Nous présentons une technique pour l'étiquetage des neurones simples dans le système nerveux central (SNC) de Drosophila Embryons, ce qui permet l'analyse de la morphologie neuronale soit par lumière transmise ou microscopie confocale.
Article de méthode
Nous présentons une technique pour l'étiquetage des neurones simples dans le système nerveux central (SNC) de Drosophila Embryons, ce qui permet l'analyse de la morphologie neuronale soit par lumière transmise ou microscopie confocale.
Dans cet article, nous décrivons comment étiqueter individuellement les neurones dans le SNC embryonnaire de Drosophila melanogaster par injection juxtacellulaire de la membrane lipophile Dil marqueur fluorescent. Cette méthode permet la visualisation de la morphologie des cellules neuronales dans les moindres détails. Il est possible de marquer n'importe quelle cellule du système nerveux central: les corps cellulaires des neurones cibles sont visualisés sous une optique DIC ou par expression d'un marqueur fluorescent génétique comme la GFP. Après marquage, le DiI peut être transformée en une tache brune permanente par photoconversion pour permettre la visualisation de la morphologie des cellules avec de la lumière transmise et de l'optique DIC. Alternativement, les cellules Dil-marqués peuvent être observés directement par microscopie confocale, permettant génétiquement introduits protéines rapporteurs fluorescents à colocalised. Cette technique peut être utilisée dans n'importe quel animal, quelle que soit le génotype, ce qui permet d'analyser les phénotypes mutants à résolution cellule unique.
La connaissance de la morphologie neuronale au niveau des cellules individuelles est une condition essentielle pour la compréhension de la connectivité neuronale et la fonction du système nerveux central. Ainsi, dès les premiers jours de la neuroscience, les chercheurs ont cherché à développer des simples techniques de marquage de cellules (voir 7 pour un traitement historique de cette question). Les méthodes classiques comme la coloration de Golgi fournir une excellente résolution de la morphologie neuronale, mais ne sont pas adaptés si l'on cherche à identifier un type particulier de neurone d'une manière dirigée, que la coloration se produit de ....
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Nous avons utilisé deux variantes légèrement différentes de la méthode de marquage seul neurone dans nos laboratoires. Les différences portent sur la collecte d'embryons, dechorionisation, devitellinisation et les étapes de filetage embryons. Figure 1 donne un aperçu des étapes communs et divergents des variantes.
1. Préparation des micro-aiguilles pour dissection de l'embryon et Micropipettes pour injection Dye
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La figure 4 illustre les résultats typiques de la technique, que nous décrivons ici. Figure 4A montre un exemple de Dil interneurone unique rempli qui a été proprement photoconverted. Il démontre bien le niveau de détail de ces préparatifs offre. Lorsqu'elle est vue sous une optique DIC le contexte spatial de la cellule marquée dans le tissu environnant non marqué est visible, par exemple, la position du corps de la cellule à l'intérieur de l'écorce et de la project.......
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Un avantage majeur de la drosophile comme modèle de système est qu'il permet l'analyse du développement et de la fonction au niveau des cellules individuelles. Ceci est particulièrement utile en ce qui concerne le système nerveux, où la diversité des types de cellules est exceptionnellement élevé et la fonction et la morphologie des cellules voisines peut être totalement différente.
Procédé nous présentons ici permet le marquage des neurones individuels avec un colorant qui .......
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Les auteurs déclarent n'avoir aucun conflit d'intérêts financiers.
Ce travail a été soutenu par une subvention de la DFG avec l'heure GMT
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Nom de réactif / Matériel | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
| REACTIFS | |||
| DAB | Sigma-Aldrich | D-5905 | 2-3 mg / ml dans 100 mM Tris-HCl, pH 7,4 |
| Dil | Sondes Invitrogen / moléculaires | D-282 | 1 mg / ml dans de l'éthanol |
| Formaldéhyde | Merck Millipore | 7,4% dans du PBS | |
| Glycérol | Roth | 3783 | 70% dans du PBS |
| Heptane colle | Beiersdorf AG | Violoncelle 31-39-30 * | diluer env. 1 à 1 avec du n-heptane |
| PBS | 1x | ||
| TRIS | Roth | 4855 | |
| Vectashield | Vector Laboratories | H1000 | |
| ÉQUIPEMENT | |||
| Microscope confocal | Leica | TCS SP2 | de visualiser et de documenter les marquages en fluorescence |
| DC - unemplifier | Dragan Corporation | Cornerstone ION-100 | pour effectuer les marquages |
| Lamelles de | Menzel | BB018018A1 | 18 x 18 mm |
| Lamelles de | Menzel | BB024060A1 | 24 x 60 mm |
| Microscope à dissection | Leica | MZ8 | de préparer et de disect embryons |
| Plat capillaires | Hilgenberg | le diamètre extérieur de 1 mm, épaisseur 0,1 mm verre | |
| Injection capillaires | Science Products | 100 Go TF 8P | |
| R micromanipulateur | Leica | pour effectuer les marquages | |
| Modèle P-97 | Sutter Instruments | de tirer capillaires | |
| Diapositives Objets | Marienfeld supérieure | 1000000 | |
| Microscope scientifique | Zeiss | Axioskop 2 mot | pour voir les marquages après photoconversion |
| Microscope scientifique | Olympe | BX50 | pour effectuer les marquages |
| Caméra vidéo Sony MC3255 | Sony / AVT Corne | Sony MC3255 | pour enregistrer marquages après photoconversion |
Tableau 1.
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