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REMARQUE : Tous les travaux décrits ci-dessous doivent être effectués dans un laboratoire de NC2 au sein d’une enceinte de sécurité microbiologique (CSM) de classe 2 conformément aux directives locales en matière de santé et de sécurité.
1. Préparation de M. bovis BCG lux pour l’infection
- Décongeler un stock congelé de 1,2 mL de glycérol (15 %) de M. bovis BCG lux, la souche vaccinale montréalaise transformée avec le plasmide navette pSMT1 portant les gènes luxAB de Vibrio harveyi codant pour l’enzyme luciférase.
- Inoculer 15 mL de bouillon Middlebrook 7H9 contenant 0,2 % de glycérol, 10 % d’albumine, de dextrose, d’enrichissement en catalase (ADC) et 50 μg/mL d’hygromycine avec une aliquote décongelée de 1,2 mL de BCG lux, dans une fiole Erlenmeyer de 250 mL étiquetée.
- Placer le ballon dans un contenant de biosécurité scellé et incuber à 37 °C dans un incubateur à agitateur orbital à 220 tr/min pendant 72 h (ou jusqu’à ce que la culture atteigne la phase de croissance mi-logarithmique).
- Vérifiez la croissance de la culture BCG lux en préparant des dilutions 1:10 de la culture dans des tubes de luminomètre à l’aide d’une solution saline tamponnée au phosphate (PBS, pH 7,4, tampon phosphate 0,01 M, chlorure de potassium 0,0027 M et chlorure de sodium 0,137 M) en double. Vortex, et chargez les tubes du luminomètre dans le luminomètre et mesurez la bioluminescence (unité de lumière relative [RLU]/mL) en utilisant l’aldéhyde n-décyle comme substrat (1 % v/v dans l’éthanol absolu).
note: Le rapport entre les UBR/unités formant colonie (UFC) a déjà été déterminé à 3:1 lorsque le BCG lux a été cultivé in vitro dans un bouillon Middlebrook 7H9.
- Centrifuger la culture à 2 175 x g pendant 10 minutes à température ambiante pour granuler les cellules et jeter le surnageant dans un désinfectant approprié ayant une activité mycobactéricide connue. Jetez tous les déchets de culture avec des désinfectants appropriés pour les mycobactéries en suivant les directives locales.
- Lavez la pastille cellulaire deux fois dans du PBS contenant 0,05 % de polysorbate 80 (PBS-T) pour éviter l’agglutination bactérienne.
- Après le lavage final, décantez le surnageant des déchets, remettez en suspension la pastille de cellules mycobactériennes dans du PBS-T et diluez la suspension mycobactérienne à la densité cellulaire souhaitée à l’aide de mesures RLU.
- Préparer des dilutions en série de dix fois de l’inoculum dans des plaques de 24 puits à l’aide de PBS-T. Déposer 10 μL sur des plaques de gélose Middlebrook 7H11 (0,5 % de glycérol, 50 μg/mL d’hygromycine, 10 % d’acide oléique, d’albumine, de dextrose, de catalase [OADC]) en double pour dénombrer le nombre d’UFC de l’inoculum.