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Article de méthode

Analyse de la transcription génique unique cellule par l'ARN fluorescent

14.8K vues

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DOI :

10.3791/4073

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7 octobre 2012

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Dans cet article

Résumé

Fluorescent In situ (FISH) pour identifier des transcrits d'ARNm dans des cellules individuelles permet l'analyse de l'activité polygénique tel que la transcription simultanée de plus d'un membre de la Var dans Plasmodium falciparum Érythrocytes infectés 1. La technique est adaptable et peut être utilisé sur différents types de gènes, des cellules et des organismes.

Résumé

L'adhérence des érythrocytes infectés par Plasmodium falciparum (IE) à l'homme récepteurs endothéliaux au cours des infections de paludisme est médiée par l'expression de PfEMP1 variantes de protéines codées par les gènes var.

Le P. haploïde falciparum génome abrite environ 60 différents gènes var dont une seule a été soupçonnés d'être transcrit par cellule à la fois pendant la phase de l'infection du sang. Comment une telle réglementation mutuellement exclusif de la transcription des gènes var est atteint n'est pas claire, ainsi que l'identification des différents gènes var ou sous-groupes de gènes var associés aux différents récepteurs et les conséquences de la liaison différentielle sur les résultats cliniques de P. infections à P. falciparum. Récemment, le paradigme de la transcription mutuellement exclusive a été mise en doute par des essais de transcription individuelle sur la base de P. identification transcription falciparum chez inf uniqueète cellules érythrocytaires en utilisant l'ARN d'hybridation fluorescente in situ (FISH) de la transcription des gènes var par le parasite dans différents noyaux de P. falciparum IE 1.

Ici, nous présentons un protocole détaillé pour la réalisation de la méthodologie ARN-FISH pour l'analyse de la transcription des gènes var dans un seul noyau de P. falciparum infection des érythrocytes humains. La méthode est basée sur l'utilisation de la digoxigénine marqué à la biotine et des sondes d'ARN antisens en utilisant la TSA plus Fluorescence Palette Système 2 (Perkin Elmer), des analyses microscopiques et fraîchement sélectionné P. falciparum IE. Dans le procédé d'hybridation in situ peut être utilisé pour contrôler la transcription et la régulation d'une variété de gènes exprimés au cours des différentes étapes du P. cycle de vie falciparum et est adaptable à d'autres espèces de parasites du paludisme et d'autres organismes et des types cellulaires.

Protocole

1. Génération de fraîchement sélectionnées érythrocytes infectés

Pour ce test, les meilleurs résultats sont obtenus en utilisant des cultures fraîchement sélectionnés pour l'expression en surface de la protéine PfEMP1. Dans cette expérience particulière du P. 3D7 lignée falciparum a été sélectionné en utilisant des anticorps spécifiques, comme décrit précédemment 1.

Jour 1

  1. Récolte 200 ul de cellules sanguines emballés à partir d'un P. falciparum culture contenant 2-5% IE tardivement par centrifugation à 800 xg pendant 8 min à température ambiante.
  2. ....

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Résultats

La figure 1 illustre un organigramme des principales étapes et pendant la durée de la méthodologie FISH ARN.

Une série d'images représentatives de bien et mal conservés tachées expériences FISH ARNm en utilisant unique P. falciparum IE sont présentés dans la figure 2. Ce protozoaire intracellulaire a une petite (1-1.5 um de diamètre) dans le noyau qui est coloré en bleu au DAPI. Vingt-quatre heures après l'invasion érythrocytaire de P. f.......

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Discussion

Analyse FISH ARN, contrairement aux méthodes telles que Northern blot et RT-PCR, permet la discrimination des transcrits d'ARNm spécifiques au niveau de la cellule unique. Cela permet de faire la distinction entre les cellules transcriptionnellement actifs et inactifs, dans cet exemple, P. falciparum protozoaires parasites à l'intérieur des globules rouges humains. Ces cellules entières observations sont souvent nécessaires et peuvent percer importantes et nouvelles tendances de la transcription 1........

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d'intérêt déclaré.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Michael Alifrangis et Ulla Abildtrup pour le génotypage des parasites et Christina Holm pour l'assistance technique excellente. Ce travail a été financé par Howard Hughes Medical Institute (subvention 55.005.511), la Fondation Lundbeck (subvention R9-A840) et par la Fondation Niels Bohr.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Nom du réactif Entreprise Numéro de catalogue Commentaires
Acide acétique Sigma / Aldrich 338 826-100ml
Albumax médias: solution de RPMI Glutamine 1640 Lonza BE12-115F 500 ml de RPMI 1640
Une solution à 5 ml de glutamine
Albumax médias: Gentamicine sulfate Albumax solution Lonza BE02-012E 2,5 ml de gentamycine sulfate
50 ml de solution Albumax
Albumax solution: Hypoxanthine Sigma-Aldrich H9377 0,8 g Hypoxanthine
Albumax solution: AlbuMAX II Jenvitrogen 11021-037 200 g Albumax
Albumax solution: RPMI 1640 Lonza BE12-115F 4 litres du milieu RPMI 1640
Dissoudre avec aimant au max. 50 ° C. Filtrez stériliser et conserver à -20 ° C en aliquots.
Amberlite Sigma A5710-110G Résine de deionize formamide.
Anti-biotine conjugué à la peroxydase de chèvre pAb Calbiochem 203206
Anticorps anti-DIG Novus biologiques NB100-41330
Anti-fade réactif avec DAPI Invitrogen P36931 Les milieux de montage doit durcir pendant 24 heures avant de sceller complètement la diapositive.
Biotine ARN étiquetage Mix Roche 11685597910
Appareil photo numérique Numérique Nikon F11 de vue CC
Lamelles de Menzel-Glaser 631-1570
flacon de culture de 25 cm 2 de surface Nunclon Nunc 156340
DEPC Fluka / Sigma 32490-100ml 1 ml DEPC dans 1000 ml d'eau deinonized. Ajouter un barreau aimanté et remuer pendant 12 h. Autoclave pendant 30 min.
Appareil photo numérique Numérique Nikon F11 de vue CC
Protéines Dynabeads A Invitrogen 10002D
DynaMaq-15 Aimant Invitrogen 123-01D
Formamide bioultra 99% Fluka/ Sigma 47671-1l-F Formamide désionisée: 5 g de résine échangeuse d'ions par 100 ml de formamide. Mélanger 30 min. Filtrer sur papier Whatman.
. Gélatine 0 solution à 75%: gélatine Sigma-Aldrich G2500 3,75 gélatine g dans 500 ml de RPMI 1640. La chaleur à 56 ° C pour dissoudre. Stériliser par filtration alors que 56 ° C. Conserver à -20 ° C en aliquots.
. Gélatine 0 solution à 75%: RPMI 1640 Lonza BE12-115F 3,75 gélatine g dans 500 ml de RPMI 1640. La chaleur à 56 ° C pour dissoudre. Stériliser par filtration alors que 56 ° C. Conserver à -20 ° C en aliquots.
Solution Glutamine: L-glutamine Sigma-Aldrich G3126 14,6 g L-glutamine dans 500 ml de NaCl 0,9%. Dissoudre, filtre sterilize et stocker à -20 ° C en aliquots.
Solution Glutamine: HCl Sigma H1758 14,6 g L-glutamine dans 500 ml de NaCl 0,9%. Dissoudre, filtrer stériliser et conserver à -20 ° C en aliquots.
Solution d'hybridation: formamide Bio ultra 99% SSC 20x Fluka / Sigma 47671-1l-F Total 20 ml, garder congelé à -20 ° C en aliquots
10 ml de formamide désionisée
Solution d'hybridation: Concentré 50x Denhardt Sigma D2532 5ml 20xSSC
Solution d'hybridation: Levure tRNARoche blocage réactif Sigma R-6750 2 ml 50x Denhardt
250 ul de 20 mg par ml de levure ARNt
: ADN de sperme de saumon Fluka / Sigma 31149-106GF 0.4g Roche réactif de blocage
1 ml de 10 mg par ml d'ADN de sperme de saumon (Critique: saumon dénaturent spermDNA à 96 ° C pendant 5 min avant d'ajouter à la solution d'hybridation)
Hybridizer ThermoStar 100 HC4 Quantifoil Instruments GmbH 1004-0011 Peut être remplacé par un four d'hybridation et d'hybridation RNase chambres libres rembourrés avec de l'eau DEPC.
Immersion huile transparente aux UV fluorescence gratuit Sigma 10976-1EA
Microscope confocal immunofluorescence ou Nikon D-Eclipse TE2000C
Vernis à ongles Disponible dans n'importe quelle pharmacie
PBS 20x: NaCl
KCl
Na 2 HPO 4 x 2H 2 O
KH 2 PO 4 DEPC désionisée H 2 O
Ajuster le pH à 7,4
160 g
4 g
23 g
4 g
1 l
Paraformaldéhyde à 4% Fluka / Chemika 76240 4 g PFA dans 80 ml de PBS / DEPC. La chaleur à 65 ° C jusqu'à ce que le PFA dissout. Ajouter 20 ml de PBS, laisser la solution refroidir. Ajuster le pH à 7,4. Filtrer. Boutique en aliquotes à -20 ° C.
Paraformaldéhyde à 4% / acide acétique à 5% 950 paraformaldhyde ul + 50 ul d'acide acétique
Pepsine Sigma / Aldrich P7000
Conjugué à la peroxydase anti-biotine Calbiochem 203206
RBC-milieu de lavage: solution de RPMI Glutamine 1640 Lonza BE12-115F 500 ml de RPMI 1640 une solution à 5 ml de glutamine
RBC-milieu de lavage: le sulfate de gentamicine Lonza BE02-012E 2,5 ml de gentamycine sulfate
RNase Sigma / Aldrich Faire un 10 mg / ml de solution.
RNase tube de 1,5 ml Ambion AM12450
RNase Zap Ambion AM9780
Diapositives 11mm 4 puits Thermo Scientific MENZXER306W
SSC 20x: NaCl Sigma / Aldrich S9625 3 M de NaCl (175 g / l) 0,3 M citrate de Na 3 x H 2 O (88 g / l) Ajuster à pH 7,0 avec HCl 1M
SSC 20x: citrate de sodium dihydraté Sigma / aldrich W302600 3 M de NaCl (175 g / l) 0,3 M citrate de Na 3 x H 2 O (88 g / l) Ajuster à pH 7,0 avec HCl 1M
PESS 20x: NaCl Sigma / Aldrich S9625 175,3 g de NaCl
PESS 20x: NaH 2 PO 4 Sigma / Aldrich S0751 27,6 g de NaH 2 PO 4.
PESS 20x: 4 EDTA en poudre 9,4 g d'EDTA en poudre
Ajouter de l'eau DEPC, ajuster le pH 7,4. Autofendit pendant 20 min
TNB mémoire tampon: tampon TNT 10 ml du tampon TNT
TNB mémoire tampon: réactif de blocage 0,05 g de réactif de blocage
Pour dissoudre le réactif de blocage, chauffer la solution à 60 ° C pendant une heure sous agitation. Conserver à -20 ° C. (Dérivé de l'Perkin Elmer TSA-protocole).
TNT mémoire tampon: Tris / HCl Sigma T1503 1M Tris / HCl, pH 8,0
TNT mémoire tampon: NaCl Sigma Aldrich S9625 100 ml
Tampon TNT: Tween20 Sigma 93773 5 M NaCl 30 ml
1 ml DEPC dH 2 O869 Ml
Ajuster le pH à 7,5 à la température ambiante. (Dérivé de l'Perkin Elmer TSA-protocole).
TSA, plus Cyanine3 / fluorescéine système Perkin Elmer NEL753000IKT Lire le protocole de la TSA Plus System Palette de fluorescence avec soin avant de commencer l'expérience.
Tubes 14 ml stérile Almeco - CM Aps LAB 91016

Références

  1. Joergensen, L., Bengtsson, D. C., Bengtsson, A., Ronander, E., Berger, S. S., Turner, L., Dalgaard, M. B., Cham, G. K., Victor, M. E., Lavstsen, T., Theander, T. G., Arnot, D. E., Jensen, A. T. Surface co-expression of two different PfEMP1 antigens on single Plasmodium falciparum-infected erythrocytes facilitates binding to ICAM1 and PECAM1. PLoS Pathog. 2, 1001083(2010).
  2. Pinaud, R., M....

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Réimpressions et autorisations

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