1. Biotinylation de la surface cellulaire du BCG
- Cultivez du BCG dans un bouillon Middlebrook 7H9 avec 10 % d’OADC (solution d’acide oléique, d’albumine et de dextrose) et 0,05 % de Tween 80 à 37 °C sur une plate-forme agitée à 50 tr/min jusqu’à ce que OD = 0,5-1,
REMARQUE : Le BCG est un agent pathogène de biosécurité de niveau 2 et toutes les expériences concernant le BCG doivent être effectuées dans une enceinte de biosécurité avec un équipement de protection individuelle approprié.
- Laver 10à 9 BCG 3 fois avec 500 μL de PBS glacé sans endotoxines plus 0,1 % de Tween80 (PBST) (pH 8,0). Suspendre la pastille BCG dans du PBS stérile sans endotoxines.
- Immédiatement avant l’utilisation, préparer 1 mL de 10 mM de biotine Sulfo-NHS SS dans de l’eau filtrée stérile.
- Incuber les bactéries avec 1 mL de 0,5 mM de biotine Sulfo-NHS SS à température ambiante pendant 30 min.
- Lavez les bactéries marquées 3 fois avec 500 μL de PBST glacé à froid pour éliminer le réactif de biotinylation n’ayant pas réagi.
- Remettre la pastille en suspension dans 1 mL de PBST.
2. Liaison de la protéine monomère de fusion d’avidine à la surface biotinylée du BCG
- Mélanger 5 x 108 BCG biotinylé avec de la protéine Avi (10 μg/mL final dans PBS-T) pendant 1 h à température ambiante sur une plate-forme agitée.
- Laver les bactéries 3 fois avec 500 μL de PBST glacé à froid.