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Article de méthode

Isolement et culture de progéniteurs de neurones granulaires cérébelleux murins

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Bovio, P., et al., Isolement et culture de progéniteurs neuraux suivis d’une immunoprécipitation de la chromatine de l’histone 3 Lysine 79 marque de diméthylation. J. Vis. Exp. (2018)

Cette vidéo montre l'isolement et la culture de cellules progénitrices neurales cérébelleuses à partir du cervelet d'un petit souris. Les progéniteurs des neurones granulaires cérébelleux sont isolés et purifiés par adhésion différentielle, éliminant efficacement les astrocytes. Ces progéniteurs cultivés se différencient ensuite en neurones granulaires cérébelleux.

Protocole

Toutes les procédures impliquant le prélèvement d'échantillons ont été effectuées conformément aux directives de l'IRB de l'institut.

1. Préparatifs

  1. Préparations pour l’isolement du CGNP (progéniteur du neurone granulaire cérébelleux)
    1. Organiser un accouplement approprié des souris pour générer des animaux P5-P7 afin d’isoler le cervelet (3-5 animaux par ChIP et condition).
    2. Préparez HBSS/Glucose en ajoutant 6 mg/mL de glucose dans le tampon HBSS.
    3. Préparez le milieu de culture cellulaire CGNP (CGM) en ajoutant 1 % (v/v) de supplément de N2, 1 % (v/v) de pénicilline-streptomycine-néomycine, 25 mM de KCl et 10 % de FCS au DMEM-F12. Pour la culture CGNP, préparer un milieu CGM sans SCA mais comprenant 0,6 μg/mL SONIC HEDGEHOG (SHH) (CGM-SHH) et l’équilibrer à 37 °C si nécessaire.
    4. Enduire des plaques de culture cellulaire à 6 puits de 100 μg/mL de poly-D-lysine pendant 1 à 2 h à RT pour l’élimination des cellules gliales. Ensuite, lavez deux fois avec du ddH2O stérile et laissez sécher les plaques. Conservez les plaques pendant une semaine maximum à 4 °C.
    5. Pour la culture de CGNP, enduire des plaques de culture cellulaire à 6 puits de poly-L-ornithine (0,1 mg/mL) à 4 °C pendant la nuit. Ensuite, laver deux fois avec H2O pour la culture cellulaire et laisser sécher les plaques.
      note: Les plaques peuvent être stockées pendant une semaine maximum à 4 °C.
    6. Préparez de la trypsine à 0,025 % (p/v) dans HBSS/Glucose et équilibrez-la à 37 °C si nécessaire.
  2. Isolement du tissu cérébral par un progéniteur neural
    1. Isolement et culture facultative de CGNP (progéniteurs de neurones granulaires cérébelleux)
      1. Euthanasier les animaux P5-7 par décapitation à l’aide de ciseaux. Retirez la peau du cuir chevelu, ouvrez le crâne et retirez le cerveau à l’aide de petits ciseaux et de pinces. Isolez le cervelet et transférez-le dans un HBSS/Glucose glacé. Retirez toutes les méninges et les vaisseaux sanguins et transférez le cervelet dans des tubes de 15 ml remplis de HBSS/Glucose froid.
      2. Lavez le cervelet trois fois avec 10 mL de HBSS/Glucose glacé (collectez-les par centrifugation à 650 x g pendant 5 min à 4 °C) et homogénéisez ensuite le cervelet en pipetant doucement de haut en bas avec une pipette de 1 mL (maximum 2-3 fois) pour obtenir des fragments de0,5 à 1 mm 3.
      3. Ajouter 5 mL de trypsine à 0,025 % dans HBSS/Glucose et incuber le tissu en remuant constamment dans un bain-marie à 37 °C pendant 15 min. Arrêter la digestion en ajoutant 5 mL de CGM et prélever le tissu par centrifugation à 650 x g pendant 5 min à 4 °C.
      4. Retirer le surnageant et triturer le tissu à l’aide d’une pointe de pipette de 1 mL dans 1 mL de CGM et le transférer dans un nouveau tube de 15 mL.
        note: Il est important d’éviter les bulles d’air.
        1. Ajouter 5 mL de CGM et incuber le mélange pendant 2 min sur de la glace pour déposer les restes de tissus. Transvasez le surnageant dans un nouveau tube de 15 ml. Ajoutez 2 mL de CGM au tissu résiduel et répétez la procédure de trituration.
      5. Mettez les surnageants en pool (sans restes de tissus, environ 10 ml au total) et centrifugez à 650 x g pendant 5 min à 4 °C pour recueillir les cellules cérébelleuses. Remettre la pastille en suspension dans 10 mL de CGM.
      6. Étant donné que les astrocytes adhèrent plus rapidement et plus fort à la poly-D-lysine que les CGNP, placez les cellules sur des plaques à 6 puits recouvertes de poly-D-lysine de 100 μg/mL (jusqu’à 4 mL par puits) et incubez pendant 20 min à 37 °C pour éliminer les astrocytes.
      7. Secouez l’assiette et récupérez le surnageant. Puis centrifuger à 650 x g pendant 5 min à 4 °C dans un tube de 15 mL. Remettre la pastille en suspension dans 10 mL de CGM et compter les cellules à l’aide d’une chambre de comptage Neubauer.
        note: Les CGNP sont ronds, petits et présentent un halo lorsqu’ils sont imagés à l’aide de la microscopie à contraste de phase.
      8. Si nécessaire, ensemencez les cellules dans du CGM préchauffé à 37 °C sur des plaques recouvertes de poly-L-ornithine (3 x 106 cellules par 6 puits) et incubez-les à 37 °C, 5 % de CO2 et 100 % d’humidité relative.
        note: Le fait de laisser la CGM sur les plaques (et avec ce FBS) entraînera la différenciation des CGNP en neurones granulaires cérébelleux (CGN).

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Supplément B27 (50x)Technologies de la vie17504044Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CCM
DMEM-F12Technologies de la vieRéférence 11320-033Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CGM
Sérum fœtal bovin 10 % (v/v)Gibco10082147Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’isolement CPC et la CGM
glucoseSigma-AldrichRéférence G5767Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’isolement du CGNP
Glutathion (1,25 mg/ml)Sigma-AldrichRéférence G4251Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CCM
glycineCarl RothRéférence 3187Catégorie : ChIP
Abréviation/Commentaire : Pour la fixation cellulaire
La solution saline équilibrée de HankTechnologies de la vieRéférence 14025-100Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : HBSS
L-glutamine (200 mM)Technologies de la vie25030081Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CCM
LaminineSigma-AldrichL2020Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’élevage de CPC
Supplément N2Technologies de la vie17502048Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CGM
Milieu neurobasalGibco21103049Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CCM
Pénicilline-streptomycine-néomycine 1 % (v/v)Technologies de la vie15640055Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : PSN, pour CCM et CGM
Solution saline tamponnée au phosphateTechnologies de la vie10010023Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : PBS, pour l’isolement CPC
Poly-D-lysineSigma-AldrichP6407Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’isolement du CGNP
Bromhydrate de poly-L-ornithineSigma AldrichRéf. P3655Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’élevage de CPC
chlorure de potassiumThermo FisherAM9640GCatégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : KCl, pour CGM
Hérisson sonique (SHH)Sigma-AldrichSRP6004Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’isolement du CGNP
Superoxyde dismutase (1mg/ml)Sigma-AldrichS7571Catégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour CCM
Trypsine-EDTA 0,05 % (p/v)Sigma AldrichRéférence 59417CCatégorie : Culture cellulaire
Abréviation/Commentaire : Pour l’isolement du CPC

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