| Nom du réactif | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
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| Acide acétique | Sigma / Aldrich | 338 826-100ml | |
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| Albumax médias: solution de RPMI Glutamine 1640 | Lonza | BE12-115F | 500 ml de RPMI 1640 Une solution à 5 ml de glutamine |
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| Albumax médias: Gentamicine sulfate Albumax solution | Lonza | BE02-012E | 2,5 ml de gentamycine sulfate 50 ml de solution Albumax |
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| Albumax solution: Hypoxanthine | Sigma-Aldrich | H9377 | 0,8 g Hypoxanthine |
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| Albumax solution: AlbuMAX II | Jenvitrogen | 11021-037 | 200 g Albumax |
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| Albumax solution: RPMI 1640 | Lonza | BE12-115F | 4 litres du milieu RPMI 1640 Dissoudre avec aimant au max. 50 ° C. Filtrez stériliser et conserver à -20 ° C en aliquots. |
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| Amberlite | Sigma | A5710-110G | Résine de deionize formamide. |
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| Anti-biotine conjugué à la peroxydase de chèvre pAb | Calbiochem | 203206 | |
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| Anticorps anti-DIG | Novus biologiques | NB100-41330 | |
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| Anti-fade réactif avec DAPI | Invitrogen | P36931 | Les milieux de montage doit durcir pendant 24 heures avant de sceller complètement la diapositive. |
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| Biotine ARN étiquetage Mix | Roche | 11685597910 | |
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| Appareil photo numérique | Numérique Nikon F11 de vue CC | | |
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| Lamelles de | Menzel-Glaser | 631-1570 | |
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| flacon de culture de 25 cm 2 de surface Nunclon | Nunc | 156340 | |
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| DEPC | Fluka / Sigma | 32490-100ml | 1 ml DEPC dans 1000 ml d'eau deinonized. Ajouter un barreau aimanté et remuer pendant 12 h. Autoclave pendant 30 min. |
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| Appareil photo numérique | Numérique Nikon F11 de vue CC | | |
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| Protéines Dynabeads A | Invitrogen | 10002D | |
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| DynaMaq-15 Aimant | Invitrogen | 123-01D | |
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| Formamide bioultra 99% | Fluka/ Sigma | 47671-1l-F | Formamide désionisée: 5 g de résine échangeuse d'ions par 100 ml de formamide. Mélanger 30 min. Filtrer sur papier Whatman. |
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| . Gélatine 0 solution à 75%: gélatine | Sigma-Aldrich | G2500 | 3,75 gélatine g dans 500 ml de RPMI 1640. La chaleur à 56 ° C pour dissoudre. Stériliser par filtration alors que 56 ° C. Conserver à -20 ° C en aliquots. |
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| . Gélatine 0 solution à 75%: RPMI 1640 | Lonza | BE12-115F | 3,75 gélatine g dans 500 ml de RPMI 1640. La chaleur à 56 ° C pour dissoudre. Stériliser par filtration alors que 56 ° C. Conserver à -20 ° C en aliquots. |
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| Solution Glutamine: L-glutamine | Sigma-Aldrich | G3126 | 14,6 g L-glutamine dans 500 ml de NaCl 0,9%. Dissoudre, filtre sterilize et stocker à -20 ° C en aliquots. |
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| Solution Glutamine: HCl | Sigma | H1758 | 14,6 g L-glutamine dans 500 ml de NaCl 0,9%. Dissoudre, filtrer stériliser et conserver à -20 ° C en aliquots. |
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| Solution d'hybridation: formamide Bio ultra 99% SSC 20x | Fluka / Sigma | 47671-1l-F | Total 20 ml, garder congelé à -20 ° C en aliquots 10 ml de formamide désionisée |
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| Solution d'hybridation: Concentré 50x Denhardt | Sigma | D2532 | 5ml 20xSSC |
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| Solution d'hybridation: Levure tRNARoche blocage réactif | Sigma | R-6750 | 2 ml 50x Denhardt 250 ul de 20 mg par ml de levure ARNt |
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| : ADN de sperme de saumon | Fluka / Sigma | 31149-106GF | 0.4g Roche réactif de blocage 1 ml de 10 mg par ml d'ADN de sperme de saumon (Critique: saumon dénaturent spermDNA à 96 ° C pendant 5 min avant d'ajouter à la solution d'hybridation) |
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| Hybridizer ThermoStar 100 HC4 | Quantifoil Instruments GmbH | 1004-0011 | Peut être remplacé par un four d'hybridation et d'hybridation RNase chambres libres rembourrés avec de l'eau DEPC. |
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| Immersion huile transparente aux UV fluorescence gratuit | Sigma | 10976-1EA | |
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| Microscope confocal immunofluorescence ou | Nikon D-Eclipse TE2000C | | |
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| Vernis à ongles | Disponible dans n'importe quelle pharmacie | | |
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PBS 20x: NaCl KCl Na 2 HPO 4 x 2H 2 O KH 2 PO 4 DEPC désionisée H 2 O | | | Ajuster le pH à 7,4 160 g 4 g 23 g 4 g 1 l |
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| Paraformaldéhyde à 4% | Fluka / Chemika | 76240 | 4 g PFA dans 80 ml de PBS / DEPC. La chaleur à 65 ° C jusqu'à ce que le PFA dissout. Ajouter 20 ml de PBS, laisser la solution refroidir. Ajuster le pH à 7,4. Filtrer. Boutique en aliquotes à -20 ° C. |
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| Paraformaldéhyde à 4% / acide acétique à 5% | | | 950 paraformaldhyde ul + 50 ul d'acide acétique |
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| Pepsine | Sigma / Aldrich | P7000 | |
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| Conjugué à la peroxydase anti-biotine | Calbiochem | 203206 | |
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| RBC-milieu de lavage: solution de RPMI Glutamine 1640 | Lonza | BE12-115F | 500 ml de RPMI 1640 une solution à 5 ml de glutamine |
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| RBC-milieu de lavage: le sulfate de gentamicine | Lonza | BE02-012E | 2,5 ml de gentamycine sulfate |
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| RNase | Sigma / Aldrich | | Faire un 10 mg / ml de solution. |
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| RNase tube de 1,5 ml | Ambion | AM12450 | |
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| RNase Zap | Ambion | AM9780 | |
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| Diapositives 11mm 4 puits | Thermo Scientific | MENZXER306W | |
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| SSC 20x: NaCl | Sigma / Aldrich | S9625 | 3 M de NaCl (175 g / l) 0,3 M citrate de Na 3 x H 2 O (88 g / l) Ajuster à pH 7,0 avec HCl 1M |
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| SSC 20x: citrate de sodium dihydraté | Sigma / aldrich | W302600 | 3 M de NaCl (175 g / l) 0,3 M citrate de Na 3 x H 2 O (88 g / l) Ajuster à pH 7,0 avec HCl 1M |
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| PESS 20x: NaCl | Sigma / Aldrich | S9625 | 175,3 g de NaCl |
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| PESS 20x: NaH 2 PO 4 | Sigma / Aldrich | S0751 | 27,6 g de NaH 2 PO 4. |
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| PESS 20x: 4 EDTA en poudre | | | 9,4 g d'EDTA en poudre Ajouter de l'eau DEPC, ajuster le pH 7,4. Autofendit pendant 20 min |
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| TNB mémoire tampon: tampon TNT | | | 10 ml du tampon TNT |
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| TNB mémoire tampon: réactif de blocage | | | 0,05 g de réactif de blocage Pour dissoudre le réactif de blocage, chauffer la solution à 60 ° C pendant une heure sous agitation. Conserver à -20 ° C. (Dérivé de l'Perkin Elmer TSA-protocole). |
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| TNT mémoire tampon: Tris / HCl | Sigma | T1503 | 1M Tris / HCl, pH 8,0 |
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| TNT mémoire tampon: NaCl | Sigma Aldrich | S9625 | 100 ml
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| Tampon TNT: Tween20 | Sigma | 93773 | 5 M NaCl 30 ml 1 ml DEPC dH 2 O869 Ml Ajuster le pH à 7,5 à la température ambiante. (Dérivé de l'Perkin Elmer TSA-protocole). |
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| TSA, plus Cyanine3 / fluorescéine système | Perkin Elmer | NEL753000IKT | Lire le protocole de la TSA Plus System Palette de fluorescence avec soin avant de commencer l'expérience. |
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| Tubes 14 ml stérile | Almeco - CM Aps LAB | 91016 | |
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