Article de méthode

Anticorps coloration dans C. Elegans Utilisation de «gel-Cracking"

DOI :

10.3791/50664

14 octobre 2013

Dans cet article

Résumé

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"Freeze-fissuration," une méthode pour exposer les tissus internes du nématode C. elegans aux anticorps pour la localisation des protéines, est démontrée.

Résumé

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Pour colorer C. elegans avec des anticorps, la cuticule relativement imperméable doivent être contournés par des méthodes chimiques ou mécaniques. "Freeze-craquage" est une méthode utilisée pour tirer physiquement la cuticule de nématodes en comprimant les nématodes entre deux lames adhérentes, les congeler, et en tirant les diapositives en dehors. Cryo-craquage fournit un moyen simple et rapide pour accéder à des tissus, sans traitement chimique et peut être utilisé avec une variété de fixateurs. Toutefois, elle conduit à la perte d'un grand nombre de spécimens et la compression requise déforme mécaniquement l'échantillon. La pratique est nécessaire pour maximiser la récupération d'échantillons avec une bonne morphologie. Cryo-craquage peut être optimisée pour les conditions spécifiques de fixation, la récupération d'échantillons, ou faible coloration non-spécifique, mais pas pour tous les paramètres à la fois. Pour les anticorps qui requièrent des conditions de fixation très durs et tolèrent les traitements chimiques nécessaires pour perméabiliser chimiquement la cuticule, traitement de nématodes intactes en solution peut être préférée. Si l'anticorps nécessite une solution claire ou plus si les conditions optimales de fixation ne sont pas connus, de gel-craquage est un moyen très utile pour doser rapidement l'anticorps et peuvent donner des informations spécifiques de localisation subcellulaire et cellulaire de l'antigène d'intérêt.

Introduction

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Pour déterminer la localisation cellulaire et subcellulaire des protéines, les scientifiques ont toujours marqué les tissus avec des anticorps sélectionnés de reconnaître spécifiquement des protéines particulières 1. Dans certains organismes modèles tels que C. elegans, la coloration des anticorps a souvent été remplacé par des techniques génétiques moléculaires, qui donnent des résultats plus rapidement. Ceux-ci comprennent les organismes transformants avec des constructions, comprenant des fusions de gène entre le promoteur et les régions codantes du gène d'intérêt et la protéine fluorescente verte. Cependant, les techniques moléculaires son....

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Protocole

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NOTE: Plusieurs étapes du protocole sont présentés avec des options pour l'installation et la préparation en fonction des conditions spécifiques de l'expérience. Pour ces cas, des mesures alternatives sont présentées comme A, B, C, etc Le protocole de mesures alternatives est présenté dans la figure 1.

Une. Préparation des lames Polylysine filmés

Trois types de lames différentes peuvent être utilisées, selon le compromis souhaité entre la facilité de préparation, l'adhérence relative, et la liaison non spécifique de l'anticorps. Les détails des variantes de préparation d....

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Résultats

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Lorsque les vers sont bien compressés, fissuré, et légèrement fixés, la quasi-totalité ver peut être accessible à la coloration des anticorps (voir la figure 2). La localisation des noyaux, comme indiqué par la coloration DAPI indique quelles parties de la vis sans fin sont intacts Lorsque les vers sont soumis à un fixateur plus dur, tel que le formaldehyde, la morphologie de la vis sans fin peut être déformée (comme montré par l'apparition anormalement ondulé de l' muscles dans les figures 3A-D.......

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Discussion

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Le protocole de congélation-craquage est l'un de plusieurs procédés pour la coloration des anticorps pour C. elegans. C'est un moyen relativement simple pour colorer les vers, mais ne nécessite réactifs spécifiques et pratique pour des résultats optimaux. Les étapes critiques (décrites dans la figure 1): 1) la préparation des lames (voir les étapes 1 et 2) la compression manuelle des nématodes (voir les étapes 2 et 3) la fixation rapide (voir l'étape 3). Tout d'abord, afin de ma.......

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Déclarations de divulgation

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L'auteur déclare qu'elle n'a pas d'intérêts financiers concurrents.

Remerciements

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Le financement a été fourni par la NSF CCLI # 0633618 et Université de l'Ohio. Certaines souches ont été fournies par le Centre de Génétique Caenorhabditis. étudiants diplômés Reetobrata Basu apparaît dans la vidéo.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
lame de poly-L-lysine (marque ESCO)Fisher12-545-78Les lames de marque Sigma conviennent également au
bromhydrate de poly-L-lysineSigmaP1524IMPORTANT : Marque et poids moléculaire élevé des lames critiques en polylysine
à bord unique givréFisher48312-002D’autres marques conviennent à
l’azoture de sodiumSigmaS2002-25GTOXIQUE, portez des gants et un masque tout en pesant la poudre pour faire 10 % de stock. Porter des gants lors de la tuyauterie
pot de coloration de la solution mère coplinVWR47751-792D’autres marques conviennent
Enveloppe à 5 lamesMicroscopie électronique Science71549-01L’une des nombreuses marques différentes de support de petites lames, adapté à la coloration
du paraformaldéhydeVWRMK262159IMPORTANT : Les solutions de formol régulières (37 % de formaldéhyde) ne conviennent PAS. Soit 1) Dissoudre la paraformaldéhyde crysatlaline dans un tampon phosphate et stocker dans de petites aliquotes congelées. Ou 2) acheter du paraformaldéhyde de qualité microscopie électronique en aliquotes. TOXIQUE -porter des gants ; Jetez l’excédent dans l’évier avec de l’eau.
Solution de glutaraldéhyde, 25 % dans l’eauSigmaG 5882IMPORTANT : acheter du glutaraldéhyde de qualité microscopie électronique en ampoules ; TOXIQUE -porter des gants ; Jetez l’excédent dans l’évier avec de l’eau.
Triton X-100VWREM-9410D’autres marques conviennent
Sérum de bovin AlbumineFisherICN820451D’autres marques conviennent
Sérum d’âne, lyophiliséJackson Immunoresearch017-000-121D’autres marques conviennent
Cy3 Donkey anti-Souris IgG multi-marquageJackson Immunoresearch715-165-150Cette société est recommandée pour ses anticorps multi-marqueurs de haute qualité (appauvris en affinité). Sélectionnez le colorant et l’antigène appropriés (animal utilisé pour produire l’anticorps primaire).
n-propyl gallateFisherICN10274750D’autres marques conviennent DAPI
, 4',6'-diamidino-2-phénylindoledichlorhydrate SigmaD 9542TOXIQUE. Portez des gants et distribuez en petites aliquotes et feeze pour minimiser l’exposition
Whatman #1 Filtres de 15 cm de diamètreFisher09805G
Coverslip #1 1/2 rectangle 24 x 60 mmVWR48393-252#1 1/2 l’épaisseur est optiquement la meilleure
Chemise de lames de microscopeVWR48429-092D’autres marques conviennent
du

Références

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  1. Harlow, E., Lane, D. Antibodies: A Laboratory Manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York City, New York. (1988).
  2. Mello, C., Fire, A. DNA Transformation. Methods Cell Biol. 48, 451-482 (1995).
  3. Boulin, T., Etchberger, J. F., Hobert, O. Reporter gene fusions.

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Mots-clés

Compression sur lamefixation la glace s chem thanol ac tonemicroscopie fluorescencepr paration de versperm abilisation tissulairer cup ration des sp cimens

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