1. Radiomarquage des cellules cOVA-TH1
REMARQUE : Les 64Cu-DOTA-KJ1-26-mAb seront appliqués sur des cellules cOVA-TH1 cultivées pour permettre le marquage radioactif intracellulaire.
- Pour le radiomarquage des cellules cOVA-TH1, prélevez 37 MBq des 64Cu-DOTA-KJ1-26-mAb radiomarqués dans une seringue sans volume mort à l’aide d’un calibrateur de dose. Ajouter 1 mL de solution saline pour obtenir une solution de 37 MBq/mL.
- Mettre en suspension les cellules cOVA-TH1 dans le milieu à raison de 2 x 106 cellules/mL et ajouter 0,5 mL de suspension cellulaire dans chaque puits dans une plaque de 48 puits.
- Ajouter 20 μL de la solution 64 Cu-DOTA-KJ1-26-mAb de 37MBq/mL fraîchement préparée dans chaque puits de la plaque à 48 puits. Le rapport final pour le marquage est de 0,7 MBq pour 106 cellules dans un volume de 520 μL. Incuber à 37 °C et 7,5 % de CO2 pendant 30 min.
- Après l’incubation, remettre soigneusement les cellules en suspension dans chaque puits et transférer la suspension cellulaire de la plaque à 48 puits dans un tube à bouchon à vis de 50 ml. Pour minimiser la perte de cellules, rincez chaque puits avec un milieu préchauffé.
- Centrifugez la suspension de cellules cOVA-TH1 à 400 x g pendant 5 min, jetez le surnageant et remettez les cellules en suspension dans 10 ml de PBS préchauffé. Retirer une aliquote de la suspension cellulaire pour le comptage cellulaire. Répétez l’étape de lavage.
- Compter les cellules cOVA-TH1 viables dans une dilution appropriée avec coloration au bleu de trypan.