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Article de méthode

Analyse de la réactivation des cellules souches neurales dans des explants de cerveau de drosophile en culture

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Naomi Keliinui, C., et al. Réactivation des cellules souches neurales dans les explants de cerveau de drosophile en culture. J. Vis. Exp. (2022).

Cette vidéo présente un protocole permettant d’identifier les facteurs exogènes qui déclenchent la réactivation des cellules souches neurales du cerveau de la drosophile à partir de leur état de repos. Des larves fraîchement écloses sont disséquées pour isoler leur cerveau, qui est ensuite cultivé dans des milieux avec ou sans hormone de test afin d'évaluer le potentiel de l'hormone à induire la réactivation et la prolifération des cellules souches neurales.

Protocole

1. Préparation des milieux de culture et des outils

  1. Vaporisez le banc et la zone de travail avec de l’éthanol à 70 % et laissez sécher.
  2. Vaporisez les outils de dissection, les pinces et les deux boîtes de montre en verre avec de l’éthanol à 70 % et laissez-les sécher sur le banc.
  3. Préparez le milieu de Schneider complété (MSS, tableau 1) et placez-le sur de la glace.
  4. Pipeter 1 mL de SSM dans chacune des boîtes en verre de la montre.
  5. À l’aide d’une micropipette avec une pointe stérile, transférez les larves fraîchement écloses de la plaque de PBS vers le SSM dans la première boîte de montre en verre. À l’aide d’une micropipette munie d’un embout stérile, transférez les larves fraîchement écloses dans le MSS dans la deuxième boîte de montre en verre.

2. Dissections et cultures cérébrales

  1. Une fois que les larves sont dans la deuxième boîte de montre en verre avec SSM, disséquez le cerveau des larves à l’aide d’une pince et d’un microscope de dissection. Ajustez le grossissement si nécessaire.
  2. À l’aide d’une pince, saisissez les crochets buccaux et de l’autre, saisissez doucement le corps à mi-chemin et tirez dans la direction opposée (Figure 1) pour diviser la larve en deux morceaux.
    note: Le cerveau sera situé juste derrière les crochets buccaux. Notez qu’il peut y avoir d’autres tissus entourant le cerveau. Soyez très prudent lorsque vous enlevez ces tissus car cela peut endommager le cerveau.
  3. Une fois que 15 à 20 cerveaux ont été disséqués, ajoutez 1 ml de SSM dans un puits d’un plateau de culture stérile à 12 puits. Transférez les cerveaux fraîchement disséqués dans le SSM à l’aide d’une micropipette et d’une pointe stérile (Figure 2A).
  4. Placer les cerveaux dans le milieu SSM dans le plateau de culture à 12 puits dans un incubateur à 25 °C pendant 24 h (figure 2A).

Tableau 1 : Recette pour la fabrication de milieux de Schneider supplémentés (SSM). Le tableau indique le volume de tous les ingrédients nécessaires à la préparation de 5 mL de MSS.

Ingrédient (concentration de départ)Pour faire 5 mlConcentration finale
Média de la drosophile de Schneider3,89 ml
Sérum fœtal bovin (100 %)500 μL<10 %
Glutamine (200 mM)500 μL20 millions d’euros
Pénicilline (5000 unités/mL), Streptomycine (50 000 μg/mL)100 μLStylo 1000 U/mL, 1 mg/mL Strep
Insuline (10 mg/mL)10 μL0,02 mg/mL
glutathion (50 mg/mL)5 μL0,05 mg/mL
Dans une hotte stérile, en utilisant la technique stérile, ajouter tous les ingrédients ensemble dans un tube conique de 14 ml. Placez-le sur de la glace jusqu’à utilisation.

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Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Larves de drosophile dans une boîte de montre en verre avec SSM. Les pinces sont correctement positionnées pour la dissection. L’emplacement du cerveau de la larve (gris foncé) est postérieur aux crochets buccaux (noirs), et les deux sont montrés à l’intérieur de la larve.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
10 μL Pointes de pipetteDenville SciRéf. P2102
1000 μL Pointes de pipetteDenville SciP2103-N
Pipette 1000 μLGilsonP1000
Plaques de culture multipuits à 24 puitsFisher ScientificTél. : 50-197-4477
Boîtes de Pétri de 35 mmFisher ScientificRéférence 08-757-100AIngrédients de l’assiette de raisin
Microscope de dissectionZeissStemi 2000
Éthanol 200 proof (100 %), Decon Labs, bouteille de 1 gallonFisher ScientificRéférence 2701Utilisé pour laver les larves avant la conservation de 24 heures dans le milieu de culture
Sérum fœtal bovin (10 %)sigmaF4135-100MLSupplément pour milieux de culture cellulaire.
Pince fine pour la dissectionOutils scientifiques finsRéférence 11295-20Forcepts utilisés dans les dissections. Ils fonctionnent mieux lorsqu’ils sont affûtés.
Plat de dissection en verre (3 puits)Ceux-ci ne sont plus disponibles
glutathionsigmaRéf. G6013Fournit une protection oxydative pendant la culture cellulaire.
incubateurThermo Fisher ScientificGarantit que la température, l’humidité et l’exposition à la lumière sont exactement les mêmes tout au long de l’expérience.
insulinesigmaI0516Variable indépendante de l’expérience
Hotte à flux laminairePour l’aliquotage des milieux de culture
L-GlutaminesigmaRéférence G7513Fournit un soutien pendant la culture cellulaire
Pen-StrepsigmaP4458-100mlAntibiodiques utilisés pour prévenir la contamination bactérienne des cellules pendant la culture.
Tampon phosphate, pH 7,4Fabriqué en interneFabriqué en interneSolvant utilisé pour laver la cervelle après les étapes de fixation et de coloration
cueillirOutils scientifiques finsRéférence 10140-01Utilisé pour ramasser les larves de l’assiette de raisin
Milieu de culture SchneidersTechnologie de la vie21720024Contient des nutriments qui aident les cellules à croître et à proliférer
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