Method Article

Visualisation des Caenorhabditis elegans Utilisation du colorant lipophile Vital, Dii

DOI:

10.3791/3362

January 30th, 2012

In This Article

Summary

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Nous présentons une méthode pour visualiser les cuticules en direct C. elegans En utilisant les colorants lipophiles rouge fluorescent DII (1,1 '-dioctadécyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perchlorate), qui est couramment utilisé dans C. elegans Pour visualiser les neurones écologiquement exposés. Avec ce protocole optimisé, les structures des ailes du nez et annulaire cuticulaires sont colorés par DII et observées par microscopie composé.

Abstract

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La cuticule de C. elegans est une structure hautement résistante qui entoure l'extérieur de 1-4 animaux. La cuticule protège non seulement l'animal de l'environnement, mais détermine aussi la forme du corps et joue un rôle dans la motilité 4-6. Plusieurs couches sécrétées par les cellules épidermiques comprennent la cuticule, y compris une couche lipidique externe 7.

Crêtes circonférentielle dans la cuticule appelé pattern anneaux de la longueur de l'animal et sont présents pendant toutes les étapes du développement 8. Alae sont des crêtes longitudinales qui sont présents lors des étapes spécifiques du développement, y compris L1, Dauer, et les stades adultes 2,9. Des mutations dans les gènes qui affectent l'organisation du collagène cuticulaire peut modifier la structure et la morphologie cuticulaires corps animal 5,6,10,11. Alors que l'imagerie par microscopie cuticulaires composé avec l'optique DIC est possible, les méthodes actuelles qui mettent en évidence les structures cuticulaires comprennent fluorescentescent l'expression du transgène 12, 13 coloration des anticorps, et la microscopie électronique 1. Étiqueté de germe de blé agglutinine (WGA) a également été utilisé pour visualiser les glycoprotéines cuticulaires, mais il est limité dans la résolution plus fine des structures cuticulaires 14. Coloration de la surface de la cuticule en utilisant un colorant fluorescent a été observée, mais jamais caractérisés en détail 15. Nous présentons une méthode pour visualiser en direct la cuticule C. elegans utilisant le colorant rouge fluorescent lipophile DII (1,1 '-dioctadécyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perchlorate), qui est couramment utilisé en C. elegans pour visualiser les neurones écologiquement exposés. Ce protocole optimisé pour la coloration de Dii est une méthode simple et robuste pour la visualisation haute résolution fluorescentes d'anneaux, du nez, vulve, queue du mâle, et la queue hermaphrodites pic en C. elegans.

Protocol

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1. Préparation de DiI tache

  1. Préparer une solution stock de 20 mg / mL DII (Biotium, Inc, Hayward, CA) dans le DMF. Dii est sensible à la lumière, afin de protéger de la lumière DiI en enveloppant dans du papier.
  2. Créer une dilution de travail de DiI en ajoutant 0,6 uL DiI stocks d'399,4 uL M9 pour chaque population. Cela devrait donner une dilution finale de travail de 30 ug / ml dans le DiI M9. Cela peut être étendu pour la coloration des populations multiples simultanément. Bouclier DiI de la lumière en enveloppant le tube (s) au fleuret.

2. Préparation de nématodes

  1. Utilisez une plaque de 60 mm conte....

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Discussion

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La méthode de coloration DiI présenté ici permet d'une façon relativement rapide et pratique pour visualiser la cuticule chez C. elegans. En réorientation et l'optimisation d'une méthode couramment utilisée pour l'image écologiquement exposés neurones sensoriels 15,17, Dii peut être utilisé pour fluorescence tache deux ailes du nez et des structures annulaires (figures 1 et 2), ainsi que la vulve, queue du mâle, et la queue hermaphrodites pic (Figure 3). Nous avons trouvé que la solut.......

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Disclosures

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Nous n'avons rien à révéler.

Acknowledgements

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Nous tenons à remercier S. Taneja-Bageshwar, K. Beifuss, S. Kedroske, et HC. Hsiao pour les discussions utiles. Ce travail a été financé par des fonds de démarrage du ministère TAMHSC de médecine moléculaire et cellulaire. Le champ composé et disque rotatif ont été achetés avec des fonds fournis par le ministère et le Bureau du doyen TAMHSC. Certaines souches ont été fournis par le Centre de Génétique Caenorhabditis, qui est financé par le National Center for Research Resources. pRF4 (rol-6 (su1006)) a été un don de feu A..

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Réactifs Synonymes Société Numéro de catalogue Commentaires
DiI 1,1 '-dioctadécyl-3, 3,3', 3'-tetramethylindocarbocyanine perchlorate Biotium, Inc 60010 Dilution de stock:
20 mg / ml dans le DMF
dilution de travail: 30 mg / ml
DMF Diméthylformamide Sigma-Aldrich, Inc D4551
Triton
X-100
Octylphénoxypolyéthoxyéthanol VWR International, LLC. EM-9410
M9 22mm KH 2 PO 4, 42mm Na 2 HPO 4, 86mm de NaCl, 1 mM MgSO 4
NGM Milieu de croissance des nématodes IPM Scientific, Inc 11006-501 Peut être préparé en suivant le protocole de gélose NGM 18
L'agar-agar EMD Chemicals, Inc 1,01614 4% dans de l'eau
Lévamisole Chlorhydrate de lévamisole Sigma-Aldrich, Inc 31742 100 M - 1 mM lévamisole tel que requis
Lames de microscope VWR International, LLC. 16005-106
Lamelles de microscope VWR International, LLC. 16004-302
Champ composé Carl Zeiss, Inc A1m Utiliser des objectifs pour répondre aux besoins de l'expérience
TRITC ou autre filtre compatibles   Chroma Technology Corp 49005 HE - DsRed (TRITC/Cy3) a des ratés ensemble de filtres

References

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  1. Cox, G. N., Kusch, M., Edgar, R. S. Cuticle of Caenorhabditis elegans: its isolation and partial characterization. The Journal of Cell Biology. 90, 7-17 (1981).
  2. Cox, G. N., Staprans, S., Edgar, R. S.

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C elegans CuticleDiI StainingFluorescent DyeCuticle VisualizationNematode StainingAnnuli AlaeFluorescence MicroscopyLipophilic DyeCuticle StructureLive Imaging

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