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Article de méthode

Préparation des tissus et des fibres Immunocoloration souris nerveuses sensitives innervant la peau et les os du membre

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DOI :

10.3791/3485

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26 janvier 2012

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Dans cet article

Résumé

L'identification immunocytochimique de sensitive périphérique sous-types de fibres nerveuses (et de détection de l'expression des protéines qui y sont) sont essentiels à la compréhension des mécanismes moléculaires sous-jacents sensations périphériques. Nous décrivons ici les méthodes de préparation d'échantillons de tissus périphériques / viscérale, tels que les os de la peau et des membres, par immunomarquage spécifique des fibres nerveuses périphériques sensorielles.

Résumé

Détection et traitement primaire des propriétés physiques, chimiques et thermiques par des stimuli sensoriels périphériques fibres nerveuses sensorielles est la clé de la perception sensorielle chez les animaux et les humains. Ces fibres nerveuses sensitives périphériques expriment une multitude de récepteurs et de protéines des canaux ioniques qui détectent et initier des stimuli sensoriels spécifiques. Les méthodes sont disponibles pour caractériser les propriétés électriques des fibres nerveuses sensorielles périphériques innervant la peau, qui peut également être utilisé pour identifier l'expression fonctionnelle des protéines des canaux ioniques spécifiques dans ces fibres. Toutefois, les méthodes électrophysiologiques similaires ne sont pas disponibles (et sont également difficiles à développer) pour la détection de l'expression fonctionnelle des récepteurs et des protéines des canaux ioniques dans les fibres nerveuses sensorielles périphériques innervant les autres viscères, y compris les tissus les plus difficiles tels que les os. Par ailleurs, ces méthodes électrophysiologiques ne peut pas être utilisé pour déterminer l'expression de la protéine non excitabless dans les zones périphériques des fibres nerveuses sensitives. Par conséquent, immunomarquage d'échantillons de tissus périphériques / viscérale pour fivers nerveuses sensorielles fournit la meilleure façon possible afin de déterminer l'expression de protéines spécifiques de l'intérêt pour ces fibres nerveuses. Jusqu'ici, la plupart des études d'expression de protéines dans les neurones sensoriels ont utilisé immunomarquage procédures dans les ganglions sensitifs, où l'information est limitée à l'expression de protéines spécifiques dans le corps cellulaire de certains types ou sous-ensembles de neurones sensoriels. Nous rapportons ici les méthodes détaillées / protocoles pour la préparation d'échantillons de tissus périphériques / viscérale pour l'immunocoloration des périphériques fibres nerveuses sensitives. Nous détail les méthodes spécifiquement pour la préparation de la peau ou plantaire biopsie et d'os (fémur) les articles de la souris pour l'immunocoloration des périphériques fibres nerveuses sensitives. Ces méthodes ne sont pas seulement essentiels pour la détermination qualitative de l'expression des protéines dans les neurones sensoriels périphériques, mais aussi fournir une méthode de dosage quantitatif pourdéterminer les changements dans les niveaux d'expression de protéines dans des types spécifiques ou des sous-ensembles de fibres sensorielles, ainsi que pour déterminer les modifications morphologiques et / ou anatomiques dans le nombre et la densité des fibres sensorielles au cours de divers états pathologiques. De plus, ces méthodes ne sont pas confinés à la coloration des fibres nerveuses sensorielles que, mais peut aussi être utilisé pour la coloration des types de fibres nerveuses dans la peau, les os et autres tissus viscéraux.

Protocole

1. Perfusion des animaux

Toutes les procédures réalisées sur l'animal dans cette étude sont approuvées par le soin des animaux et du Comité institutionnel Utilisation de l'Université de l'Iowa, et suivre les directives du NIH pour l'utilisation d'animaux dans la recherche.

  1. Le jour avant la perfusion, préparer 1 L de tampon phosphate (0,2 M PB en double H 2 O distillée, pH 7,4), et conserver à 4 ° C. Il sera utilisé pour les processus de perfusion et de post-fixation.
  2. Le jour de la perfusion, préparer 500 ml de paraformaldéhyde 4,0% dans 0,1 M PB (PFA, pH 7,4) la solution de fixation, d'un volume suffisant p....

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Discussion

Ici, nous avons détaillé les méthodes de préparation de la peau des souris et des coupes de tissus osseux pour immunomarquage et la détection des périphériques fibres nerveuses sensitives. Les sections produite à partir de biopsies plantaires contiennent à la fois la peau glabre et poilue, ce qui signifie que le protocole peut être utilisé sur tout type de peau. Ces techniques peuvent également être employées pour colorer les autres types de cellules dans ces tissus (leucocytes, vasculaire endothélium, muscle lisse, ent.......

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Déclarations de divulgation

Pas de conflits d'intérêts déclarés.

Remerciements

Nous remercions le Dr M. Yuriy Usachev pour son aide dans la normalisation initiale de la microscopie confocale / imagerie de la souris immunomarquage plantaires biopsie, et le Dr Donna L. Hammond pour son aide continue et la critique constructive à ce travail. Ce travail a été financé par des subventions du NINDS / NIH (NS069898), et une attribution de subvention Idée de développement du ministère de la Défense de la prostate Cancer Research Programme (DoD-PCRP-101096) pour DPM

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Nom du produit Tapez Société No de catalogue Commentaire
3mm Harris Micro-Punch Matériel Ted Pella 15094
Pompe à perfusion Matériel VWR International 23609-170
Paraformaldéhyde Réactif Fisher Scientific T353
L'acide picrique Réactif Sigma-Aldrich 239801
Composé Embedding octobre Réactif Tissue-Tek 4583
Cyto-Freeze aérosol cryogénique Matériel Société de contrôle 3118
Sérum de chèvre Réactif Sigma-Aldrich G9023
Bac Incubation et couvercle pour Immunocoloration (Large) Matériel RPI Corp 248270 (bac)
248 270-A (couvercle)
Stylo ImmEdge barrière hydrophobe Matériel Vector Laboratories H-4000
Brosses à cheveux de Camel (# 1 épaisseur) Matériel Ted Pella 11859
Pro-Long Or Milieu de montage Réactif Invitrogen P36930

Références

  1. Hoffman, E. M., Schechter, R., Miller, K. E. Fixative Composition Alters Distributions of Immunoreactivity for Glutaminase and Two Markers of Nociceptive Neurons, Nav 1.8 and TRPV1, in the Rat Dorsal Root Ganglion. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 58, 329-344 (2010).
  2. Neves, J. D. S., Omar, N. F., Narvaes, E. A. O., Gomes....

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Réimpressions et autorisations

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