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Article de méthode

Dosage de la luciférase pour mesurer l’activité de la γ-sécrétase dans les cellules humaines

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8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Wang, B., et al., Mesure quantitative de la protéine précurseur amyloïde médiée par la γ-sécrétase et du clivage de l’encoche dans les plateformes d’essai de rapporteur de luciférase basées sur les cellules. J. Vis. Exp. (2018).

Cette vidéo montre la procédure de mesure de l’activité de la γ-sécrétase dans des cellules humaines génétiquement modifiées à l’aide d’un système inductible par la tétracycline. Le processus consiste à induire l’expression du gène APP avec la tétracycline, à générer des peptides β amyloïde et à activer la production de luciférase. La bioluminescence résultant de la réaction luciférase-substrat est ensuite mesurée, reflétant l’activité de la γ-sécrétase.

Protocole

Toutes les procédures impliquant le prélèvement d'échantillons ont été effectuées conformément aux directives de l'IRB de l'institut.

1. Mesure des signaux rapporteurs de la luciférase, qui correspondent au clivage de la γ-sécrétase de APP-C99 ( protéine précurseur amyloïde - fragment d’acide aminé C-terminal)

NOTE : Veuillez vous référer aux publications précédentes pour des descriptions détaillées de la génération des cellules CG (C99-Gal4).

  1. Implanter des cellules CG (20 000 cellules/puits) sur des microplaques à 96 puits à un volume final de 200 μL/puits dans un milieu de croissance composé de milieu d'aigle modifié de Dulbecco (DMEM) et de 10 % de sérum de bovin fœtal (FBS), de 5 μg/mL de blasticidine, de 250 μg/mL d'antibiotique (, par exemple , zéocine), et 200 μg/mL d’hygromycine B.
    1. Comptez les cellules à l’aide d’un hémocytomètre.
    2. Transférez les microplaques dans un incubateur humidifié en CO2 et incubez à 37 °C pendant la nuit.
  2. Retirer 100 μL de milieu de croissance de chaque puits.
  3. Ajouter 100 μL/puits de milieu de croissance contenant 2 μg/mL de tétracycline avec 0,2 % de diméthylsulfoxyde (DMSO), 2 μM CL-387,785, 2 μM de n-[N-(3,5-difluorophénacétyl-L-alanyl)]-S-phénylglycine t-butylester (DAPT), ou d’autres inhibiteurs apparentés d’ErbB1/ErbB2.
  4. Incuber des cellules CG traitées dans des microplaques à 37 °C pendant 24 h.
  5. Retirer 150 μL/puits de milieu de croissance des microplaques.
  6. Ajouter 50 μL/puits de réactif de dosage de la luciférase (voir Table des matériaux).
  7. Transférez les microplaques dans un lecteur de microplaques à luminescence.
    1. Maintenez les microplaques à température ambiante pendant 5 min en les agitant doucement.
  8. Déterminez la luminescence émise par Firefly luciférase (FL) à l’aide d’un programme prédéfini stocké dans le lecteur de microplaques de luminescence.

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Lecteur de plaques de luminescence VictorLightPerkinElmerRéférence 2030-0010
Classe II, enceinte de sécurité biologique de type 2Thermo ScientificSérie 1300 A2
Référence : CL-387 785EMD CalbiochemRéférence 233100-1MG
DAPTMerckRéférence 565770
Milieu Eagle modifié de Dulbecco (DMEM)Thermo Fisher12100046Principal composant du milieu de croissance
Sérum fœtal bovin (FBS)Thermo Fisher16000044
BlasticidineThermo FisherA1113903
ZeocinThermo FisherRéf. R25005
Hygromycine BGibco10687010
HémocytomèreSigma-AldrichBR717805 Aldrich
Microplaque à 96 puitsNunc156545
tétracyclinesigmaRéf. T7660
Diméthylsulfoxyde (DMSO)sigmaD2650
Réactif d’essai de luciférase Steady-GloPromegaE2510
Incubateur à CO2 humidifiéRevcoUltima II
Lignée cellulaire T-REx293InvitrogenRéf. R71007
Logiciel Wallac 1420 version 3.0PerkinElmerLogiciel de contrôle de l’instrument du lecteur de microplaques à luminescence

Étiquettes

Activité de la gamma-sécrétasesystème inductible à la tétracyclineprotéine précurseur amyloïdemesure de la bioluminescencelecteur de microplaquesessai basé sur des cellulesinhibiteurs de la gamma-sécrétaseexpression du gène APPréaction du substrat de la luciférase