Techniques de culture neuronale

La vidéo montre une méthode de culture de neurones à partir d’hippocampes murins. Initialement, l’hippocampe subit une digestion enzymatique pour décomposer la matrice tissulaire extracellulaire. Par la suite, le tissu digéré est perturbé mécaniquement pour isoler les neurones individuels. Enfin, ces neurones sont cultivés sur des cellules nourricières gliales.

Cette vidéo montre la méthode de culture de neurones embryonnaires cryoconservés, impliquant une décongélation contrôlée, une dilution avec un milieu neurobasal et un ensemencement sur une plaque recouverte de poly-L-lysine. L’incubation ultérieure favorise la croissance et le maintien des connexions neuronales.

La vidéo illustre une technique de culture de neurones GABAergiques et glutamatergiques fluorescents à partir du cortex et des tissus hippocampiques de bébés souris transgéniques. Le processus comprend l’obtention de suspensions unicellulaires purifiées de neurones, le tri des neurones GABAergiques en fonction de leur expression de protéine de fluorescence et leur ensemencement sur des plaques recouvertes de poly-L-lysine pour faciliter la fixation et la prolifération cellulaire.

La vidéo montre une technique de culture d’astrocytes primaires à partir du cortex du rat. Le cortex est dissocié mécaniquement pour obtenir une suspension homogène de cellules gliales, qui est ensuite plaquée sur des plaques recouvertes de polypeptides pour favoriser la prolifération sélective des astrocytes. Par la suite, les astrocytes sont dissociés enzymatiquement des plaques et transférés dans des milieux frais, permettant la culture d’astrocytes purs.

La vidéo montre une technique permettant d’isoler la microglie du cortex d’un cerveau de souris adulte. Tout d’abord, le cortex subit une segmentation et une homogénéisation pour éliminer les neurones et autres cellules gliales, préservant ainsi la microglie. Ensuite, la suspension cellulaire est exposée à des microbilles magnétiques anti-myéline et à un champ magnétique, séparant efficacement les cellules microgliales et myéloïdes des débris de myéline et des cellules contenant de la myéline.

La vidéo montre une méthode simple pour cultiver des astrocytes murins isolés d’autres cellules cérébrales. Au cours de la culture, en utilisant des milieux spécifiques aux astrocytes et en inhibant l’adhérence des cellules non astrocytaires, la méthode cultive sélectivement les astrocytes. Ces astrocytes cultivés présentent une morphologie étoilée avec des processus fins.

La vidéo démontre une méthode de génération de neurones corticaux excitateurs à partir de cellules souches pluripotentes induites par l’homme (hiPSC). Lors de l’induction de la doxycycline, les hiPSC surexpriment la neurogénine-2, un facteur de transcription spécifique aux neurones. En utilisant des milieux spécifiques et en co-cultivant avec des astrocytes, ce processus facilite la différenciation des hiPSC en neurones avec des connexions synaptiques.

Cette vidéo montre une technique permettant de générer une culture primaire de neurones et de cellules gliales à partir de la vessie d'un rat. Il décrit les étapes de la préparation des tissus, de la digestion enzymatique pour obtenir des cellules uniques et de la culture des cellules dans un milieu spécifique aux neurones pour établir une culture neuronale et gliale primaire.

Cette vidéo démontre l’utilisation d’une puce microfluidique en plastique pré-assemblée pour la culture compartimentée de neurones hippocampiques primaires de rat. Les neurones sont plaqués dans l'un des compartiments microfluidiques, où ils se fixent et se développent, étendant leurs axones à travers les microsillons de la puce dans le compartiment adjacent. Les microsillons étroits empêchent les corps cellulaires neuronaux d’entrer, permettant ainsi une séparation physique entre les...

Cette vidéo montre la technique d’isolement et de culture des neurones granulaires cérébelleux primaires de souris. Les cellules sont traitées avec un antimétabolite pour éliminer les cellules gliales proliférantes et produire une culture pure de neurones granulaires cérébelleux.

Cette vidéo montre le processus d’isolement des explants de ganglions spiralés de l’oreille interne et de leur co-culture avec l’organe de Corti sur un réseau de multiélectrodes. Les ganglions en spirale sont soigneusement extraits et sectionnés en sections de tissus plus petites ou en explants. Ces explants sont cultivés sur la zone active du réseau de multiélectrodes pour favoriser la croissance des processus neuronaux.

La vidéo montre une méthode de culture de cellules ganglionnaires rétiniennes primaires à partir d’embryons de poisson-zèbre. Les embryons à un stade précoce subissent une dissection pour isoler les yeux, qui sont ensuite dissociés mécaniquement en une suspension de cellules ganglionnaires rétiniennes. Cette suspension cellulaire est cultivée sur des lamelles recouvertes de protéines adhésives pour faciliter le développement des axones.

Cette vidéo présente une technique permettant de générer des cellules neuronales à partir de cellules souches pluripotentes dérivées du sang (BD-PSCs). Les BD-PSCs sont obtenues en reprogrammant les cellules progénitrices du sang. Les BD-PSC indifférenciées sont cultivées sur des lamelles recouvertes de substrat de culture cellulaire à l’aide d’un milieu d’induction neurale et d’un milieu de différenciation neurale, déclenchant la différenciation en cellules avec un phénotype neuronal.

Cette vidéo présente une méthode d’isolement et de culture de microglie à partir de cerveaux de rats. Il s’agit de séparer la microglie d’autres cellules neuronales et non neuronales à l’aide de plaques recouvertes d’un anticorps monoclonal spécifique de la microglie.

La vidéo montre le processus d'isolement et de culture de cellules souches neurales de la zone sous-calleuse du cerveau de la souris. Il s’agit de disséquer des tissus, de les dissocier enzymatiquement et de les cultiver avec des facteurs de différenciation pour qu’ils se transforment en cellules neurales matures.

La vidéo démontre la différenciation des cellules souches embryonnaires de souris (CSEm) en corps embryoïdes (EB) par la méthode de la goutte suspendue. Lors de la suspension des CSEm dans des gouttes suspendues et de l’incubation, les cellules s’agrègent pour former des EB, qui sont ensuite différenciées en cellules progénitrices neuronales (NPC) à l’aide d’un milieu de différenciation complété par de l’acide rétinoïque (AR).

Cette vidéo présente un protocole détaillé pour isoler les parois du ventricule latéral du cerveau de souris adulte et effectuer une dissociation enzymatique du tissu pour obtenir des cellules uniques. Ces cellules sont ensuite soumises à des conditions de culture spécifiques qui favorisent sélectivement la prolifération des cellules souches neurales et favorisent leur différenciation en co-cultures d’oligodendrocytes et d’astrocytes.

Cette vidéo présente une technique permettant d’isoler des cellules progénitrices neurales induites (iNPCs) dérivées de fibroblastes humains adultes. Il décrit les étapes à suivre pour isoler les colonies d’iNPC et les cultiver dans des puits à plaques multipuits recouverts de laminine en présence de milieux de culture appropriés qui facilitent la prolifération et l’expansion continues de la population d’iNPC.

Cette vidéo montre la méthode de culture de neurones à très faible densité en présence d’une couche nourricière neuronale à haute densité. Il établit une co-culture de neurones de densité variable, assurant une proximité physique étroite. Les facteurs de croissance sécrétés par les neurones à haute densité aident à la survie et à la croissance neuronales, en maintenant les neurones à très faible densité pendant une plus longue période.

Cette vidéo présente une technique permettant de transformer des cellules de neuroblastome SH-SY5Y indifférenciées en neurones matures entièrement différenciés à l’aide d’une technique de passage systématique. Cela implique de cultiver les cellules dans une série de milieux avec des taux sériques décroissants pour inhiber la prolifération des cellules épithéliales tout en favorisant la différenciation et la prolifération des cellules neuronales. De plus, le milieu est complété par de l’acide...

Cette vidéo démontre l’isolement des cellules des ganglions sensoriels de souris. Les ganglions sont soumis à une digestion enzymatique pour dissoudre la matrice extracellulaire. Les cellules individuelles sont ensuite collectées par filtrage à travers une crépine de cellules, suivi d’une centrifugation à gradient de densité pour l’élimination des débris. Enfin, le lavage et la centrifugation sont effectués pour collecter les cellules isolées en vue d’une analyse future.

Cette vidéo démontre la dissociation et la culture des neurones de l’hippocampe à partir d’échantillons de tissu hippocampique à l’aide de dissociations enzymatiques et mécaniques. Le traitement avec Ara-C inhibe la croissance des cellules non neuronales, facilitant la croissance sélective des neurones de l’hippocampe.

Cette vidéo décrit une méthode de culture de neurones dopaminergiques à partir de tissu cérébral embryonnaire de souris. Le processus comprend le traitement du mésencéphale avec une enzyme protéolytique, le détachement des cellules et leur culture sur des lamelles enrobées de polymère dans un milieu riche en nutriments avec des antibiotiques pour leur croissance et leur viabilité à long terme.

Cette vidéo montre l'isolement et la culture de cellules progénitrices neurales cérébelleuses à partir du cervelet d'un petit souris. Les progéniteurs des neurones granulaires cérébelleux sont isolés et purifiés par adhésion différentielle, éliminant efficacement les astrocytes. Ces progéniteurs cultivés se différencient ensuite en neurones granulaires cérébelleux.

Cette vidéo montre une méthode permettant d’isoler des neurones marqués par fluorescence dans le cerveau d’une souris.

Cette vidéo montre la construction d’un système de culture cellulaire à trois compartiments à l’aide de collagène et de graisse non réactive. Ce système est utilisé pour observer les interactions entre les cellules de gliome et les axones en temps réel.

Cette vidéo présente une méthode permettant d'isoler les neurones vestibulaires de l'oreille interne d'un bébé souris. Il décrit méticuleusement les étapes de la dissection de l’oreille interne, de la récolte du ganglion vestibulaire, puis de la dissociation du ganglion en cellules uniques. Ces cellules sont ensuite cultivées sur des boîtes à fond de verre pour établir une culture de neurones vestibulaires.

Cette vidéo présente une technique permettant d’isoler et de cultiver des cellules précurseurs d’oligodendrocytes (OPC) à partir du cortex cérébral d’un petit de souris.

Cette vidéo présente une méthode pour développer des ganglions de la racine dorsale ou une culture d’explants DRG et des modèles cellulaires dissociés de DRG à l’aide de tissus DRG de souris isolés. Ces modèles aident à étudier divers mécanismes d’interactions neurones-gliales dans un environnement contrôlé.

La vidéo montre la préparation de tranches de cerveau colliculo-thalamocorticale à partir de cerveaux de bébés souris. Un cerveau isolé est aligné sur une lame marquée et coupé à un angle pour aligner le mésencéphale auditif et le cerveau antérieur dans le même plan. Le cerveau est ensuite tranché à l’aide d’un vibratome, et les tranches contenant les principales structures auditives du mésencéphale et du cerveau antérieur sont transférées dans une chambre de stockage pour la préservation.

Cette vidéo présente une méthode de prélèvement de neurones dans les ganglions de la racine dorsale (DRG). Les DRG de la colonne vertébrale d'un rat sont isolés, traités avec des enzymes, puis dissociés mécaniquement pour obtenir une suspension unicellulaire. Les neurones sont séparés des cellules gliales par centrifugation à gradient de densité et cultivés dans un milieu de croissance.

Cette vidéo présente une méthode pour isoler les cellules souches neurales/progénitrices du tissu périventriculaire de la moelle épinière chez des rats adultes. La technique comprend l’incubation des fragments de tissu dans une solution contenant des enzymes protéolytiques pour perturber la matrice extracellulaire et libérer les cellules. Par la suite, les cellules libérées sont plaquées dans un milieu contenant des facteurs de croissance spécifiques qui favorisent la prolifération des souches...

Cette vidéo présente un protocole permettant d’obtenir une suspension unicellulaire hautement viable à partir de l’hippocampe du cerveau de la souris en utilisant une combinaison de dissociation mécanique automatisée et d’un mélange d’enzymes pour faciliter la digestion enzymatique.

La vidéo montre la préparation d’une suspension unicellulaire de cellules immunitaires à partir d’un tissu cérébral murin. Il implique une digestion enzymatique pour libérer les cellules du tissu cérébral, suivie d’une centrifugation à gradient de densité pour isoler les cellules immunitaires en fonction de leur densité afin d’obtenir la suspension unicellulaire.

Cette vidéo présente une méthode permettant d’isoler des cellules oligodendrocytaires primaires à partir d’une suspension de cellules neurales obtenue à partir d’un bébé souris en utilisant la séparation magnétique. La technique utilise des billes magnétiques recouvertes d’anticorps spécifiques aux antigènes des oligodendrocytes, permettant l’isolement sélectif de ces cellules.

Cette vidéo décrit l’isolement et la culture de cellules de Schwann à partir de racines spinales de souris. Des cellules isolées sont ensuite cultivées dans des milieux spécifiques. Les cellules de Schwann sont isolées par digestion différentielle et par adhérence. Ils sont ensuite transférés sur des lamelles recouvertes d’une matrice extracellulaire pour être fixés et proliférer.

Cette vidéo présente un protocole détaillé pour la préparation de coupes horizontales de cerveau d’hippocampe à partir de souris, en se concentrant sur la préservation de l’intégrité des voies des fibres de l’hippocampe. Le processus consiste à couper et à fixer soigneusement le cerveau, à utiliser un vibratome pour le tranchage et à maintenir des conditions tissulaires optimales avec un liquide carbogéné, ce qui permet d’obtenir des tranches de cerveau d’hippocampe prêtes pour d’autres...

La vidéo montre la génération de tranches d’amygdale inclinées à partir d’un cerveau de souris. Le cerveau est positionné à un angle sur la platine de l’échantillon de vibratome pour obtenir des coupes contenant l’amygdale et les axones du cortex préfrontal médian qui forment des connexions synaptiques avec l’amygdale. Les tranches de cerveau sont maintenues à la température physiologique afin de préserver le tissu pour d’autres expériences.

Cette vidéo montre la préparation de fines tranches de cerveau coronal à partir d’un cerveau murin, exposant les régions amygdales riches en connexions synaptiques du cortex préfrontal médian. Les tranches sont ensuite récupérées dans du liquide céphalo-rachidien artificiel oxygéné pour maintenir la viabilité neuronale.

Cette vidéo présente un protocole d’extraction de cellules microgliales à partir de lésions démyélinisantes dans le cerveau de souris à l’aide du tri cellulaire magnétique. Le protocole consiste à disséquer le tissu cérébral lésé contenant des cellules microgliales, à traiter le tissu avec des enzymes spécifiques pour obtenir une suspension unicellulaire et à utiliser des billes magnétiques spécifiques des récepteurs microgliaux pour isoler les cellules microgliales.

Cette vidéo démontre l’isolement de plusieurs types de cellules à partir de tissus cérébraux de souris. Les tissus sont d’abord cisaillés mécaniquement à l’aide d’un broyeur de tissus dans une solution saline pour maintenir un équilibre osmotique. L’homogénat tissulaire est ensuite soumis à une centrifugation par gradient de densité pour éliminer les débris cellulaires. Les cellules sont ensuite remises en suspension dans une solution pour une analyse plus approfondie.

Cette vidéo montre la procédure d’isolement des cellules immunitaires des plexus choroïdes de souris. Cette procédure est utilisée dans la recherche en neuroimmunologie pour comprendre comment les cellules immunitaires du plexus choroïde affectent la santé du cerveau et diverses maladies neurologiques.

La vidéo a démontré la méthode d’isolement et de culture de cellules à partir du cerveau d’une souris néonatale. Il impliquait une dissociation enzymatique et mécanique du cerveau, suivie d’une culture dans un milieu de croissance dépourvu de facteur de croissance neuronale pour obtenir une population gliale mixte.

Cette vidéo montre la procédure d’isolement et de tri des noyaux de tissus cérébraux humains fraîchement congelés à l’aide du tri des noyaux activés par fluorescence (FANS), ce qui permet d’étudier différentes populations cellulaires pour diverses applications neurologiques.

Cette vidéo présente un protocole permettant d’isoler les cellules de l’hippocampe du rat, y compris les neurones, les astrocytes et la microglie.

Cette vidéo démontre l’isolement de neurones marqués par fluorescence chez Caenorhabditis elegans. Une suspension cellulaire est obtenue à partir de vers transgéniques conçus pour exprimer des transporteurs transmembranaires vésiculaires fusionnés par des protéines fluorescentes dans les neurones cholinergiques. Les neurones marqués par fluorescence sont ensuite isolés à l’aide du tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) et maintenus en culture.

La vidéo montre la préparation des tranches de cervelet. Il montre une procédure détaillée pour isoler le cervelet d’un embryon de poulet. Les tranches sont ensuite préparées à partir du cervelet disséqué à l’aide d’un hachoir à tissus pour une analyse expérimentale plus approfondie.

Cette vidéo montre la procédure d’isolement des cellules ganglionnaires primaires de la rétine (CGR) murines à l’aide de la cytométrie en flux. Cette méthode permet l’étude future des CGR, dans le but de mieux comprendre le déclin majeur de l’acuité visuelle qui résulte de la perte des CGR fonctionnels dans les maladies neurodégénératives.

Cette vidéo décrit l’isolement d’un organe voméronasal (VNO) de souris et la préparation des tissus pour la section du vibratome. Les coupes sont utilisées pour caractériser les attributs biophysiques et physiologiques d’un groupe spécifique de neurones sensoriels.

Cette vidéo présente un protocole permettant d’isoler et de cultiver des cellules primaires du cortex cérébral à partir du télencéphale dorsolatéral d’embryons de souris.

Cette vidéo montre une technique permettant d’isoler et de cultiver des cellules de ganglions de la racine dorsale (DRG) de la colonne vertébrale du rat. Les DRG excisés de la colonne vertébrale sont traités par des enzymes et dissociés mécaniquement pour obtenir une suspension unicellulaire. Les cellules sont cultivées dans un milieu contenant des inhibiteurs et des facteurs de croissance qui limitent la prolifération des cellules gliales et favorisent la croissance neuronale, respectivement.

La vidéo montre le processus d’isolement et de culture des neurones dopaminergiques du mésencéphale d’embryons de souris. Les planchers ventraux isolés du mésencéphale sont dissociés à l’aide d’enzymes. Les neurones dopaminergiques qui en résultent sont récoltés et transférés dans des micro-îlots à l’intérieur de plaques multi-puits. Les cellules sont incubées avec un milieu neuronal dopaminergique pour maintenir les cellules à une densité élevée à l’intérieur des micro-îles.

Cette vidéo présente une méthode pour différencier les cellules progénitrices neurales humaines (NPC) en neurones. Les NPC sont introduits dans une co-culture établie de neurones corticaux astrocytes-rats de souris, favorisant la différenciation des NPC en neurones. La différenciation est confirmée par la visualisation des cellules au microscope confocal.

Cette vidéo présente une technique de co-culture de neurones glutamatergiques et de cellules de gliome pédiatrique de haut grade (pHGG) au sein d’un dispositif microfluidique. Les cellules souches pluripotentes humaines induites sont introduites dans le système microfluidique et incubées pour favoriser leur différenciation en neurones glutamatergiques corticaux matures. Ensuite, les cellules pHGG sont introduites dans les neurones matures, établissant une co-culture et permettant des...

Cette vidéo illustre une méthode permettant d’établir une co-culture indirecte neurone-astrocytes en utilisant une approche compartimentée. Dans cette configuration, les neurones et les astrocytes sont séparés spatialement mais partagent un milieu conditionné. Les facteurs neurotrophiques libérés par les astrocytes favorisent la différenciation des neurones et la formation de connexions synaptiques, suggérant des interactions neurones-glies.

Cette vidéo montre la co-culture de neurones ganglionnaires murins de la racine dorsale et de macrophages. Les neurones sont ensemencés sur une plaque revêtue, tandis que les macrophages sont prélevés sur une souris euthanasiée, traités et ajoutés à l’insert de culture. Le traitement par db-cAMP active les neurones et incite les macrophages à adopter un phénotype pro-régénératif pour soutenir la croissance neuronale.

Cette vidéo présente un test pour favoriser la croissance des projections de neurones connues sous le nom de croissance des neurites en utilisant le milieu conditionné par les macrophages. Co-cultivez des neurones et des macrophages avec l’AMPc et récoltez le milieu conditionné dérivé des macrophages. La croissance des neurones avec le milieu conditionné favorise les excroissances de neurites. Ces excroissances sont marquées par fluorescence et visualisées à l’aide d’un microscope à...

Cette vidéo montre le processus de préparation des tissus de l’hippocampe ventral et du noyau accumbens à partir de cerveaux de souris pour la co-culture. Les neurones étendent les projections pour former des connexions synaptiques entre les tissus de l’hippocampe ventral et du noyau accumbens. Cette méthode permet d’étudier les interactions neuronales entre ces deux régions du cerveau, offrant des informations sur la cognition, le comportement et les troubles neurologiques.

Cette vidéo présente une technique permettant d’établir une co-culture de neurones trigéminaux et de cellules primaires de la pulpe dentaire à l’aide d’un filtre transwell. Dans cette condition physiquement séparée, les cellules mésenchymateuses obtenues à partir du tissu de la pulpe dentaire sécrètent des molécules de signalisation paracrine qui traversent les pores, favorisant la différenciation et la migration des neurones vers les cellules mésenchymateuses établissant un système de...

Cette vidéo présente une technique permettant d’établir une co-culture d’interneurones avec des cellules endothéliales périvasculaires. Les cellules sont ajoutées à un insert à un puits placé à l’intérieur d’une boîte de culture. Une fois que les cellules ont adhéré à la boîte, l’insert est retiré, ce qui permet aux cellules de proliférer et d’interagir et de former une co-culture.

Cette vidéo montre le développement d’un système de co-culture 3D. Des tranches de cerveau de souris sont placées sur une membrane et des cellules tumorales cérébrales humaines marquées par fluorescence sont autorisées à se développer dessus. Une fois que le système est prêt, il est coloré pour l’imagerie.

La vidéo démontre la régénération fonctionnelle des connexions propriospinales à l’aide d’un test basé sur un réseau d’électrodes multiples (MEA). Les tranches de moelle épinière sont placées sur le MEA et sont laissées fusionner. Les tranches fusionnées sont séparées mécaniquement en créant une lésion, ce qui incite les neurones propriospinaux à se développer sur la lésion et à relier les tranches. L’activité électrique des tranches est évaluée afin d’identifier la régénération des connexions...

La vidéo démontre l’isolement de cellules mononucléées du sang périphérique infiltrant la tumeur à partir d’un cerveau de souris en utilisant la dissociation mécanique et la digestion enzymatique. Ceci est suivi d’une centrifugation à gradient de densité pour collecter les cellules immunitaires pour une analyse plus approfondie.

Cette vidéo présente une technique d’élimination sélective de la microglie à partir d’une culture neuronale primaire de rat. Les neurones granulaires cérébelleux sont traités avec un antimétabolite pour éliminer les cellules gliales proliférantes. De plus, ils sont traités avec des agents ciblant les lysosomes pour épuiser la microglie de la culture.

Cette vidéo montre une procédure de co-culture des astrocytes et des neurones pour former des sphères 3D. Ces sphères 3D fournissent une plate-forme distincte pour l’examen de la formation des synapses et de l’intégration des réseaux neuronaux, servant ainsi de modèle potentiel pour la recherche en neurosciences du développement, en maladies neurodégénératives et en interventions neuropharmacologiques.

Cette vidéo montre une procédure permettant d’isoler les neurones du ganglion de la racine dorsale (DRG) à partir d’embryons de rats et de les co-cultiver avec des précurseurs de cellules de Schwann pour générer des cellules de Schwann matures. Les DRG isolés sont traités pour isoler les neurones et les cellules gliales. Les cellules isolées sont cultivées pour purifier les neurones, qui sont ensuite co-cultivés avec des cellules de type cellules de Schwann (SCLC) dans un milieu de co-culture.

Cette vidéo démontre la co-culture du péricyte, de l’astrocyte et des cellules endothéliales du cerveau humain. Chaque couche cellulaire est formée séparément puis cultivée ensemble, créant un système à trois couches qui imite l’arrangement cellulaire de la barrière...

Cette vidéo démontre l’établissement d’une co-culture de neurones induits humains (iNs) et de cellules précurseurs d’oligodendrocytes induits (iOPC). Les iN sont mélangés avec des iOPC dans une co-culture, puis incubés pour soutenir la maturation des iN en neurones et des iOPC en oligodendrocytes. Les neurones forment des connexions synaptiques avec d'autres neurones et oligodendrocytes, tandis que les oligodendrocytes développent des gaines de myéline autour des axones des neurones.

Cette vidéo démontre l’utilisation d’un dispositif microfluidique pour étudier les interactions entre la pulpe du germe dentaire et les ganglions du trijumeau. Il met en valeur le placement des tissus à l'intérieur du dispositif microfluidique et fournit une visualisation détaillée de la croissance des neurites trijumeaux vers le germe de la dent à travers les microsillons du dispositif. De plus, il met en évidence le rôle des facteurs moléculaires dérivés de la dent dans la promotion ou...

Cette vidéo montre la procédure permettant d'isoler les neurones ganglionnaires rétiniens (RGN) de la rétine d'un rat et de les co-cultiver avec des cellules gliales olfactives engainantes (OEG). Cette méthode permet d’étudier le potentiel neuro-régénératif des OEG après une lésion neuronale.

Cette vidéo montre la méthode permettant de différencier les cellules souches neurales humaines des neurosphères en progéniteurs neuraux et astrocytaires à l’aide d’un traitement enzymatique et d’une culture dans un milieu riche en facteurs de croissance, ce qui conduit finalement à la maturation en cellules progénitrices spécialisées.

Cette vidéo décrit la création d'organoïdes de type cerveau antérieur à partir de cellules souches pluripotentes induites humaines (iPSC), démontrant la progression des agrégats de cellules souches vers des structures complexes qui imitent le cortex cérébral et se différencient en divers types de neurones.

La vidéo démontre la co-culture des neurones du ganglion de la racine dorsale (DRG) avec les cellules de Schwann. Les neurones DRG sont d’abord cultivés sur une membrane pré-étirée pour une croissance axonale alignée. Des cellules de Schwann sont ensuite introduites, qui se fixent aux axones, les isolant et favorisant la survie et la fonction des cellules neurales.

Cette vidéo présente un protocole permettant d’enrichir les cultures neuronales des ganglions de la racine dorsale par immunopanoramique, améliorant ainsi leur pureté et leur utilité pour la recherche neurologique.

Cette vidéo présente un protocole permettant d’identifier les facteurs exogènes qui déclenchent la réactivation des cellules souches neurales du cerveau de la drosophile à partir de leur état de repos. Des larves fraîchement écloses sont disséquées pour isoler leur cerveau, qui est ensuite cultivé dans des milieux avec ou sans hormone de test afin d'évaluer le potentiel de l'hormone à induire la réactivation et la prolifération des cellules souches neurales.

Cette vidéo présente un protocole de co-culture de cellules endothéliales cérébrales de souris et de cellules souches corticales primaires et de marquage des glycoprotéines de surface cellulaire à l’aide d’Ac4ManNAz (azidosugar per-O-acetylated N-azidoacetylmannosamine). Cette méthode permet l’enrichissement sélectif et l’identification des protéines de surface cellulaire dans les cellules primaires.

Cette vidéo montre le modèle de coculture d’un explant ganglionnaire de la racine dorsale et de cellules de Schwann. Dans des conditions de coculture, l’acide ascorbique favorise la différenciation des cellules de Schwann en formes myélinisantes. Les cellules de Schwann myélinisantes enveloppent les axones plusieurs fois pour créer une gaine de myéline, essentielle à la fonction nerveuse.

Cette vidéo décrit l’isolement des neurones DRG par digestion enzymatique, dissociation mécanique et centrifugation par gradient. Les cellules DRG sont co-cultivées avec des cellules tueuses naturelles sur une matrice extracellulaire pour étudier l’interaction entre les cellules immunitaires et les neurones sensoriels.

Cette vidéo présente une technique d’évaluation de l’activité de l’acide rétinoïque chez les embryons de souris. Après avoir isolé des cellules d’embryons de souris, les cellules sont co-cultivées avec des cellules rapporteures d’acide rétinoïque (AR). Les cellules embryonnaires produisent de l’AR, qui induit l’expression de la bêta-galactosidase dans les cellules rapporteures, indiquant l’activité de l’AR dans les cellules embryonnaires.

Cette vidéo présente une technique permettant de générer un système de modèle de co-culture tridimensionnel de fibroblastes cornéens humains primaires et de cellules neuronales différenciées. Ce système de co-culture peut être utilisé pour étudier les interactions stromales-nerveuses.

La vidéo présente un protocole qui utilise des milieux sans sérum pour générer des progéniteurs neuronaux à partir de cellules souches embryonnaires de souris. La concentration souhaitée de cellules souches embryonnaires, en suspension dans un milieu sans sérum, est plaquée sur des lamelles enrobées de gélatine. À une densité cellulaire optimale, les cellules produisent des facteurs de signalisation autocrines qui, avec les facteurs induisant la différenciation neurale dans le milieu sans...

Cette vidéo présente le développement et la différenciation des cellules souches neurales humaines au sein d’un échafaudage tridimensionnel. Un revêtement de laminine sur l’échafaudage favorise l’attachement cellulaire, tandis qu’un milieu neural sans facteur de croissance induit la différenciation cellulaire en cellules progénitrices neurales, qui étendent leurs processus au sein d’une architecture poreuse dans plusieurs directions, formant une culture...

Cette vidéo présente une méthode in vitro pour générer des neurones sympathiques postganglionnaires à partir de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC). Les hPSC sont différenciées en cellules de crête neurale (NCC) sur un support de matrice de membrane basale à l’aide d’un milieu de différenciation. Les NCC sont ensuite dissociés et formés en sphéroïdes à l’aide d’un autre milieu de différenciation. Enfin, les sphéroïdes sont transformés en neurones sympathiques postganglionnaires à...

Cette vidéo démontre la génération et la différenciation des neurosphères primaires. Les cellules souches neurales du poisson-zèbre, en présence de facteurs de croissance, prolifèrent dans des neurosphères flottantes avec une capacité d’auto-renouvellement, qui se différencient ensuite en cellules gliales et en neurones.

La vidéo montre une méthode de génération d’organoïdes cérébraux humains à partir de cellules souches pluripotentes induites. Il montre comment la neurosphère forme une couche neuroectodermique, qui supprime la formation d’autres couches germinales. Les neurosphères sont intégrées dans une matrice de gel 3D et forment des bourgeons neuroépithéliaux. Lorsqu’ils sont incubés avec des organes organoïdes, ces bourgeons neuroépithéliaux se différencient en régions cérébrales spécifiques, ce qui...

Cette vidéo montre l’utilisation d’une puce microfluidique recouverte d’une matrice extracellulaire pour différencier les cellules souches neurales et les cellules progénitrices ou NPC par stimulation électrique. Après l’ensemencement et l’adhérence à la région enrobée, les NPC se développent, et l’application d’un courant continu déclenche leur différenciation en neurones, astrocytes et oligodendrocytes.

Cette vidéo montre un test permettant de générer des organoïdes cérébraux à partir de cellules souches pluripotentes induites (iPSC). Les iPSC humaines sont amenées à former des corps embryoïdes (EB). Les EB sont cultivés sur un échafaudage polymère à l’aide d’un milieu d’induction, favorisant la différenciation en cellules souches neurales, cellules progénitrices et neurones immatures. Enfin, les EB sont intégrés dans une matrice et transférés dans un milieu d’entretien pour la formation...

La vidéo démontre la formation des jonctions neuromusculaires à l’aide d’un dispositif microfluidique. Les cellules précurseurs neurales et les cellules progénitrices musculaires sont ensemencées dans différents puits à l’intérieur du dispositif et laissées mûrir en motoneurones et en myotubes, respectivement. La création d’un gradient volumique et chimique conduit au développement de jonctions neuromusculaires actives.

Cette vidéo démontre le développement d’une culture neuronale 3D couplée à un réseau de microélectrodes planes avec des neurones de l’hippocampe. Les neurones isolés forment un réseau 2D sur la zone active du réseau de microélectrodes et adhèrent aux microbilles de verre dans une plaque multipuits avec un insert de membrane. Lors du transfert de ces microbilles enrobées de neurones dans l’électrode, elles s’organisent en un réseau neuronal 3D interconnecté.

Cette vidéo montre le processus de génération de boules de neurones à l’aide d’une technique de culture de gouttes suspendues. À l’intérieur des gouttes suspendues, les cellules se déplacent vers le bas, s’auto-assemblées en structures tridimensionnelles formant des boules de neurones, qui peuvent être utilisées pour des études neurobiologiques.

Cette vidéo présente une méthode de suivi du transport axonal dans les motoneurones à l’aide d’un système de chambre microfluidique. Il s’agit de cultiver des tissus embryonnaires de la moelle épinière de souris dans des puits recouverts de polymères avec un milieu nutritif pour induire la croissance axonale. Le mouvement des organites colorés par fluorescence dans l’imagerie en direct confirme le transport axonal bidirectionnel.

Cette vidéo présente la reprogrammation directe des astrocytes exprimant des facteurs de transformation en neurones. Les facteurs de transformation déclenchent une cascade d’événements moléculaires facilitant la conversion des astrocytes en neurones. Le processus est en outre soutenu par l’apport d’agents et de suppléments spécifiques par le biais d’un milieu de différenciation neuronale.

Cette vidéo montre le processus de préparation de tranches de cerveau en forme de coin en laboratoire. À l'aide d'un vibratome, une tranche en forme de coin du cerveau d'une souris est fabriquée avec une épaisseur variable. Cette tranche contient la racine nerveuse auditive positionnée à l’extrémité la plus épaisse, tandis que les neurones liés à l’audition sont situés à l’extrémité la plus mince.

Cette vidéo présente une technique pour favoriser la différenciation neuronale en exposant les cellules nerveuses à des nanotiges d’or et à la lumière laser, qui forme des projections cellulaires soutenues par la tubuline βIII. La coloration et l'observation de la tubuline et du noyau cellulaire par microscopie à épifluorescence révèlent les excroissances cellulaires, indiquant l'efficacité des nanobâtonnets dans la différenciation neuronale.

Cette vidéo démontre l’absorption de nanoparticules magnétiques fluorescentes (MNP) par les cellules neuronales via l’endocytose. La croissance de ces neurones chargés de MNP sur le substrat à motifs magnétiques permet la fixation des cellules. L’ajout d’un facteur de croissance contenant un milieu aide à la croissance des extensions neuronales, tandis que le champ magnétique du substrat dirige l’orientation de l’extension.

Cette vidéo démontre la différenciation des cellules souches embryonnaires humaines, ou CSEh, directement en cellules progénitrices neurales sans utiliser de cellules nourricières ou d’étapes intermédiaires. L’inhibition sélective des voies de signalisation de la protéine morphogénétique osseuse ou BMP et du facteur de croissance transformant-bêta, ou TGF-β, conduit à la différenciation des CSEh en cellules progénitrices neurales, ou NPC.

Cette vidéo montre une technique de préparation de cultures de tranches flottantes à partir du cerveau humain adulte. De fines tranches sont générées à partir d’une section de cerveau à l’aide d’un vibratome. Ces tranches sont ensuite suspendues dans un milieu de culture complété par des facteurs de croissance pour maintenir la viabilité des tissus.

Cette vidéo montre une méthode de préparation de cultures de tranches d’hippocampe organotypiques à partir du cerveau d’un ratillon. Il décrit les étapes impliquées dans la dissection de l’hippocampe, le tranchage et les conditions de culture nécessaires pour favoriser la viabilité cellulaire et la croissance dans les tranches de l’hippocampe, générant finalement des cultures de tranches organotypiques.

Cette vidéo décrit un protocole permettant d’obtenir des tranches de cerveau à l’aide d’une méthode de récupération protectrice basée sur la N-méthyl-D-glucamine (NMDG). Un cerveau disséqué est incubé dans un aCSF avec NMDG et HEPES pour minimiser la mort et les dommages aux cellules neuronales pendant la section. La section est autorisée à récupérer dans l’aCSF pour restaurer les activités...

Cette vidéo montre une méthode d’incubation prolongée du tissu neuronal de la rétine. Les œilletons contenant de la rétine sont obtenus à partir d’un œil de souris ; la membrane limitante interne (MLI) est digérée par voie enzymatique pour exposer les cellules neuronales de la rétine, et l’œilleton traité ou la rétine isolée est transféré dans un incubateur spécialisé pour une incubation prolongée à basse température.

Cette vidéo présente une technique permettant de générer des organoïdes cérébelleux matures à partir de cellules souches pluripotentes induites (CSPi) à l’aide d’un bioréacteur 3D à usage unique. Le bioréacteur facilite la formation d’agrégats d’iPSC, qui sont ensuite traités avec une série de milieux de culture enrichis en facteurs de croissance et en chimiokines qui induisent la différenciation des agrégats d’iPSC en organoïdes cérébelleux matures. Par la suite, les organoïdes sont récoltés...

Cette vidéo montre une technique permettant d’établir une culture tridimensionnelle de cellules gliales. Les cellules gliales dérivées du cerveau de rat sont encapsulées dans une matrice polymère photoréticulable contenant des composants de matrice extracellulaire. Lors de l’incubation dans un milieu de croissance, les cellules gliales prolifèrent dans la matrice de support pour créer une culture tridimensionnelle.

La vidéo montre une méthode pour générer des astrosphères à partir de progéniteurs de cellules souches pluripotentes humaines. Il implique la croissance et la prolifération de cellules souches avec des milieux nutritifs contenant des facteurs de croissance et des inhibiteurs de kinases. Ces cellules s’agrègent et se différencient ensuite en astrocytes, formant des astrosphères.

Cette vidéo montre la génération de cellules progénitrices neurales à partir de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) non transgéniques et transgéniques. Les hPSC sont différenciées en cellules progénitrices neurales à l’aide d’un milieu de différenciation neuronale. Alors que la différenciation est induite dans les cellules non transgéniques à l’aide de petites molécules, les hPSC transgéniques sont différenciées par l’ajout d’un antibiotique qui induit le promoteur d’un facteur de...

Cette vidéo présente une méthode permettant d’obtenir des cellules de type cellules de Schwann à partir de cellules stromales multipotentes de moelle osseuse (BMSC). Initialement, les BMSC subissent un traitement par hypoxie, suivi d’une différenciation dirigée en cellules progénitrices neuronales. Par la suite, des milieux et des conditions de culture spécifiques sont utilisés pour induire la transformation de ces cellules progénitrices en cellules semblables aux cellules de Schwann.

Cette vidéo montre une méthode pour générer des échafaudages d’astrocytes tridimensionnels dans des micro-colonnes d’hydrogel. L’intérieur des microcolonnes est recouvert de collagène. Des astrocytes sont introduits, qui adhèrent au collagène et, avec une incubation supplémentaire, s’auto-assemblent en un échafaudage tridimensionnel.

Cette vidéo présente la création d’un modèle de tissu neural polarisé en 3D à l’aide d’échafaudages de soie et de collagène. Il détaille le processus d’ensemencement des cellules neuronales sur des échafaudages de soie poreux, d’incubation pour la fixation cellulaire, d’intégration de l’échafaudage avec du collagène, et souligne l’importance de la matrice de collagène de soutien dans la formation d’un modèle de tissu neural polarisé en 3D.

La vidéo présente une méthode pour détacher et replanter des neurones dérivés de cellules souches pluripotentes humaines à l’aide d’une enzyme protéolytique douce. Après filtration et centrifugation, les neurones sont replacés sur une plaque multi-puits revêtue pour l’incubation, favorisant la fixation et la maturation.

Cette vidéo démontre la méthode de création d’organoïdes nerveux moteurs en cultivant d’abord des cellules souches pluripotentes induites humaines dans un milieu spécial pour former des sphéroïdes, puis en les différenciant en motoneurones à l’aide d’inhibiteurs spécifiques, et enfin en les cultivant dans une puce microfluidique pour étendre les axones et former des organoïdes nerveux moteurs.

Cette vidéo présente une méthode pour déclencher la différenciation dans les cellules souches neurales en utilisant du plasma atmosphérique froid. Cela génère un rayonnement UV et des molécules réactives pour stimuler les cellules nerveuses à produire des projections, indiquant la différenciation des cellules neuronales.

Cette vidéo présente une méthode pour générer des précurseurs d’interneurones corticaux à partir de cellules souches embryonnaires de souris. Le protocole implique la culture des cellules souches dans des milieux contenant des inhibiteurs de petites molécules spécifiques, qui facilitent la prolifération et l’agrégation des cellules souches en corps embryoïdes (EB). Par la suite, les EB sont dissociés avec des enzymes et plaqués sur des puits de plaque de culture recouverts de protéines...

Cette vidéo démontre la reprogrammation directe de cellules progénitrices hématopoïétiques génétiquement modifiées en cellules souches neuronales. Les facteurs de transcription exprimés par les cellules progénitrices hématopoïétiques déclenchent une cascade d’événements moléculaires facilitant leur transformation. D’autres milieux spécifiques sont utilisés pour sélectionner et développer des cellules souches neuronales induites.

Cette vidéo montre l’utilisation de petits ARN interférents (siRNA) pour réduire au silence des gènes d’intérêt spécifiques dans les cellules souches neurales et les différencier en types de cellules souhaités en utilisant un milieu de différenciation approprié. Cette procédure permet d’étudier le rôle critique de gènes spécifiques dans le processus de différenciation des cellules souches neurales.

Cette vidéo montre le processus de différenciation des cellules progénitrices neurales induites (iNPCs) en neurones et astrocytes à l’aide de milieux spécialisés.

Cette vidéo présente une méthode de génération in vitro de cellules progénitrices neurales (NPC) à partir de cellules souches embryonnaires de souris (mESC). Les CSEm sont cultivées en suspension pour former des corps embryoïdes (EB), qui sont ensuite guidés pour se différencier en NPC via un traitement à l’acide rétinoïque dans une culture adhérente.

La vidéo présentait une méthode de culture cellulaire pour différencier les cellules progénitrices neurales en neurones. En incubant des cellules dans un milieu riche en nutriments complété par des facteurs de croissance, les cellules progénitrices ont mûri en neurones avec des axones et des dendrites développés. Un agent stabilisant assurait la viabilité cellulaire et protégeait contre les dommages oxydatifs tout au long du processus de différenciation.

Cette vidéo montre une méthode modifiée de tube roulant pour la culture à long terme de tranches de cerveau à partir d’un modèle de rongeur. Tout d’abord, les tranches de cerveau sont attachées à des lamelles. Ensuite, des tubes d’enroulement à côtés plats avec un trou sur le côté plat sont prélevés et les lamelles sont positionnées sur le trou à l’aide de disques adhésifs. Enfin, un milieu nutritif et un mélange de dioxyde de carbone et d’air sont ajoutés au tube, et les tubes sont incubés...

Cette vidéo présente une technique pour l’initiation et l’extension rapides d’un neurone et la création de nouvelles connexions avec un neurone cible à l’aide d’un dispositif microfluidique et de micromanipulation. Cela pourrait être utilisé pour des thérapies visant à reconnecter les circuits neuronaux après un traumatisme ou dans des maladies neurodégénératives.

La vidéo démontre la génération de neurones à partir de fibroblastes dermiques humains adultes (aHDF). Les aHDF sont reprogrammés à l’aide d’un vecteur lentiviral portant des gènes pour les facteurs de transcription neuronales et les ARN en épingle à cheveux courts (shRNA). Les shRNA inhibent l’expression d’un répresseur transcriptionnel neuronal, et les facteurs de transcription neuronales activent les gènes pour différencier les aHDF en neurones. Ces aHDF reprogrammés sont cultivés dans un...

La vidéo montre la génération et la maintenance de cultures de tranches organotypiques à partir de tissus de glioblastome. Le tissu isolé est noyé dans une matrice d’agarose, et des lames minces sont obtenues à l’aide d’un vibratome. Ces sections sont ensuite placées sur des inserts de membrane perméable à l’intérieur d’une microplaque et cultivées dans un milieu de maintenance de culture en tranches pour une maintenance à long terme.

Cette vidéo présente un protocole d’isolement et de culture de cellules de Schwann à partir de tissus dermiques humains. Le derme humain contient différents types de cellules, notamment des fibroblastes et des cellules de Schwann. Après l’isolement, les cellules sont traitées avec un agent antimitotique pour éliminer les fibroblastes proliférants, ce qui permet d’obtenir une culture pure de cellules de Schwann.

La vidéo montre le processus de création d’une construction bio-imprimée en 3D à l’aide d’astrocytes en suspension dans une solution de bio-encre. La construction bio-imprimée, après réticulation, facilite l’adhésion des astrocytes et leur propagation, formant un tissu de type neuronal.

Cette vidéo montre comment les gliomasphères, dérivées de tumeurs cérébrales, sont séparées en cellules uniques et encapsulées dans un hydrogel à base d’acide hyaluronique. Ce processus favorise les interactions cellule-cellule, formant un modèle structuré et tridimensionnel de glioblastome.

Cette vidéo illustre une technique permettant d'obtenir des tranches organotypiques cérébelleuses du cerveau d'un bébé souris et de cultiver les tranches dans un milieu complété par des nutriments et des facteurs de croissance pour imiter le développement cérébelleux in vitro. De plus, des tranches cérébelleuses spécifiques sont traitées avec un composé testé, et la capacité neuroprotectrice du composé est analysée à l'aide d'une technique de coloration par immunofluorescence.

Cette vidéo décrit la préparation et la culture d’organoïdes de tumeurs cérébrales à partir de suspensions unicellulaires. En utilisant une matrice extracellulaire riche en laminines comme échafaudage et milieu de culture pour les nutriments, les cellules sont facilitées à se multiplier et à s’auto-organiser au sein de l’organoïde. Par conséquent, des organoïdes ex vivo sont générés, imitant la diversité cellulaire et le microenvironnement des tumeurs cérébrales.

Cette vidéo montre le processus de génération de cellules précurseurs d’oligodendrocytes (OPC) à partir de cellules souches embryonnaires humaines, suivi de la maturation des OPC en oligodendrocytes. Ce processus de génération d'oligodendrocytes ouvre de nombreuses pistes pour améliorer la recherche et le traitement des maladies neurodégénératives, dont la maladie d'Alzheimer.

Cette vidéo démontre un protocole de différenciation des cellules souches pluripotentes induites humaines en progéniteurs cérébelleux. Il s’agit de transférer des colonies de cellules souches sur une plaque de fixation ultra-faible pour former des corps embryoïdes, favorisant la différenciation avec des facteurs de croissance, puis de transférer les corps embryoïdes sur une plaque recouverte de matrice pour l’adhésion. Les étapes suivantes consistent à induire la migration cellulaire et à...

Cette vidéo démontre le processus de différenciation des corps embryoïdes (EB) en agrégats neuroépithéliaux et leur division ultérieure en cellules neuronales et gliales. Cette méthode permet de générer efficacement des cellules neuronales et gliales in vitro, qui servent de systèmes d’essai pour les tests de toxicité ainsi que pour l’évaluation des différentes voies impliquées dans la neurotoxicité.

Cette vidéo illustre le processus d’isolement et de culture des cellules progénitrices gliales à partir d’un gliome pontique intrinsèque diffus, ou tissu du tronc cérébral affecté par le DIPG. Les cellules gliales isolées du tissu tumoral via une digestion enzymatique sont cultivées dans un milieu neurobasal, ce qui favorise leur croissance et le développement de neurosphères flottantes.

Cette vidéo présente une méthode permettant de différencier les cellules progénitrices neurales (NPC) de la moelle épinière en motoneurones. Il détaille le processus de culture des NPC sur une plaque de culture enrobée à l’aide de milieux spécialisés enrichis d’inhibiteurs spécifiques visant à faciliter la différenciation des NPC en motoneurones matures.

Cette vidéo démontre la transformation de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) en organoïdes cérébraux sphériques. En utilisant des inhibiteurs spécifiques, les hPSC sont guidées pour se différencier vers une lignée neuronale, formant des colonies neuroectodermiques. Des facteurs de croissance spéciaux sont alors introduits, qui encouragent l’auto-organisation et la prolifération des colonies, conduisant finalement à la formation d’organoïdes cérébraux sphériques.

La vidéo démontre la différenciation des cellules souches neurales (CSN) à l’aide d’un dispositif microfluidique composé d’un compartiment somatique et d’un compartiment axonal séparés par une barrière de microsillons. Les NSC sont introduits dans le compartiment somatique et peuvent y adhérer. Les NSC se différencient en neurones à l’intérieur du compartiment somatique et étendent les axones à travers la barrière des microsillons jusqu’au compartiment axonal.

Cette vidéo présente une méthode permettant d’isoler les cellules souches du cervelet postnatal de la souris et de les différencier en cellules neurales. Les cellules souches de la suspension cellulaire isolée sont purifiées à l’aide de billes magnétiques enrobées d’anticorps et sont cultivées pour former des neurosphères. Les neurosphères sont ensuite maintenues dans un milieu de différenciation pour générer des cellules neurales.

Cette vidéo démontre l’isolement des cellules satellites des tissus musculaires branchiomériques de la tête de rat par dissection tissulaire, digestion enzymatique et purification mécanique et centrifuge ultérieure. Les cellules sont ensuite ensemencées sur des puits recouverts de matrice extracellulaire pour se différencier en myoblastes, puis en myotubes et en fibres musculaires matures.

Cette vidéo présente une technique simple de neurogenèse induite par l’acide rétinoïque dans les cellules de carcinome embryonnaire de souris P19. L’acide rétinoïque active les facteurs de transcription et déclenche l’expression des gènes pour la différenciation neuronale.

La vidéo montre la méthode permettant d’induire la différenciation des cellules souches en progéniteurs neuraux à l’aide de l’acide rétinoïque et de la méthode de culture de gouttes suspendues.

La vidéo démontre un protocole permettant de différencier les cellules précurseurs d’oligodendrocytes (OPC) en oligodendrocytes et d’induire la myélinisation dans une co-culture avec des neurones du ganglion de la racine dorsale (DRG). Les OPC sont transduits avec des vecteurs lentiviraux codant pour une protéine de signalisation qui régule la myélinisation. Les OPC transduits sont co-cultivés avec des neurones DRG pour évaluer la différenciation en oligodendrocytes et la myélinisation induite...

Cette vidéo démontre la production de milieux conditionnés par les oligodendrocytes (OCM) à partir de cellules de la lignée des oligodendrocytes en les stressant pour améliorer leur libération moléculaire dans le milieu. Ce milieu, riche en facteurs de croissance, en cytokines et en autres molécules bioactives, peut être ajouté à des cultures de neurones pour mieux comprendre l’impact des facteurs sécrétés par les oligodendrocytes sur la physiologie et la connectivité neuronales.

Cette vidéo illustre une technique permettant d’isoler les plis neuraux crâniens de la région du mésencéphale des embryons de poulet. Il présente un processus de dissection détaillé des plis neuraux, leur placement et leur fixation sur des lamelles recouvertes de fibronectine, suivi de l’observation de la migration des cellules de la crête neurale à partir des plis neuraux.

Cette vidéo présente une technique de génération d’organoïdes cérébraux à partir de cellules souches embryonnaires humaines (CSEh). La culture adhérente des colonies de CSEh est traitée avec des enzymes pour les détacher et les briser en grappes. Ces amas forment des sphères tridimensionnelles en suspension, qui sont ensuite amenées à se différencier en organoïdes qui imitent le cortex cérébral avec des couches de neurones et de cellules gliales.

La vidéo montre l’isolement des motoneurones oculomoteurs, trochléaires et spinaux à partir d’un embryon de souris transgénique. L’embryon exprime des motoneurones marqués avec une protéine fluorescente verte (GFP) pour une visualisation et une identification faciles. Les motoneurones sont isolés chirurgicalement sous un microscope à fluorescence et maintenus dans un milieu de culture.

La vidéo décrit la procédure de maintien d’un environnement contrôlé dans un poste de travail de culture cellulaire pour la croissance et l’entretien des cellules souches neuronales. Ces procédures impliquent la définition des conditions de la chambre, les protocoles de nettoyage et la préparation des milieux, ce qui permet de maintenir une stérilité et une reproductibilité maximales et de remplacer les méthodes traditionnelles.

Cette vidéo présente une technique de purification des cellules progénitrices endothéliales (CPE) CD31+ à partir d’une culture à l’aide du tri cellulaire activé magnétiquement (MACS). La suspension cellulaire est traitée avec un anticorps conjugué au fluorophore qui se lie à CD31 sur les EPC. La réalisation du marquage des EPC CD31+ implique l’ajout d’un complexe d’anticorps, qui se lie aux fluorophores, et d’une nanoparticule magnétique enrobée de polymère, qui se lie au complexe d’anticorps.

Cette vidéo démontre le processus de formation des neurosphères et leur expansion à partir du tissu hippocampique. Les cellules souches neurales et progénitrices du tissu gyrus denté de souris postnatale prolifèrent et forment des neurosphères primaires, qui sont ensuite réensemencées pour former des neurosphères secondaires.

Cette vidéo démontre un protocole pour induire la différenciation des cellules souches pluripotentes induites en cellules endothéliales cérébrales.

Cette vidéo présente une technique d’isolement et de culture de cellules souches dérivées du tissu adipeux de l’arc périaortique murin marquées par fluorescence à partir de tissus adipeux murins de l’arc périaortique. Après l’isolement, les NCADCs sont détectés, triés à l’aide d’un tri cellulaire activé par fluorescence, puis cultivés sur une plaque, favorisant ainsi la prolifération cellulaire.

Cette vidéo présente une méthode pour isoler les cellules gliales entériques de la sous-muqueuse et de la lamina propria de l’intestin de souris. Il décrit les étapes impliquées dans l’extraction des tissus sous-muqueux et de la lamina propria, l’isolement des cellules gliales entériques et la culture des cellules sur une plaque de puits enrobée pour établir une culture de cellules gliales entériques.

Cette vidéo montre l’isolement des capillaires à partir de cerveaux porcins frais. Le processus consiste à éliminer les méninges, à isoler la matière grise du tissu cérébral, à homogénéiser et à filtrer la matière grise pour isoler les capillaires, et enfin à utiliser la digestion enzymatique pour purifier davantage les capillaires.

Cette vidéo montre le processus d’isolement des microvaisseaux cérébraux des rats euthanasiés. Il comprend la dissection du cerveau, le nettoyage des tissus et la digestion mécanique, suivie d’une centrifugation répétée pour isoler la fraction pure des microvaisseaux.

Cette vidéo décrit une méthode de préparation de lamelles en verre recouvertes de polyornithine et de laminine pour améliorer l’adhésion et la croissance des cellules souches neurales. La technique implique des incubations et des lavages séquentiels, facilitant la formation d’une matrice de soutien qui favorise la croissance et la différenciation des cellules neuronales, imitant les structures présentes dans les neurones.

Cette expérience détaille une méthode pour générer des jonctions neuromusculaires à partir de cellules souches pluripotentes induites par l’homme. Il utilise un processus de différenciation par étapes pour favoriser le développement des myotubes et des motoneurones et la formation des synapses, produisant des jonctions neuromusculaires fonctionnelles.

Cette vidéo montre la méthode d’amélioration de la différenciation des cellules souches avec un traitement transitoire au DMSO, qui arrête les cellules en phase G1. Après le traitement, un milieu de différenciation ectodermique avec des inhibiteurs de BMP et de TGF-β est ajouté pour favoriser la formation de précurseurs neuraux.

Cette vidéo montre une méthode pour isoler les péricytes cérébraux du cerveau d’une souris. Les cellules isolées sont cultivées dans des milieux spécifiques aux péricytes pour favoriser la prolifération des péricytes.

Cette vidéo présente l’utilisation d’une technique d’éclairage latéral à lumière douce pour améliorer la visualisation à l’œil nu des corps embryoïdes, facilitant ainsi leur manipulation et leur transfert lors de la culture d’organoïdes cérébraux. Il élucide la configuration de l’éclairage à lumière douce, des méthodes de changement de milieu et de transfert de corps embryoïde, ainsi que la procédure d’induction de la différenciation neuronale dans les corps embryoïdes pour le développement des...

La vidéo décrit la préparation d’un substrat micropatterned pour étudier la spécification du phénotype cellulaire. Un tampon PDMS à micromotifs recouverts de protéines est utilisé pour transférer le micromotif sur une lamelle recouverte de PDMS. La lamelle est ensuite traitée avec un tensioactif pour entraver l’adhérence cellulaire sur les surfaces indésirables. Les cellules sont ensuite ajoutées pour s’installer dans le motif et incubées pour une analyse plus approfondie.

Cette vidéo montre une méthode pour isoler les tubes endothéliales du parenchyme cérébral de souris. Grâce à une combinaison de digestion enzymatique et de dissociation mécanique, le processus produit un tube intact avec des cellules endothéliales.

Cette vidéo montre une technique de culture de disques intervertébraux bovins dans des bioréacteurs afin de développer un modèle de culture d’organes tridimensionnel. Des milieux spécifiques privés de nutriments et des conditions de pression dégénérative sont appliqués aux disques, imitant le microenvironnement pro-inflammatoire et dégénératif observé au cours de la maladie des disques intervertébraux à un stade précoce. La hauteur des disques est mesurée après le traitement afin d’analyser les...

Cette vidéo démontre le processus d’induction de cellules souches pluripotentes humaines à se différencier en neurones en les transfectant avec des lentivirus modifiés portant un gène de facteur de transcription neurogène sous le contrôle d’un élément sensible à la tétracycline, suivi d’un traitement avec un dérivé de la tétracycline et un milieu de maturation.

Cette vidéo démontre une technique de différenciation des cellules souches embryonnaires en une population en réseau de neurones avec des synapses fonctionnelles. Il décrit les étapes impliquées dans la différenciation des cellules souches embryonnaires en neurones, l’induction de la formation du réseau neuronal et l’enrichissement de la culture avec des neurones en réseau.

Cette vidéo montre une méthode pour isoler les cellules de Schwann des fibres du nerf sciatique de souris.

La vidéo montre une méthode pour isoler des noyaux intacts à partir de cellules gliales et souches dans le gyrus denté de l’hippocampe de souris. Le tissu DG est dissocié mécaniquement dans un tampon d’homogénéisation à froid pour libérer les noyaux. Les débris tissulaires et autres organites libérés sont jetés, et les noyaux sont colorés avec une coloration à l’ADN et un anticorps conjugué à un fluorophore spécifique de l’antigène nucléaire neuronal (NeuN). Le tri des noyaux activés par...

Cette vidéo démontre la reprogrammation du destin cellulaire des cellules germinales des nématodes en neurones. Les larves transgéniques du nématode Caenorhabditis elegans sont soumises à une interférence ARN (ARNi) pour éliminer un facteur spécifique de régulation de la chromatine, ce qui rend les cellules germinales de leur progéniture plus sensibles à la reprogrammation du destin cellulaire. Le choc thermique est appliqué à la descendance, induisant les cellules germinales à exprimer un...

Cette vidéo montre la procédure de différenciation des cellules pluripotentes humaines en cellules de type microglie. Le processus consiste à former des corps embryoïdes, à les transférer dans des puits enrobés et à utiliser des facteurs de croissance spécifiques pour guider la différenciation en précurseurs primitifs de macrophages, qui se différencient finalement en cellules de type microglie.

Cette vidéo montre la culture de cellules gliales de Müller (MG) isolées de rétines de souris. Les rétines sont dissociées en une suspension unicellulaire à l’aide d’enzymes digestives. Les cellules sont ensuite cultivées dans un milieu avec un facteur de croissance qui favorise la prolifération des cellules MG et la mortalité des cellules neuronales. Les cellules neuronales mortes sont éliminées pendant le passage et les cellules MG sont cultivées pour une analyse plus approfondie.

Cette vidéo présente une technique d’isolement et de culture de cellules gliales primaires mixtes à partir de tissus de moelle épinière de souris adultes. Le protocole implique une digestion enzymatique du tissu, suivie de l’élimination des membranes cellulaires brisées et des débris de myéline pour obtenir une population unicellulaire. Les cellules sont ensuite cultivées dans un milieu optimisé pour la croissance de cellules gliales mixtes.

Cette vidéo démontre la différenciation des cellules progénitrices otiques multipotentes immortalisées (iMOP) en cellules épithéliales sensorielles. Il décrit les étapes impliquées dans la culture des cellules iMOP, la formation des otosphères, l’induction de la différenciation et la visualisation des composants cellulaires et des marqueurs de différenciation par microscopie à fluorescence pour confirmer la réussite de la différenciation cellulaire.

La vidéo démontre la différenciation des progéniteurs otiques multipotents immortalisés (iMOPs) en neurones ganglionnaires spiralés (SGN) et la confirmation de la différenciation basée sur l’immunofluorescence. Les iMOPs sont plaquées sur des lamelles recouvertes d’un substrat de culture dans un milieu de différenciation neuronale pour la différenciation en SGN. Les cellules différenciées sont marquées avec des anticorps spécifiques des marqueurs de différenciation neuronale et analysées au...

Cette vidéo démontre la culture et l’imagerie ex vivo de tranches oculomoteurs d’embryons de souris transgéniques. Les embryons sont isolés et noyés dans l’agarose. À l’aide d’un vibratome, on obtient des coupes contenant les noyaux oculomoteurs et les yeux. Les coupes sont maintenues en culture et imagées à l’aide d’un microscope à fluorescence.

Cette vidéo illustre un processus en plusieurs étapes pour différencier les iPSC humaines en cellules endothéliales microvasculaires cérébrales. Les cellules différenciées qui en résultent imitent étroitement les cellules endothéliales microvasculaires du cerveau, caractérisées par des jonctions serrées, ce qui les rend idéales pour la recherche sur les maladies du cerveau.

Cette vidéo montre une méthode permettant d’isoler des neurones du cerveau antérieur d’un embryon de poulet à un stade précoce et de les cultiver sur un réseau de microélectrodes pour former un réseau neuronal.

Cette vidéo présente la création d’une puce de barrière hémato-encéphalique à l’aide de cellules précurseurs dérivées d’iPSC. Il s’agit d’ensemencer des cellules progénitrices neurales et des cellules endothéliales microvasculaires cérébrales dans des canaux séparés dotés d’une membrane poreuse. En utilisant des milieux de différenciation fluides, les cellules endothéliales forment des jonctions serrées ressemblant à des vaisseaux sanguins, et les cellules neurales se transforment en divers...

La vidéo montre la préparation de coupes du thalamus médian et du cortex cingulaire antérieur (MT-ACC) à partir de cerveaux de souris. Le cerveau d'une souris est disséqué, des coupes sont faites pour exposer la voie MT-ACC et des coupes sont générées à l'aide d'un vibratome. Les coupes MT-ACC sont ensuite maintenues dans du liquide céphalo-rachidien artificiel oxygéné.

Cette vidéo démontre une technique pour générer une lignée de cellules souches de glioblastome afin d’identifier la différenciation des cellules souches de glioblastome (GSCs) en astroglie. Il décrit les étapes impliquées dans l’ensemencement des CSG, leur transduction avec un lentivirus codant pour la GFP et la détermination de l’expression du rapporteur de la GFP par cytométrie en flux.

Cette vidéo montre l’infection des neurones primaires du mésencéphale de souris par des virus adéno-associés porteurs d’un indicateur de calcium fluorescent. La fluorescence de l'indicateur confirme la réussite de l'infection et permet un suivi en temps réel de l'infection neuronale.

La vidéo démontre une méthode permettant d'obtenir des tranches de cortex rhinal-hippocampe à partir du cerveau d'un petit rat et de les cultiver dans des inserts membraneux au sein d'une plaque multi-puits remplie de milieux pour une analyse plus approfondie.

Cette vidéo montre la dissection et le montage d’explants cérébraux de larves de drosophile. Le système nerveux central (SNC), attaché aux disques oculaires, est extrait des larves, puis monté sur une lame de verre dans une solution saline physiologique.

La vidéo présente une technique de différenciation des cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC) en cellules progénitrices neurales (NPC). Initialement, les hiPSC sont cultivées sur une couche nourricière de fibroblastes embryonnaires de souris (MEF). Par la suite, les cellules sont détachées et transférées sur une plaque recouverte de biopolymère pour permettre aux MEF d’adhérer et de se séparer des hiPSC. Les hiPSC en suspension sont ensuite transférés sur une plaque à fond en...

La vidéo décrit la procédure de développement de corps embryoïdes sans sérum (SFEB) à partir de cellules progénitrices neuronales à l'aide de divers milieux de différenciation sans sérum ou DM. DM-2 facilite la maturation et l'arrangement des neurones pour former des SFEB, tandis que DM-3 est utilisé pour le maintien de la croissance.

Cette vidéo montre le processus de culture de cellules neuronales sur un réseau multi-électrodes (MEA) à motifs pour établir des réseaux neuronaux modulaires. Cette méthode permet l’étude de la transmission des signaux neuronaux et des interactions cellulaires.

Cette vidéo présente le processus de différenciation des iPSC humaines en motoneurones. La raison d’être consiste à utiliser des CSPi qui ont été génétiquement modifiées pour exprimer des facteurs de transcription spécifiques. Lorsqu’il est cultivé dans un milieu contenant de la doxycycline, cet antibiotique déclenche l’expression des facteurs de transcription, favorisant ainsi la différenciation des iPSC en progéniteurs de motoneurones. En fin de compte, les progéniteurs sont cultivés dans un...