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Imagerie d’une seule molécule pour visualiser l’assemblage de condensats de protéines de fusion sur des rideaux d’ADN

8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Zuo, L. et al., Imagerie monomoléculaire des condensats EWS-FLI1 s’assemblant sur l’ADN. J. Vis. Exp. (2021)

Cette vidéo décrit une méthode permettant de visualiser l’assemblage de condensats de protéines de fusion sur des molécules d’ADN à des loci spécifiques à l’aide de l’imagerie à molécule unique. Ces condensats sont formés en raison d’interactions LCD-LCD et LCD-DBD, qui permettent le recrutement de l’ARN polymérase II et l’amélioration de la transcription des gènes.

Protocole

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1. Imagerie de la formation de la condensation EWS-FLI1 sur des rideaux d’ADN

  1. Ouvrez le logiciel d’imagerie, trouvez et marquez les positions des 3 × 3 motifs en zigzag sous le champ clair.
  2. Allumez le débit à 0,2 mL/min pour colorer l’ADN avec le colorant d’ADN double brin pendant 10 min.
  3. Diluez mCherry-EWS-FLI1 avec le tampon d’imagerie à la concentration de 100 nM dans 100 μL dans le tube.
  4. Chargez l’échantillon de protéines à travers la valve à l’aide d’une seringue en verre de 100 μL et modifiez le débit à 0,4 mL/min.
  5. Allumez le laser 488 nm et pré-balayez chaque région pour vérifier l’état de distribution de l’ADN ; sélectionnez la région où les molécules d’ADN se répartissent uniformément. Réglez la puissance laser sur 10 % pour le laser 488 nm et 20 % pour le laser 561 nm. Utilisez le wattmètre pour mesurer la puissance réelle du laser près du prisme : 4,5 mW pour le laser 488 nm et 16,0 mW pour le laser 561 nm.
  6. Acquisition d’images
    1. Commencez à acquérir des images à des intervalles de 2 s avec des lasers de 488 nm et de 561 nm simultanément.
    2. Passez de la vanne du mode manuel au mode injection pour permettre au tampon d’imagerie de rincer l’échantillon de protéines dans la cellule d’écoulement après 60 s.
      note: Ce processus prendra ~30 s, et le champ de vision sera couvert par des signaux mCherry dès que les protéines EWS-FLI1 atteignent la cellule d’écoulement.
    3. Pour supprimer l’EWS-FLI1 libre, continuez à laver la cellule d’écoulement avec le tampon d’imagerie pendant 5 min avec uniquement le laser 561 nm allumé. Arrêtez l’écoulement et incubez à 37 °C pendant 10 min.
    4. Allumez le flux à 0,4 mL/min pour permettre à l’ADN de s’étendre, et acquérez des images à des intervalles de 2 s entre différentes images pour obtenir des données à haut débit sur la formation de condensats EWS-FLI1.

2. Analyse d’intensité pour mCherry-EWS-FLI1

  1. Importez les données sous forme de séquences d’images dans le logiciel ImageJ, choisissez les points sur 25 × sites GGAA dans un carré de 8×8 pixels et enregistrez l’image dans .tif format.
  2. Calculez l’intensité comme la somme de l’intensité dans le carré de 8×8 pixels, y compris l’ensemble des pixels, et supprimez l’arrière-plan en soustrayant l’intensité de l’arrière-plan dans une zone de la même taille près du carré de 8 x 8 pixels.

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Déclarations de divulgation

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Laser à semi-conducteurs pompé par diode 488 nmcohérentOBIS488LS
Laser à semi-conducteurs pompé par diode 561 nmcohérentOBIS561LS
Microscope inversé NikonNikonÉclipse Ti
Le PMMALe PMMAPrime95B

Réimpressions et autorisations

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Mots-clés

Prot ines de fusionmicroscopie fluorescencesyst me microfluidiquecellule d coulementliaison l ADNimagerie laserassemblage de condensats

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