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Article de méthode

Procédé de génération d’un milieu conditionné par des oligodendrocytes

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Mazuir, E., et al. Génération d’oligodendrocytes et milieu conditionné par des oligodendrocytes pour des expériences de co-culture. J. Vis. Exp. (2020)

Cette vidéo démontre la production de milieux conditionnés par les oligodendrocytes (OCM) à partir de cellules de la lignée des oligodendrocytes en les stressant pour améliorer leur libération moléculaire dans le milieu. Ce milieu, riche en facteurs de croissance, en cytokines et en autres molécules bioactives, peut être ajouté à des cultures de neurones pour mieux comprendre l’impact des facteurs sécrétés par les oligodendrocytes sur la physiologie et la connectivité neuronales.

Protocole

1. Récolte et culture de cellules de lignée OL (OL)

REMARQUE : Ces étapes doivent être effectuées dans une hotte à flux laminaire dans des conditions stériles.

  1. Le lendemain de l’agitation, préparez le milieu Bottenstein-Sato (BS) selon le tableau 1.
  2. Rincez 3 fois les boîtes de Pétri enrobées avec de l’eau distillée stérile.
  3. Récoltez le surnageant des flacons contenant principalement des cellules de la lignée OL mais aussi quelques cellules microgliales et placez-le sur des boîtes de Pétri non enrobées de 100 mm.
    note: Cette étape permet l’élimination des cellules microgliales par adhérence rapide différentielle à la surface de la parabole.
  4. Incuber les boîtes de Pétri pendant 15 min dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % de CO2.
  5. Remplissez chaque fiole T150 avec 25 mL de milieu de culture chaud et fraîchement préparé et incubez dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % de CO2 jusqu’à la deuxième agitation.
  6. Transférez le surnageant des boîtes de Pétri dans de nouvelles boîtes de Pétri non revêtues de 100 mm pour permettre l’adhésion des cellules microgliales résiduelles.
  7. Incuber les boîtes de Pétri pendant 15 min dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % de CO2.
  8. Retirez le surnageant, qui contient des cellules de lignée OL non adhérentes, et transférez-le dans des tubes de 50 ml (surnageant provenant de 2 boîtes de Pétri pour un tube de 50 ml). Jeter les boîtes de Pétri plaquées avec des microglies.
  9. Centrifuger le surnageant pendant 5 min à 423 x g. Retirez délicatement le surnageant et remettez en suspension la pastille cellulaire avec 1 mL de milieu BS. Regrouper tous les granulés dans un tube commun de 50 ml et ajuster le volume à 10 ml avec un milieu BS.
  10. Déterminer la densité cellulaire en comptant les cellules au microscope.
    note: Une densité cellulaire comprise entre 3 x 105 cellules/mL et 5 x 105 cellules/mL doit être obtenue.
  11. Ajouter 20 mL de BS si la densité cellulaire est supérieure ou égale à 4 x 105 cellules/mL pour obtenir un volume final de 30 mL, ou ajouter seulement 10 mL de BS si la densité cellulaire est inférieure à 4 x 105 cellules/mL pour obtenir un volume final de 20 mL.
  12. Plaquez deux ou trois boîtes de Pétri pré-enduites de 100 mm avec 10 mL de suspension cellulaire. Incuber dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % de CO2.
  13. Nettoyez les débris des boîtes de Pétri en rafraîchissant tout le milieu BS 2 h plus tard.
    note: Examinez la culture au microscope avant et après l’éclaircie pour vérifier la densité cellulaire et l’efficacité de l’élimination des débris.
  14. Incuber pendant 2 jours en milieu BS dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % CO2.
    note: Examinez la culture au microscope. La confluence devrait être de 70 % à 80 %.

2. Production d’OCM

REMARQUE : Effectuez ces étapes dans une hotte à flux laminaire dans des conditions stériles.

  1. Préparez le NB-B27low medium conformément au tableau 2.
  2. Renouveler le milieu de culture avec 10 ml de milieu chaud NB-B27low. Incuber pendant 2 jours dans un incubateur humidifié à 37 °C sous 5 % de CO2.
  3. Récoltez l’OCM, c’est-à-dire le surnageant contenant les facteurs sécrétés par l’OL. Stérilisez l’OCM à l’aide d’un filtre de 0,22 μm.
    note: Conserver l’OCM à 4 °C pendant 2 mois maximum.

Tableau 1 : Préparation des milieux Bottenstein-Sato (BS).

Médias Bottenstein-Sato (BS)Concentration finale
Aigle modifié de Dulbecco Medium
Pénicilline-streptomycine100 UI/mL
apo-Transferrin humain100 μg/mL
BSA (albumine sérique bovine)100 μg/mL
insuline5 μg/mL
PDGF10 ng/mL
progestérone62 ng/mL
Chlorhydrate de putrescine16 μg/mL
Sélénite de sodium40 ng/mL
T3 (sel sodique de 3,3',5-Triiodo-L-thyronine)30 ng/mL
T4 (L-thyroxine)40 ng/mL

Tableau 2 : Préparation des milieux NB-B27low et NB-B27.

NB-B27 Faible médiaConcentration finale
Neurobasale
Supplément B270,5 fois
L-glutamine0,5 million d’euros
Pénicilline-streptomycine100 UI/mL
Supports NB-B27Concentration finale
Neurobasale
Supplément B271x
L-glutamine0,5 million d’euros
Pénicilline-streptomycine100 UI/mL

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Supplément B27ThermoFisher17504044
Solution de D-(+)-glucosesigmaRéférence G8769
Aigle modifié de Dulbecco MediumThermoFisher31966021
Éthanol 100 %sigmaRéférence 32221-M
Éthanol 70 %Produits chimiques VWRRéférence 83801.36
Sérum de veau fœtalThermoFisher10082147
NeurobasaleThermoFisher21103049
Pénicilline-streptomycineThermoFisher15140122
Saline tamponnée au phosphate sans calcium ni magnésiumThermoFisherA1285601
Polyéthylénimine (PEI)sigmaRéf. P3143
Médias Bottenstein-Sato (BS)
apo-Transferrin humainsigmaRéf. T1147
BSA (albumine sérique bovine)sigmaA4161
Aigle modifié de Dulbecco MediumThermoFisher31966021
insulinesigmaI5500
PDGFPeprotechAF-100-13A
Pénicilline-streptomycineThermoFisher15140122
progestéronesigmaRéf. P8783
Chlorhydrate de putrescinesigmaP5780
Sélénite de sodiumsigmaS5261
T3 (sel sodique de 3,3',5-Triiodo-L-thyronine)sigmaRéf. T6397
T4 (L-thyroxine)sigmaRéf. T1775
outils
Filtre 0,22 μmSartoriusRéférence : 514-7010
Seringue de 1 mLTerumo1611127
Boîte de Pétri de 100 mmDutscherRéférence 193100
Tube de 15 mLCorning Sciences de la vie734-1867
Tube de 50 mLCorning Sciences de la vieN° 734-1869
Boîte de Pétri de 60 mmDutscherRéférence 67003

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