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Article de méthode

Dissociation et culture de neurones à partir d’échantillons de tissu hippocampique

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Servello, D. et al., Un système microbiomécanique pour l’étude de la formation et de la récupération de varicosité dans les axones des neurones centraux. J. Vis. Exp. (2018).

Cette vidéo démontre la dissociation et la culture des neurones de l’hippocampe à partir d’échantillons de tissu hippocampique à l’aide de dissociations enzymatiques et mécaniques. Le traitement avec Ara-C inhibe la croissance des cellules non neuronales, facilitant la croissance sélective des neurones de l’hippocampe.

Protocole

Toutes les procédures impliquant le prélèvement d'échantillons ont été effectuées conformément aux directives de l'IRB de l'institut.

1. Dissection, dissociation et culture des neurones de l’hippocampe chez la souris ou le rat enceinte

  1. Dissection et dissociation des neurones de l’hippocampe pour la culture
    1. Décongeler la solution enzymatique de protéase (3 mg/mL de protéase 23 dans la solution de dissection en tranches, SLDS, tableau 1) et le milieu de placage préchauffé (tableau 2) à 37 °C.
    2. Disséquez l’hippocampe et rincez-le avec SLDS.
      note: Quatre hippocampes fournissent suffisamment de cellules pour une plaque à 24 puits ou une plaque à 6 puits.
    3. Retirer le SLDS, ajouter 2 mL de solution d’enzyme protéase et incuber l’échantillon à 37 °C, 5 % de CO2, pendant 15 min.
    4. Lavez deux fois les explants d’hippocampe avec 5 à 10 ml de milieu de placage. Ajouter 5 mL de milieu de placage. Dissociez les explants de l’hippocampe en cellules uniques en générant un petit vortex à l’aide d’une pipette munie d’un embout en plastique de 1 ml. Pipetez de haut en bas environ 40 fois, en évitant la formation de bulles d’oxygène, jusqu’à ce que la solution devienne trouble et qu’il ne reste plus de gros morceaux d’explant.
      note: N’oubliez pas de laisser un peu de support pendant les lavages, les explants d’hippocampe doivent rester immergés dans le milieu pendant tout le processus.
    5. Centrifugez les cellules à 1 125 x g pendant 3 min. Retirez le surnageant avec les cellules immergées dans le milieu. Remettre les cellules en suspension dans 145 mL de milieu de placage. Ajouter 1 mL/puits de suspension cellulaire dans une plaque à 24 puits (3 mL/puits dans une plaque à 6 puits).
      REMARQUE : 145 ml de matériau de placage sont utilisés pour produire une suspension cellulaire à faible densité cellulaire. Ce volume permettra de plaquer les cellules en six plaques de 24 puits, huit plaques de 6 puits, ou diverses combinaisons de plaques de 24 ou 6 puits, en fonction des expériences à mener. Chaque puits de la plaque de 24 puits aura environ 3 x 104 cellules.
    6. Incuber les cellules dans le milieu de placage à 37 °C, 5 % de CO2 pendant 2 à 4 h, puis retirer tous les supports de placage et les remplacer par des milieux d’entretien frais.
    7. Après 2 jours (2 jours in vitro, 2DIV), remplacez la moitié du milieu par du 2 μM d’Ara-C (arabinosylcytosine) dissous dans un milieu d’entretien, ce qui inhibe la croissance des fibroblastes, des cellules endothéliales et gliales. Après avoir exposé les cellules à Ara-C pendant deux jours, remplacez le milieu par un milieu d’entretien frais.

Tableau 1 : Solution de revêtement de lamelle. Fournit la recette de préparation de la solution de revêtement de lamelle utilisée pour faire adhérer les cellules cultivées aux lamelles.

Solution de revêtement de lamelle
780 μLAcide acétique17 mM mère : 50 μL d’acide acétique dans 50 mL de H2O
200 μLPoly-D-lysine (0,5 mg/mL de stock)
20 μLCollagène de queue de rat (3 mg/mL de bouillon)
Le volume total est déterminé en fonction du nombre de lamelles à revêtir.

Tableau 2 : Recettes de milieux de culture cellulaire. Fournit les recettes de préparation des milieux utilisés dans la culture des cellules neuronales primaires de l’hippocampe.

1x Solution de dissection en tranches (SLDS), filtrée, pH= 7,4, stockage à 4 °C
1 LjjH2O
82 millions d’annéesNa2SO4
30 millions d’eurosK2TB4
10 millions d’eurosHEPES (acide libre)
10 millions d’eurosD-glucose
5 millions d’eurosMgCl2
0,00 %Rouge phénolique (facultatif)
Média de placage (PM, filtre, stockage à 4 °C)
439 mlMEM Sels d'Earle
50 mlFBS
11,25 ml20 % de D-glucose
5 mL Pyruvate de sodium (100 mM,)
62,5 μLL-glutamine (200 mM)
5 mLPénicilline/streptomycine (P/S, 100x)
Média d’entretien (MM, filtre, stockage à 4 °C)
484 mlNeurobasale
10 ml B27 50x supplément
1,25 mLL-glutamine (200 mM)
5 mL100 fois par rapport à la traduction
Toutes les solutions sont stérilisées à l’aide d’un filtre avec des pores de 0,2 mm.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
lamelles de 12 mmWarner InstrumentsRéférence 64-0702Pour plaque à 24 puits
lamelles de 25 mmFisher ScientificTél. : 12-545-102Pour plaque à 6 puits
acide acétiqueFisher ScientificRéf. A38-212
Poly-D-lysinesigmaP6407
Collagène de queue de ratRoche11 179 179 001
10 fois le PBSDiagnostics nationauxCL-253
Na2SO4Fisher ScientificS373-500
K2SO4Fisher ScientificRéf. P304-500
HEPESFisher ScientificBP410-500
D-glucoseFisher ScientificD16-500
MgCl2Fisher ScientificBP214-500
NaOHFisher ScientificSS255-1
Enzyme protéasesigmaRéf. P4032
FBSGibcoRéférence 26140
Pyruvate de sodiumGibcoRéférence 11360-070
L-glutamineGibco25030081
Pénicilline/streptomycine 100x (P/S)Gibco15140122
MEM Sels d'EarleGibcoRéférence 11090
Supplément B27GibcoRéférence 17504-044
NeurobasaleGibcoRéférence 21103-049
Arabinosylcytosine (Ara-C)sigmaRéférence 147-94-4
Supports Opti-MEMGibcoRéférence 31985-070

Mots-clés

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