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Article de méthode

Silençage génique médié par siRNA dans des cellules souches neurales

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Nguyen, B. H., et al. Culture et manipulation des cellules de la crête neurale O9-1. J. Vis. Exp (2018)

Cette vidéo montre l’utilisation de petits ARN interférents (siRNA) pour réduire au silence des gènes d’intérêt spécifiques dans les cellules souches neurales et les différencier en types de cellules souhaités en utilisant un milieu de différenciation approprié. Cette procédure permet d’étudier le rôle critique de gènes spécifiques dans le processus de différenciation des cellules souches neurales.

Protocole

1. Manipulation des cellules O9-1

  1. Réalisation de l’inactivation de siRNA dans les cellules O9-1
    1. Décongelez et enduisez une plaque de 24 puits d’une matrice de membrane basale avant de commencer l’expérience. Récupérez et ensemencez les cellules O9-1, ce qui leur permet d’atteindre une confluence de 60 à 80 %.
    2. Diluez les liposomes dans un milieu sans sérum en fonction du volume de puits approprié. Diluer l’ARNi dans un milieu sans sérum jusqu’à la finale. Ajouter des siRNA dilués aux liposomes dilués dans un rapport recommandé par le fabricant. Bien mélanger par pipetage puis incuber.
      note: Suivez le guide du fabricant sur le volume utilisé, le temps et la température d'incubation.
    3. Ajouter un volume approprié de complexe siRNA-lipide aux cellules selon les recommandations du fabricant.
    4. Incuber des cellules pendant 24 h dans un incubateur de culture cellulaire standard (37 °C, 5 % CO2). Effectuer les étapes en aval au besoin (extraire l’ARN, extraire les protéines, coloration, etc.)
      REMARQUE : les temps d’inactivation et les concentrations des siRNA peuvent varier en fonction de l’expérience individuelle.

2. Différenciation des cellules O9-1

  1. Différenciation des cellules O9-1 en ostéoblastes
    1. Pour préparer un milieu de différenciation ostéogénique, diluer les éléments suivants dans de l’alpha-MEM (les concentrations finales sont indiquées) : 0,1 μM de dexaméthasone, 100 μg/mL de protéine morphogénétique osseuse 2 (BMP2), 50 μg/mL d’acide ascorbique, 10 mM de b-glycérophosphate, 10 % de FBS, 100 U/mL de pénicilline et 100 μg/mL de streptomycine.
    2. Détecter le marqueur ostéoblastique, l’ostéocalcine, dans les ostéoblastes différenciés par immunomarquage, comme le montre la figure 1.
      REMARQUE : La différenciation ostéogénique peut également être évaluée à l’aide d’autres marqueurs d’ostéoblastes ou d’une coloration au rouge d’alizarine ou à la phosphatase alcaline.
  2. Différenciation des cellules O9-1 en cellules musculaires lisses
    1. Pour préparer des milieux de différenciation des cellules musculaires lisses, diluer les éléments suivants dans du DMEM (les concentrations finales sont indiquées) : 100 U/mL de pénicilline, 100 μg/mL de streptomycine et 10 % de FBS.
    2. Améliore la différenciation des cellules musculaires lisses avec coloration par immunofluorescence en utilisant des anticorps contre les marqueurs des cellules musculaires lisses, tels que l’actine des muscles lisses (SMA), illustrée à titre d’exemple sur la figure 2.

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Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Coloration par immunofluorescence de l’ostéocalcine, marqueur de l’ostéocalcine (Ocn), indiquant que les cellules O9-1 ont donné naissance à des cellules ostéoblastiques dans des conditions de différenciation ostéogénique. Les cellules ont été colorées avec l’anticorps Ocn, un marqueur ostéoblastique (vert), et les noyaux ont été colorés avec du DAPI (bleu). Les flè...

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
O9-1 lignée cellulaire de la crête neurale crânienne de sourisMillipore SigmaSCC049
DMEM, glycémie élevée, sans glutamineGibcoRéférence 11960-044
DMEM, hyperglycémieHycloneSH30243.01
FBS (sérum fœtal bovin)Millipore SigmaES-009-B
Pénicilline - streptomycineGibcoRéférence 15140-122
L-glutamine 200mM (100X)GibcoRéférence 25030-081
Trypsine-EDTA 0,25 % dans HBSSGenesee Scientific25 à 510
DPBS (solution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco) sans calcium ni magnésiumLonza17-512F
Acides aminés non essentiels MEM (MEM NEAA) 100XGibcoRéférence 11140-050
Pyruvate de sodium (100mM)GibcoRéférence 11360-070
2-MercaptoéthanolsigmaM-7522
Facteur de croissance des fibroblastes humains recombinants-basique (rhFGF-basic)Systèmes de R&DRéférence 233-FB-025
Mitomycine CRoche10107409001
Matrice matrigelCorning356234
DMSO (diméthylsulfoxyde)Millipore SigmaRéférence : MX1458-6
Lipofectamine RNAiMAXThermo Fisher ScientificRéférence 13778-075
Opti-MEM I (1X)GibcoRéférence 31985-070
Milieu essentiel minimum, alpha 1X avec sels d'Earle, ribonucléosides, désoxyribonucléosides et L-glutamineCorning10-022-CV
ARNi ON-TARGETplus Wwtr1DharmaconL-041057
Groupe de non-ciblage ON-TARGETplusDharmaconD-001810
ARNi ON-TARGETplus Yap1DharmaconL-046247
FCS (sérum de veau fœtal)
ITS (insuline-transfertrine-sélénium)
TGF-b3
acide ascorbique
BMP2 (protéine morphogénétique osseuse 2)
dexaméthasone
Supplément B-27

Étiquettes

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