1. Préparer les réactions qPCR
REMARQUE : Une réaction PCR concerne un échantillon. Chaque réaction PCR contient 5 μL de mélange maître qPCR (voir matériaux), 1 μL de mélange de paires d’amorces 5 μM, 2 μL de H2O et 2 μL d’échantillon de phage T7 traité thermiquement. Pour les réactions PCR multiples, tous les réactifs, à l’exception de l’échantillon de phage, sont prémélangés dans un tube de 1,5 ml. Le volume de chaque réactif dans le prémélange dépend du nombre d’échantillons de phages pour la qPCR.
- Préparez le prémélange qPCR pour 10 échantillons de phages biopanés de concentration inconnue et 7 échantillons de concentrations standard en trois exemplaires. Par conséquent, il y a 51 échantillons au total et, par conséquent, 51 réactions qPCR (c’est-à-dire une réaction par échantillon). Pour 51 réactions, préparez un prémélange de 255 μL de mélange maître qPCR (51 x 5 μL), 51 μL d’amorces (51 x 1 μL) et 102 μL de H2O (51 x 2 μL).
note: Il est recommandé de préparer quelques réactions PCR supplémentaires pour compenser la perte de volume lors de l’aliquotage du mélange PCR dans chaque puits de la plaque qPCR à 96 puits.
- Aliquote 8 μL de prémélange PCR dans chaque puits d’une plaque qPCR à 96 puits pour un total de 51 puits (c.-à-d. 51 réactions qPCR). Il n’est pas nécessaire de changer les pointes lors de l’aliquotage.
- Ajouter 2 μL d’échantillons de phages T7 traités thermiquement ou d’ADN de référence de phage T7 dans chaque puits (figure 1B) ; changer les pointes lorsque vous ajoutez différents échantillons d’ADN dans le puits pour éviter la contamination croisée. De plus, distribuez les échantillons d’ADN de 2 μL sous la surface du prémélange qPCR (c’est-à-dire dans le prémélange PCR de 8 μL).
- Scellez la plaque qPCR avec un film adhésif.
note: Cette étape est critique, quel que soit le type de plaque qPCR. Utilisez le kit recommandé pour sceller complètement la plaque ; sinon, toute région non scellée de la plaque entraînera une perte de volume pendant le cycle PCR.
- Enveloppez la plaque qPCR avec une feuille d’aluminium pour minimiser le photoblanchiment par fluorescence et procédez à son exécution sur l’équipement qPCR.
2. Conditions de cyclisme qPCR
REMARQUE : des conditions de cycle qPCR ont été définies sur l’équipement qPCR spécifique.
- Exécutez la plaque qPCR à 96 puits sur l’équipement qPCR. Sur l’équipement, sélectionnez les paramètres dans le menu pour configurer les conditions expérimentales suivantes (Figure 1C).
- Pour un volume d’échantillon de 10 μL, définissez les conditions de cycle suivantes : un cycle à 50 °C pendant 2 min, un cycle à 95 °C pendant 2 min, suivi de 40 cycles (95 °C pendant 15 s, 60 °C pendant 1 min). Ensuite, exécutez les réglages de la courbe de fusion : un cycle de 95 °C pendant 15 s, 60 °C pendant 1 min et 95 °C 15 s.
- Procédez à l’analyse des données.