-I
Amphotéricine BApplichemA1907
générique
PbsApplichem964,91
Teinture GiemsaApplichemA0885
Consommables
Boîte à cuture de cellules primairesFaucon353803
Fiole de culture cellulaire - Fiole T300LeRéférence 90301
équipement
Stripettes Pipette Sérologique 5mlCorning4487-200EA
Incubateur humidifié Heracells 240Thermo scientifique51026331
Heraeus Multifuge 1S-RThermo scientifique75004331

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Mots-clés

Fixation au m thanolcoloration l Azure Bcoloration l osine Ycomptage de coloniescellules d riv es de la moelle osseuseculture cellulaire

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