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Article de méthode

Enregistrements simultanés d’électroencéphalographie et de potentiel de champ local chez un rat anesthésié

1.3K vues

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Kang, S., et al. Enregistrement simultané de l’électroencéphalographie colocalisée et du potentiel de champ local chez les rongeurs. J. Vis. Exp. (2017).

Cette vidéo montre la procédure d’enregistrement simultané d’électroencéphalographie (EEG) co-localisée et de potentiels de champ local (LFP) chez un rat anesthésié. Le processus consiste à préparer le rat et à fixer des électrodes stimulantes à ses coussinets de moustaches. Une électrode EEG araignée est placée sur le crâne du rat pour les mesures EEG de surface. Dans le même temps, une microélectrode multicanal est insérée dans une région spécifique du cerveau à travers un trou de bavure dans le crâne pour enregistrer l’activité neuronale à partir d’une zone cérébrale localisée.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Configuration EEG/LFP co-localisée

  1. Nettoyez et séchez le crâne entourant le trou de la bavure à l’aide d’un coton-tige.
  2. Placez soigneusement la pâte EEG conductrice sur un côté plat d’une électrode araignée EEG. Laissez un petit trou dégagé de la pâte EEG sur l’électrode araignée pour permettre à une microélectrode multilaminaire de passer à travers le trou sans entrer en contact avec la pâte et l’électrode araignée. Cela empêche ....

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Résultats

figure-results-1
Figure 1 : Configuration générale de l’enregistrement simultané EEG/LFP (A) La configuration se compose d'un cône nasal modifié pour faciliter la stimulation du coussinet de moustaches sous anesthésie isoflurane, de deux électrodes de stimulation insérées dans le coussinet de moustaches, d'une électrode d'araignée positionnée sur le crâne au-dessus du cortex du canon opposée a.......

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Rats Lister Hood femellesCharles Rivers
Électrode araignéeUnimed Electrode Supplies LtdRéf. SCS24-426
Pâte EEG : Ten20Unimed Electrode Supplies Ltd10 à 20 secondes
Support stéréotaxique avec deux bras de micromanipulateur : Cadre stéréotaxique à double manipulateur avec barres d’oreille à 18°WPI (World Precision Instruments)502603
Électrodes de stimulation en acier inoxydablePlasticsOneE363/1/SPC
Stimulateur de courant isoléFabriqué en interne
Micro-électrode à 16 canaux, espacement de 100 μm, surface de chaque site 177 μm2NeuroNexusA1x16-10mm-100-177-A16
Scène de tête aiguë à 16 canauxTucker David Technologies Inc., TDTRA16AC-Z
Préamplificateur : Préampli neuro-numérisant 64 canaux de la série ZTDTPZ5-64
Répartiteur de signal passif : Splitter Box 32 canaux pour PZ5TDTS-BOX_PZ5
Unité d’acquisition de données : processeur RZ2 BioAmp. Processeur ultra haute performance 4-DSP série ZTDTRZ2-4
L’isoflurane National Vet Services Limited Référence 50878
Système d’anesthésie isoflurane pour petits animauxWPI EZ-B800A
Coussin chauffant thermostatique : Rat Blanket System 230VAppareil de Harvard, Royaume-Uni Référence 50-7221-F
Pommade ophtalmique : Lubrifiant pour les yeux OptixcareViovet 203865
Cage de Faraday Société de Newport VIS-FDC-3600
Poste de travail d’isolation vibratoire : Vision IsoStationSociété de Newport M-VIS3660-RG4-325A
Unité de contrôle de l’oxymètre et capteur :
MouseOxPlus, Starr Life Sciences
Corp.
WPI O15001
Cône de nez souple transparent : unité Microflex Non-Rebreathing avec un Rat NoseconeWPI EZ-103A

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