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Dans cette étude, nous décrivons un protocole efficace destiné à un microdispositif d'anticorps multiplexé à haut débit avec détection par protéines liant les glycanes, permettant le profilage de la glycosylation de protéines spécifiques. La glycosylation des protéines est la modification post-traductionnelle la plus répandue sur les protéines, et entraîne des modifications diversifiées de leurs propriétés physiques, chimiques et biologiques. Étant donné que les mécanismes de glycosylation sont particulièrement sensibles à la progression des maladies et aux transformations malignes, une glycosylation anormale a été reconnue comme biomarqueur de détection précoce du cancer et d'autres maladies. Toutefois, les méthodes actuelles d'étude de la glycosylation des protéines sont généralement trop complexes ou coûteuses pour être utilisées dans la plupart des laboratoires courants ou des contextes cliniques, d'où la nécessité d'une méthode plus pratique. Le nouveau protocole décrit dans cette étude utilise un microdispositif d'anticorps chimiquement bloqué avec détection par protéines liant les glycanes (PLG) et réduit considérablement le temps, le coût et les besoins en équipement de laboratoire pour l'étude de la glycosylation des protéines. Dans cette méthode, plusieurs anticorps spécifiques des glycoprotéines immobilisés sont imprimés directement sur les lames de microdispositif, et les N-glycanes présents sur les anticorps sont bloqués. Les anticorps spécifiques des glycoprotéines bloqués et immobilisés sont alors capables de capturer et d'isoler des glycoprotéines à partir d'un échantillon complexe appliqué directement sur les lames de microdispositif. La détection des glycanes peut ensuite être réalisée par l'application de lectines biotinylées et d'autres PLG sur la lame de microdispositif, tandis que les niveaux de liaison peuvent être déterminés à l'aide de streptavidine Dylight 549. Grâce à l'utilisation d'un panel d'anticorps et à la sonde avec plusieurs lectines biotinylées, cette méthode permet d'établir un profil de glycosylation efficace des différentes protéines présentes dans un échantillon humain ou animal donné.
Introduction
La glycosylation des protéines, qui est la modification post-traductionnelle la plus répandue sur les protéines, modifie les propriétés physiques, chimiques et biologiques d'une protéine et joue un rôle fondamental dans divers processus biologiques1-6. Étant donné que la machinerie de glycosylation est particulièrement sensible à la progression de la maladie et à la transformation maligne, une glycosylation anormale a été reconnue comme un biomarqueur de détection précoce du cancer et d'autres maladies. 7-12. En effet, la plupart des biomarqueurs tumoraux actuels, tels que la fraction L3 de α-1 fœtoprotéine (AFP) pour le carcinome hépatocellulaire 13-15et CA199 pour le cancer du pancréas 16, 17 sont tous des motifs glucidiques anormaux présents sur les glycoprotéines. Toutefois, les méthodes d'étude de la glycosylation des protéines se sont révélées complexes et inadaptées aux laboratoires de routine et aux contextes cliniques. Chen et al. a récemment mis au point un microréseau d'anticorps chimiquement bloqué associé à une méthode de détection par protéines liant les glycanes (GBP) permettant le profilage, à haut débit et en multiplex, de la glycosylation de glycoprotéines natives dans un échantillon complexe 18. Dans cette méthode de puces à ADN basée sur l'affinité, de multiples anticorps spécifiques des glycoprotéines immobilisés capturent et isolent directement les glycoprotéines à partir d'un mélange complexe sur la lame de puces, et les glycanes associés à chaque protéine capturée individuellement sont mesurés à l'aide de GBP. Étant donné que tous les anticorps normaux contiennent des N-glycanes pouvant être reconnus par la plupart des GBP, l'étape cruciale de cette méthode consiste à bloquer chimiquement les glycanes présents sur les anticorps afin d'empêcher leur liaison aux GBP. Dans la procédure, les cisLes groupes -diol des glycanes présents sur les anticorps ont d'abord été oxydés en groupes aldéhyde à l'aide de NaIO₄.4 dans un tampon d'acétate de sodium en évitant la lumière. Les groupes aldéhyde ont ensuite été conjugués au groupe hydrazide d'un agent de liaison croisée, le chlorure d'acide 4-(4-N-maleimidophényl)butyrique hydrazide (MPBH), suivi de la conjugaison d'un dipeptide, Cys-Gly, au groupe maléimide du MPBH. Ainsi, les groupes cis-diol des glycanes des anticorps ont été convertis en groupes volumineux non hydroxyles, ce qui entrave la liaison des lectines et autres GBP aux anticorps de capture. Cette procédure de blocage permet aux GBP et aux lectines de ne se lier qu'aux glycanes des protéines capturées. Après ce blocage chimique, les échantillons sériques ont été incubés avec la matrice d'anticorps, suivis par la détection des glycanes à l'aide de différentes lectines et GBP biotinylées, puis visualisés avec la streptavidine-Cy3. L'utilisation parallèle d'un ensemble d'anticorps et de plusieurs sondes de lectines fournit des profils de glycosylation distincts pour de multiples protéines dans un échantillon donné 18-20. Cette méthode a été utilisée avec succès dans plusieurs laboratoires différents 1, 7, 13, 19-31Cependant, la stabilité du MPBH et du Cys-Gly, ainsi que la procédure complexe et longue de cette méthode, affectent la reproductibilité, l'efficacité et le rendement de la méthode. Dans ce nouveau protocole, nous avons remplacé à la fois le MPBH et le Cys-Gly par un réactif beaucoup plus stable, l'hydrazide de l'acide glutamique (Glu-hydrazide), ce qui a considérablement amélioré la reproductibilité de la méthode et simplifié et raccourci l'ensemble de la procédure, de sorte qu'elle peut être réalisée en une seule journée de travail. Dans ce nouveau protocole, nous décrivons la procédure détaillée, facilement adoptable par les laboratoires courants pour l'étude de routine de la glycosylation des protéines, ainsi que les techniques nécessaires pour obtenir des résultats reproductibles et reproductibles.