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Quantification d’interférons bioactifs de type I à l’aide d’un dosage rapporteur de phosphatase alcaline embryonnaire sécrétée

July 8th, 2025

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Abstract

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Source : Bego, M. G. et al., Évaluation de la détection innée des lymphocytes T CD4+ infectés par le VIH-1 par des cellules dendritiques plasmacytoïdes à l’aide d’un système de co-culture ex vivo. J. Vis. Exp. (2015)

Cette vidéo montre un dosage de la phosphatase alcaline embryonnaire sécrétée à l’aide de cellules porteuses d’interféron-α/β HEK-Blue pour quantifier les interférons de type I (IFN) libérés à la suite de la stimulation de cellules dendritiques plasmacytoïdes par des cellules T CD4+ infectées par le VIH-1.

Protocol

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1. Mesure de l’IFN bioactif de type I à l’aide de cellules rapporteures HEK-Blue IFN-α/β.

Remarque : Ces cellules ont été générées par transfection stable de cellules HEK293 avec les gènes humains STAT2 et IRF9 pour obtenir une voie de signalisation IFN de type I pleinement active. Ils contiennent également le gène rapporteur de la phosphatase alcaline sécrétée (SEAP) sous le contrôle du promoteur ISG54 inductible par l’IFN-α/β. La stimulation de ces cellules avec de l’IFN de type I active la voie JAK/STAT/ISGF3 et induit la production de PAED.

  1. Maintenir les cellules HEK-Blue IFN-α/β dans le DMEM complété par 10 % de FBS. Plaquez-les à une densité de 50 000 cellules par puits dans une plaque à fond plat de 96 puits, avec un volume final de 180 μl.
  2. Mélanger 220 μl de PBMC (dilués à 850 000 cellules/ml) ou 220 μl de cellules dendritiques plasmacytoïdes (pDCs) (à une concentration allant de 100 000 à 500 000 cellules/ml) avec 30 μl de lymphocytes T infectés (dilués à 10,6 cellules/ml) par puits dans une plaque à 96 puits à fond en U.
  3. Incuber des co-cultures à 37 °C et 5 % de CO2 pendant 18 à 22 heures, puis les transférer sur une plaque à 96 puits à fond en V. Centrifugeuse pendant 5 min à 400 x g.
  4. Ajouter 20 μl de surnageant de co-culture dans chaque puits en double. Chaque plaque nécessite également un ensemble de contrôles d’étalons internes (IFNα humain, concentration finale de 100 U/ml à 2 500 U/ml). Incuber les plaques à 37 °C et 5 % de CO2 pendant 18 à 22 heures.
  5. Déterminer les niveaux d’activité de la phosphatase alcaline à l’aide de la solution QUANTI-Blue, qui passe du rose au violet/bleu en présence de l’enzyme. Préparez QUANTI-Blue en suivant les recommandations du fabricant. Ajouter 180 μl de cette solution dans chaque puits d’une plaque à fond plat de 96 puits. Dans chaque puits, ajoutez également 20 μl de cellules surnageantes de cellules IFN-α/β induites HEK-Blue et incubez la plaque dans un incubateur à 37 °C jusqu’à ce que la couleur se développe dans les puits de contrôle IFN standard.
  6. Évaluer les niveaux de PAED à l’aide d’un spectrophotomètre à 620-655 nm et déterminer la concentration d’IFN de type I par extrapolation à partir de la partie linéaire de la courbe standard de l’IFN.

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Disclosures

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Cellules MT4Programme de réactifs du NIH pour le sida120Ce réactif a été obtenu par le biais du programme de réactifs du NIH sur le sida, Division du sida, NIAID, NIH : MT-4 du Dr Douglas Richman.
HEK-Blu Cellules rapporteures IFN-α/βInvivogenHKB-IFNAB
RPMIbison d’europe350-000-CL
DMEMbison d’europeRéférence 319-005-CL
FBSbison d’europeN° 080-150
PHA-LSigma-AldrichO2769
Kit d’isolement des lymphocytes T CD4+ IIMyltenyiTél. : 130-091-155
Kit d’isolement de cellules dendritiques plasmacytoïdes Diamond IIMyltenyiTél. : 130-097-240
QUANTI-BleuCedarlaneREP-QB2
2,5 mg/ml d’IgG humainesSigma-AldrichJ 4506

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Type I Interferon QuantificationSecreted Alkaline Phosphatase AssayHEK Blue Reporter CellsInterferon Alpha Beta PromoterSEAP Reporter GeneStandard Curve AnalysisMicroplate Reader AbsorbanceQUANTI Blue SubstrateSTAT Protein ActivationInterferon Regulatory Factor

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