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Article de méthode

Induction d’une hémorragie pontique massive dans un modèle de rat par injection sanguine autologue

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28 avril 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Tang, X. et. al., Hémorragie pontique massive par double injection de sang autologues. J. Vis. Exp. (2021)

Ce protocole décrit l’infusion contrôlée de sang autologue dans la région pontique du cerveau d’un rat pour modéliser une hémorragie pontique massive. Le but est de simuler une hémorragie cérébrale localisée en augmentant la pression localisée.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

  1. Animal et instruments
  2. Utiliser des rats Sprague-Dawley mâles de 8 semaines pesant 250 ± 10 g.
  3. Hébergez les rats pendant au moins 7 jours avant l’opération dans des conditions environnementales contrôlées avec une température ambiante de 25 °C, une humidité relative de 65 % et un cycle lumière-obscurité de 12/12 h.
  4. Fournir de la nourriture et de l’eau sans limite.
  5. Préparez les instruments (Figure 1A-E).

2. Injectez le sang dans le pons

  1. Pesez à nouveau les rats 3 jours avant l’opération pour sélectionner des rats ayant un poids corporel approprié pour les expériences.
  2. Pendant les 3 jours avant la modélisation, entraînez les rats à marcher sur la poutre d’équilibre 3 fois par jour pour vous assurer que les rats normaux puissent passer la poutre d’équilibre sans pause.
  3. Préchauffez le coussin chauffant à 37 °C avant l’anesthésie.
  4. Fixez une microperceuse au support sur le cadre stéréotaxique.
  5. Injectez aux rats 50 mg/kg de kétamine et 5 mg/kg de xylazine par voie intrapéritonéale. Attendez qu’il n’y ait plus de réponse par pincement.
  6. Transportez le rat dans le cadre stéréotaxique en position couchée. Placez les barres auriculaires au-dessus du conduit auditif pour sécuriser la tête. Fixez le crâne en position horizontale pour éviter que l’injection ne soit faussée (Figure 1F).
  7. Maintenez l’anesthésie par isoflurane (97,5 % d’oxygène et 2,5 % d’isoflurane) à travers un cône de nez stéréotaxique avec un orifice d’entrée et de sortie.
  8. Utilisez une pommade pour les yeux pour garder la cornée humide.
  9. Rasez les cheveux au-dessus du crâne avec un micro-rasoir.
  10. Tracez une ligne médiane de 3 cm avec un marqueur dans le crâne à partir de la ligne du canthus latéral bilatéral jusqu’à 0,5 cm derrière la fontanelle postérieure, comme le montre la figure 1F.
  11. Appliquez le gommage chirurgical Entoiodine de manière circulaire, en commençant par le milieu de la ligne médiane marquée et en tournant vers l’extérieur.
  12. Place le champ chirurgical.
  13. Faites une incision avec un scalpel le long de la ligne médiane marquée.
  14. Utilisez un coton-tige pour enlever tout sang potentiel.
  15. Placez un morceau de pince de chaque côté du rabat du cuir chevelu pour exposer le crâne (Figure 1G).
  16. Trempez un coton-tige dans une solution saline à 0,9 % et retirez délicatement les tissus conjonctifs de l’os du crâne pour éviter que les tissus conjonctifs ne se coincent dans la micro-perceuse.
  17. Marquez le point central du bregma comme point d’origine à l’aide d’un marqueur.
  18. Effectuez une craniotomie (1 mm de diamètre) à l’aide d’une micro-perceuse à AP-9.0 mm, Lat 0 mm (Figure 2B et Tableau 1). Procédez avec prudence car ce point est très proche du sinus veineux (Figure 1G).
  19. Retirez la microperceuse du cadre stéréotaxique.
  20. Insérez une seringue Hamilton de 100 μL dans le support stéréotaxique (Figure 1K). Allumez l’interrupteur de la pompe d’injection, cliquez sur le bouton d’inhalation rapide, aspirez la solution d’héparine (12500 U diluée dans 100 ml de solution saline) à 100 μL, puis vidangez-la complètement pour éviter que le sang ne coagule trop rapidement.
  21. Appliquez un gommage chirurgical à la chlorhexidine et à 75 % d’alcool sur toute la queue, de la racine à la pointe, au moins 3 fois pour désinfecter la peau, adoucir l’excitation et dilater la veine de la queue pour augmenter le taux de réussite de l’injection.
  22. Fixez une acupuncture du cuir chevelu à une seringue de 1 ml.
  23. Insérez l’acupuncture du cuir chevelu dans une veine latérale de la queue à 3 cm de l’extrémité de la queue et prélevez 150 μL de sang (Figure 1H).
  24. Retirez l’acupuncture du cuir chevelu de la seringue de 1 ml.
  25. Transférez le sang dans un tube (Figure 1I).
    REMARQUE : Transférez rapidement pour éviter la coagulation du sang.
  26. Change les gants chirurgicaux.
  27. Choisissez le mode Retrait, réglez le volume sur 100 μL, réglez la vitesse sur 200 μL/min, cliquez sur le bouton RUN et aspirez 100 μL de sang dans la seringue Hamilton (Figure 1J).
  28. Choisissez le mode Infuse et réglez la vitesse à 1 μL/min.
  29. Avancez la seringue jusqu’à ce que l’embout atteigne 9,2 mm sous la surface du cerveau (Figure 2C et Figure 1L).
  30. Cliquez sur le bouton Exécuter pour injecter les premiers 10 μL de sang à une vitesse de 1 μL/min (Tableau 1).
  31. Arrêtez l’injection et laissez la seringue en position pendant 20 min pour empêcher le sang de circuler dans l’espace sous-arachnoïdien.
  32. Rétractez la seringue jusqu’à ce que l’embout arrive à 9.0 mm sous la surface du cerveau.
  33. Redémarrez l’injection à la même vitesse de 1 μL/min jusqu’à ce que le sang résiduel ait été complètement injecté.
  34. Laissez la seringue en position pendant 10 min pour éviter le reflux sanguin.
  35. Retirez lentement la seringue du cerveau.
  36. Utilisez du ciment osseux pour couvrir le trou de craniotomie.
  37. Lorsque le ciment sèche, suturez la plaie avec un filament de suture en polyamide 4-0. Après avoir cousu 3 ou 4 mailles, faites 2-1-1 nœuds chirurgicaux standard.
  38. Pour prévenir l’infection, injectez au rat de la pénicilline (0,25 mL, 80 UI diluée dans 4 mL de solution saline) par voie intrapéritonéale.
  39. Injectez par voie sous-cutanée du tartrate de butorphanol (2,5 mg/kg) et répétez l’injection toutes les 2 heures pour soulager la douleur postopératoire jusqu’à 24 heures après l’opération.
  40. Observez le rat toutes les 15 min jusqu’à ce qu’il se remette complètement de l’anesthésie. Remettez-le dans la cage d’origine, avec un coussin chauffant sous la cage. Donnez au rat un accès libre à la nourriture et à l’eau jusqu’au sacrifice.

Tableau 1 : Injection de sang autologue.

Mild

Moderate

Massif

Volume total

30 μL

60 μL

100 μL

Première injection

Coordonnées stéréotaxiques

AP -9.0 mm ; Lat 0 ; Vert -9.2 mm

Volume

10 μL

10 μL

10 μL

vitesse

1 μL/min

1 μL/min

1 μL/min

Interval time

20 min

20 min

20 min

Second injection

<

Coordonnées stéréotaxiques

AP -9.0 mm ; Lat 0 ; Vert -9.2 mm

AP -9.0 mm ; Lat 0 ; Vert -9.0 mm

Volume

20 μL

50 μL

90 μL

vitesse

1 μL/min

1 μL/min

1 μL/min

Avant le retrait de l’aiguille

10 min

10 min

10 min

AP : position antéropostérieure

Lat : latéral

Vert : vertical

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Résultats

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Figure 1 : Instruments et procédure chirurgicale. (A) Appareil d’anesthésie. (B) Instruments chirurgicaux. (C) Micro-forage. (D) Pompe de micro-injection. (E) Appareil stéréotaxique. (F) Une ligne est marquée au milieu du crâne. (G) La flèche jaune pointe vers l’emplacement de l’exercice. (H) Drainage du sang de la veine de la queu...

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
100ml solution salineGuangdong yixiang191222201 C1Preparing heparin diluent
100μl MicroinjectorShanghai Gaoge Injection de sang
1ml SeringueJiangsu Zhiyu20191014Prélever du sang autologue de la veine de la queue
75 % d’alcoolShandong Lierkang Désinfection de la queue
Ruban adhésifShanghai Jinzhong <
Système d’anesthésie animaleRWDR510-31S-6Inducation et maintien de l’anesthésie
Poutre d’équilibreJiangsu Saiangsi Pour les scores de déficit neurologique
Ciment osseuxShanghai Xinshiji20180306
Butorphanol tartrateJiangsu Hengrui
Perceuse crânienne électriqueNanjing Darwin biotechnology20180090018Faire un trou de bavure sur le crâne
EP tubeNantong Surui <
Crème pour les yeux à l’érythromycinePharmacie du Yunnan
Coussin chauffantDangerous JungleJR01Rester au chaud
Héparine sodique injectableChengdu Haitong Pharmacal Company190701Préparation du diluant à l’héparine
IndoPhorsGuoyao de Chine <
IsofluraneRWD<
Pompe de micro-injectionBaoding LeifuTFD03-01-CInjection de sang
Porte-aiguilleShanghai JinzhongJ32020Instruments Surgicl
PénicilineGuoyao de Chine Prévention des
-pourboiresJiangxi Songhe Instruments
Aiguille de cuir cheveluJiangxi Hongda20200313Retirer du sang autologue de la veine de la queue
ScalpelShanghai Kaiyuan170902Instruments
Ciseaux de cisaillementShanghai JinzhongY00040Surgicl instruments
Appareil stéréotaxiqueRWD900-00001-00Pour le positionnement chirurgical
Serviette chirurgicaleXinxiang Huakangweicai
20070601
Aiguille de sutureShanghai Jinzhong Surgicl instruments
Ciseaux de sutureShanghai JinzhongJ25041Surgicl instruments
Pince de maintien des tissusShanghai JinzhongJ31080Instruments surgicl
autologue de rattd style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;alignementvertical :bas ;'> instruments surgicls< style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;align-vertical :bas ;'>Instrumentssurgicls< style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;align-vertical :bas ;'>Pour la gestion de la douleurstyle='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;alignement vertical :bas ;'>Transfert de sangautologue< style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;alignementvertical :bas ;'>Protection des yeuxstyle='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;align-vertical :bas ;'>Stérilisationtd style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;alignement de texte :centre ;alignement vertical :bas ;'>20080701< style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;alignement vertical :bas ;'>Induction et maintien de l’anesthésieautologue infections Q surgicls surgiclaux< style='couleur-de-fond :#ffffff ;rembourrage :0px 3px ;align-vertical :bas ;'>Instruments Surgicl

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