Implants métalliques, notamment des implants en titane, sont largement utilisés dans des applications cliniques. La croissance tissulaire et l'intégration de ces implants dans les tissus sont des paramètres importants pour les résultats cliniques réussies. Afin d'améliorer l'intégration des tissus, des implants métalliques poreux sont en cours d'élaboration. La porosité ouverte de mousses métalliques est très avantageux, étant donné que les zones interstitielles peuvent être fonctionnalisés, sans compromettre les propriétés mécaniques de la structure entière. Nous décrivons ici les modifications à l'aide d'implants en titane poreux à base de microbilles de titane. En utilisant les propriétés physiques inhérentes telles que l'hydrophobie de titane, il est possible d'obtenir des gradients de pores hydrophobes à l'intérieur des implants métalliques à base de microbilles et en même temps, d'avoir une membrane basale imitateur, basée sur des polymères naturels hydrophiles. Gradients de pores 3D sont constitués par des polymères synthétiques tels que l'acide poly-L-lactique (PLLA) par la méthode de congélation-extraction. 2D nanofibrillar surles faces sont formées à l'aide de collagène / alginate suivie d'une étape de réticulation avec un agent de réticulation naturel (génipine). Ce film nanofibrillar a été construite par couche par couche (LBL) du procédé de dépôt des deux molécules de charge opposée, le collagène et l'alginate. Enfin, un implant où les différentes zones peuvent accueillir différents types de cellules, comme cela est nécessaire pour de nombreux tissus multicellulaires, peut être obtenue. Par ce moyen mouvement cellulaire dans des directions différentes en différents types de cellules peut être contrôlée. Un tel système est décrit dans le cas spécifique de la trachée régénération, mais il peut être modifié pour d'autres organes cibles. L'analyse de la migration cellulaire et les méthodes possibles pour créer différents gradients de pores sont élaborés. La prochaine étape dans l'analyse de ces implants est leur caractérisation après l'implantation. Cependant, l'analyse histologique des implants métalliques est un processus long et fastidieux, donc pour le suivi réaction de l'hôte à des implants métalliques in vivo une unelternative méthode basée sur le suivi de protéines sanguines CGA et différent est également décrite. Ces méthodes peuvent être utilisées pour le développement de la migration sur mesure vitro et des essais de colonisation dans et également être utilisés pour l'analyse des implants métalliques fonctionnalisés in vivo sans histologie.