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Article de méthode

Un système d'

14K vues

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DOI :

10.3791/3979

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27 août 2012

 , 

Dans cet article

Résumé

Ici, nous décrivons une méthode pour l'isolement, la culture et la manipulation du pancréas embryonnaire de la souris. Cela représente une excellente Ex vivo Système pour l'étude des divers aspects du développement du pancréas, y compris la morphogenèse, la différenciation et la croissance. Explants de bourgeons pancréatiques peuvent être cultivées pendant plusieurs jours et utilisé dans une variété d'applications différentes, y compris l'ensemble de montage immunofluorescence et imagerie en temps réel.

Résumé

Le pancréas contrôle les fonctions vitales de notre corps, y compris la production d'enzymes digestives et la régulation de la glycémie 1. Bien que dans la dernière décennie de nombreuses études ont contribué à une base solide pour la compréhension de l'organogenèse du pancréas, des lacunes importantes subsistent dans notre connaissance de la formation du pancréas au début 2. Une compréhension complète de ces événements précoces donnent un aperçu de l'évolution de cet organe, mais aussi sur les maladies incurables qui ciblent le pancréas, comme le diabète ou le cancer du pancréas. Enfin, cette information sera générer un modèle pour l'élaboration de cellules en remplacement des traitements dans le cadre du diabète.

Au cours de l'embryogenèse, le pancréas provient de différentes excroissances embryonnaires de l'endoderme intestin antérieur dorsal et ventral à jour embryonnaire (E) 9,5 3,4 chez l'embryon de souris. Les deux excroissances evaginate dans le mésenchyme environnant solide épithéliumbourgeons l, qui subissent la prolifération, la différenciation et de branchement pour générer un organe pleinement matures 2,5,6. Des preuves récentes ont suggéré que la croissance et la différenciation des lignées de cellules pancréatiques, y compris les productrices d'insuline des cellules β, dépend de la bonne tissulaire architecture, remodelage épithélial et le positionnement cellulaire dans l'épithélium pancréatique de branchement 7,8. Cependant, comment morphogenèse de ramification se produit et est coordonné avec la prolifération et la différenciation dans le pancréas est largement inconnue. Ceci est en partie dû au fait que les connaissances actuelles sur ces processus de développement reposait presque exclusivement sur l'analyse des échantillons fixés, alors que les événements morphogénétiques sont très dynamiques.

Ici, nous présentons une méthode pour disséquer et de la souris en culture du pancréas embryonnaire ex vivo sur des bourgeons plats à fond de verre, ce qui permet la visualisation directe du pancréas en développement (figure 1). Ce culteure système est idéalement conçu pour la microscopie confocale à balayage laser et, en particulier, imagerie des cellules vivantes. Explants pancréatiques peuvent être préparés non seulement à partir d'embryons de souris de type sauvage, mais aussi à partir de souches de souris génétiquement modifiées (transgéniques ou knock-out par exemple), ce qui permet en temps réel des études de phénotypes mutants. En outre, ce système culture ex vivo est précieux pour étudier les effets des composés chimiques sur le développement du pancréas, ce qui permet d'obtenir des données quantitatives sur la prolifération et la croissance, l'allongement, la ramification, tubulogenèse et la différenciation. En conclusion, le développement d'une méthode in vivo du pancréas culture ex explant combiné avec l'imagerie haute résolution fournit une base solide pour l'observation d'événements morphogénétiques et de différenciation tels qu'ils se présentent dans l'embryon de souris en développement.

Protocole

Le protocole décrit ici a été adapté à la technique décrite à l'origine de Percival et Slack 9 et optimisé pour la microscopie confocale.

1. Revêtement de plats Glass Bottom Culture

Les étapes suivantes doivent être effectuées dans des conditions stériles dans une hotte à flux laminaire.

  1. Explants pancréatiques sont cultivées dans des boîtes de Pétri de 35 mm à 20 mm de diamètre en verre micropuits bas (par exemple MatTek Corporation). Utilisez un plat à fond de verre par la culture de l'explant et pendant toute la durée de la culture. A la veille de la dissection et l'....

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Discussion

Une fois le sort du pancréas est spécifié, les cellules progénitrices pancréatiques subissent une prolifération extensive, la différenciation et la morphogenèse, à terme, constituer un organe mature et fonctionnelle 2,4. À l'heure actuelle, comment les branches se déroule dans le pancréas et la façon dont elle est reliée à la prolifération et la différenciation des progéniteurs est largement inconnue. Des cultures d'explants pancréatiques représentent un système idéal pour élucider ces processus e.......

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d'intérêt déclaré.

Remerciements

La recherche dans le laboratoire Spagnoli. est financé par l'Association Helmholtz, FP7-GRI-2008-ENDOPANC subvention et ERC-2009-Starting Grant hépatopancréatique.

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Matériaux

Nom du réactif Entreprise Numéro de catalogue Commentaires
Anticorps:
Carboxypeptidase
E-cadhérine
F-actine
Le glucagon
Insuline
β1-intégrine
Pdx1
Pdx1
Phospho-Histone H3
AbD Serotec
Invitrogen
Molecular Probes
Immunostar
Millipore
Millipore
Abcam
Hybridome banque
Signalisation cellulaire
1810-0006
13-1900
A-12373
20076
4011-01
MAB1997
ab47267
F109-D12
9706
Basal Medium Eagle (BME) Sigma B1522-500ML Conservés dans des conditions stériles
Eau de qualité culture cellulaire AAP S15-012 Conservés dans des conditions stériles
Boîtes de culture (à fond de verre), 35 mm MatTek Corporation P35G 0-20-C-
Sérum d'Ane Chemicon S30-100 ml
Sérum de veau foetal Or AAP A15-151 Conservés dans des conditions stériles
La fibronectine Invitrogen 330100-8 Stock sol. 1 mg / ml dans de l'eau de qualité culture cellulaire
Gentamicine Invitrogen 15750-037 Conservés dans des conditions stériles
Glutamine Invitrogen 25030-024 Conservés dans des conditions stériles
4-ainsi multipuits Nunc 176740
Microscopes:
Microscope confocal inversé (LSM 700)
Stéréomicroscope (Discovery V12)
Zeiss

Zeiss
Objectifs:
C-Apochromat 10X / 0,45 W M27 (travail. dist 1,8 mm;. Profondeur d'imagerie ~ 100 mm), C-Apochromat 40X / 1,2 W Corr M27 (travail. dist 0,28 mm;. ~ Imagerie profondeur 50 um)

Transillumination d'en bas et à fibres optiques d'éclairage par le dessus
Paraformaldéhyde Roth 0335.3 Solution mère 20%
Pipette Pasteur (verre), 150 mm VWR HECH567 / 1
Pénicilline / Streptomycine AAP P11-010 Conservé dans c stérileonditions
Des boîtes de Pétri de 60 mm Greiner Bio-One 628102
Des boîtes de Pétri de 35 mm Greiner Bio-One 627161
1X PBS, pH 7,4 AAP H15-002 Conservés dans des conditions stériles
Printemps Ciseaux lame de 8 mm courbé Outils Fine Science 15023-10
Triton-X100 Roth 3051.3
Horloger foreceps Dumont # 5 Roth K342.1

Références

  1. Slack, J. Developmental biology of the pancreas. Development. 121, 1569-1580 (1995).
  2. Pan, F., Wright, C. Pancreas organogenesis: from bud to plexus to gland. Dev. Dyn. 240, 530-565 (2011).
  3. Puri, S., Hebrok, M.

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Réimpressions et autorisations

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