Article de méthode

Micro-injection stéréotaxique d’un vecteur viral pour la manipulation de gènes chez un striatum de bébé souris

7 août 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Chen, S., et al., Chirurgie stéréotaxique pour la manipulation génétique dans les cellules striales des cerveaux de souris néonatales. J. Vis. Exp. (2018)

Cette vidéo démontre l’injection stéréotaxique d’un vecteur viral codant pour la Cre recombinase et la protéine de fluorescence verte ou GFP dans le striatum d’un chiot de souris génétiquement modifié pour réaliser une manipulation génique en excisant une cassette STOP flanquée de loxP, activant la protéine de fluorescence rouge ou RFP en tant que rapporteur.

Protocole

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Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Micro-injection

  1. Préparez la chirurgie stérile en essuyant soigneusement l’instrument stéréotaxique avec de l’éthanol à 70 %. Immergez l’instrument chirurgical dans de l’éthanol à 70 % pour le stériliser.
  2. Frottez la tête du chiot avec de l’éthanol à 70 %. Localisez le lambda de repère sur le crâne et marquez-le avec un marqueur. Dirigez la pointe de l’aiguille vers le lambda et réglez les coordonnées antéro-postérieure (AP) et médiale-latérale (ML) sur zéro.
  3. Déplacez le bras d’injection vers le site cible en fonction des coordonnées X et Y du site cible. Pour le striatum des petits du jour postnatal (P) 2, les coordonnées sont : AP, +2,4 mm en avant du lambda ; ML, ±1,0 mm latéralement à partir de la ligne médiane ; dorsale-ventrale (DV), à -1,7 mm du crâne. Marquez la position du colorant vert rapide dans le tube PE10 avec un stylo.
  4. Abaissez lentement l’aiguille d’injection 30G pour qu’elle pénètre à travers la peau et le crâne, puis remontez la pointe de l’aiguille jusqu’à ce qu’elle s’arrête à la surface du crâne. Réglez la coordonnée DV sur zéro.
  5. Abaissez lentement l’aiguille d’injection 30G jusqu’à ce qu’elle atteigne la coordonnée DV du site cible. Attendez 1 min pour permettre au parenchyme de reprendre sa forme normale. Ensuite, exécutez le programme de micro-injection (100 nL/min).
  6. Assurez-vous que la marque du colorant vert rapide se déplace dans le tube PE pour vous assurer que le liquide viral est injecté dans le cerveau.
  7. Attendez 1 minute après la fin de la microinjection, puis remontez lentement et progressivement l’aiguille jusqu’à la hauteur de la profondeur DV en 30 s. Après 30 s, retirez lentement l’aiguille de la tête du chiot.

2. Récupération post-chirurgicale du chiot

  1. Réchauffez le chiot pendant 20 min dans un incubateur à 33 °C. Vérifiez le rétablissement du chiot après une anesthésie d’hypothermie toutes les 5 minutes jusqu’à ce que le chiot ait repris suffisamment conscience pour maintenir sa décubitus sternal.
  2. Remettez le chiot à la mère une fois qu’il est complètement rétabli.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
30G PrecisionGlide NeedleBecton DickinsonREF 305106
Hamilton MICROLITER SeringueHamilton8030030G pour tube PE10 ; l’aiguille 26G nécessite un adaptateur PE20
Tube en polyéthylène PE20Becton Dickinson427406
Tube en polyéthylène PE10Becton Dickinson427401
Pompe à seringue à micro-débitLonger Precision Pump Co.TJ-2A (Contrôleur) et L0107-2A (Unité d’entraînement)
Seringue 25GBecton DickinsonREF 302105
Vert rapideSigma-AldrichF-72520.10 %
Standard Stereotaxic InstrumentsRWD Life Science68037Sans utiliser 68030 Adaptateur souris/rat néonatal
LSM 880 Microscope confocalZeissLSM 880
AAV9.hSynapsin.HI.eGFP-Cre.WPRE.SV40Penn Vector CoreAV-9-PV1848Lot # CS0987, 5.506x1013 (GC/mL)
B6. Cg-Gt(ROSA)26Sortm14(CAG-tdTomato)Hze/JLe Laboratoire Jackson7914Ai14
B6(Cg)-Foxp2tm1.1Sfis/CfreJLe Laboratoire Jackson26259Foxp2fl/fl

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Mots-clés

Cre RecombinaseGFP ExpressionRFP ReporterStereotaxic FrameBrain Atlas CoordinatesMicroinjection Program

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