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Déclaration d'éthique
Le protocole de manipulation des animaux a été approuvé par notre Comité institutionnel d'éthique animale "Conseil Scientifique du Centre de Formation et de Recherche Expérimentale Médico-Chirurgical» (CFREMC, permis de projet 10-300122013 Eric Ghigo) de l'Université d'Aix-Marseille en accord avec les règles de Décret N ° 87-848 du 19/10/1987. Les expériences ont été effectuées à la Faculté de Médecine de la Timone (numéro de permis d'expérimentation 13,385 à Eric Ghigo).
Une. Matériel et Culture Préparation médias
- Stériliser deux pinces, deux ciseaux, deux lames chirurgicales, un mortier et un pilon.
- Obtenir du DMEM complet contenant 10% de sérum de veau foetal (FCS), 2 mM de glutamine, 100 U / ml de pénicilline et 100 pg / ml de streptomycine.
- Diluer 10x PBS dans de l'eau distillée stérile pour obtenir 1x PBS.
- Obtenir glacée 1x PBS, DMEM complet glacée, wa DMEM completrmé à 37 ° C.
2. Préparation de L929 surnageants cellulaires
- Croître jusqu'à confluence des cellules L929 (vingt 175 cm2 dans du DMEM complet) à 37 ° C, 5% CO 2.
Remarque: les colonies de granulocytes-macrophages facteur de stimulation (GM-CSF) est nécessaire pour induire la différenciation des cellules hématopoïétiques dans les macrophages 12. L929 produisent GM-CSF.
- A confluence, remplacer le support de culture avec du DMEM complet frais. Transférer les flacons à 32 ° C, 5% CO 2 pendant 10 jours.
- Recueillir, piscine et centrifuger les surnageants à 750 g pendant 10 min. Jeter culots cellulaires.
- surnageants de magasins en tubes de 15 ml et conserver à -20 ° C.
3. Dérivées de moelle osseuse macrophages (BMDM) Préparation
- Sacrifier une souris par dislocation cervicale.
- Utiliser des lames chirurgicales stériles pendant toute l'expérience. Désinfecter la peau avec 70% alcohol. Faire une incision au sommet de chaque patte arrière et tirez la peau vers le bas vers le pied pour exposer le muscle.
- Coupez les pattes de derrière, enlever la peau avec des ciseaux stériles et des pinces stériles. Placer les jambes à l'intérieur d'une boîte de Pétri stérile (35/10 mm) contenant stérile, refroidi à la glace 1x PBS (5 ml).
- Retirer la chair et les muscles qui sont adhère à l'os avec des ciseaux et des pinces stériles.
- Transférer les os dans un nouveau plat, Petri stérile (35/10 mm) contenant de la glace-froid, stérile 1x PBS (5 ml). Laver les os deux fois avec 5 ml refroidi à la glace, 1x PBS stérile.
- Transférer l'os dans un mortier stérile contenant 5 ml refroidi à la glace, 1x PBS stérile.
- Couper le tibia du fémur à l'articulation avec des ciseaux stériles. Briser les os délicatement dans un mortier stérile contenant 5 ml de glace-froid, stérile 1x PBS aide d'un pilon.
- Recueillir le surnageant dans 15 ml tubes glacés. Répétez cette étape 3x.
- Filtrer à travers une cellule de Nylon stra 70 umINER pour éliminer les fragments solides. Centrifuger le filtrat à 450 xg pendant 10 min à 4 ° C.
- Jeter doucement le surnageant. Dissocier le culot dans 10 ml de tampon de lyse des globules rouges pendant 30 s. Ajouter 20 ml refroidi à la glace, du DMEM complet.
Remarque: Le but de cette étape est d'éliminer les contaminer les globules rouges, ainsi, cette étape doit être effectuée en 2 min afin d'éviter l'altération des cellules hématopoïétiques par le tampon de lyse des globules rouges du sang.
- Centrifuger à 450 g pendant 10 min à 4 ° C. Jeter doucement le surnageant. Dissocier le culot dans 20 ml de DMEM complet qui a été chauffé à 37 ° C.
- Transférer les cellules dissociées dans deux boîtes de Pétri (100/20 mm). Incuber pendant 4 heures à 37 ° C.
- Collecter les surnageants dans des tubes de 50 ml à la température ambiante. Jeter les plats qui contiennent les macrophages résidents.
Remarque: L'objectif de cette étape est d'éliminer la Marro osseuse résidentw macrophages par leur aptitude à adhérer à la culture traitée plastique. Ces macrophages résidents peuvent être utilisés dans d'autres expériences.
- Centrifuger les surnageants recueillis à 450 xg pendant 10 min à 4 ° C. Jeter le surnageant.
- Dissocier doucement le culot dans 10 ml de DMEM complet contenant 15% L929 surnageant cellulaire. Filtrer les cellules à travers un tamis cellulaire en nylon de 40 pm.
- Récupérer le filtrat. Ajouter le filtrat recueilli (10 ml) à 140 ml de DMEM complet qui a été supplémenté avec 15% de cellules L929 médias.
- Distribuer 10 ml de la suspension de cellules par boîte de Pétri (15 boîtes de Pétri, 100/20 mm). Incuber les cellules à 37 ° C, 5% CO 2.
- Cultiver des cellules pendant 3 jours
- Ajouter 10 ml de DMEM complet qui a été complété par 15% L929. Incuber les cellules pendant 4 jours supplémentaires.
Remarque: Surveiller la croissance des cellules périodiquement avec un microscope inversé (étapes 3.14 à 3.16). Macrophages adhérents serontobservé après 3 jours de culture.
4. BMDMs de récolte
- Retirer le surnageant. Laver BMDMs 2 fois avec du DMEM complet
- Ajouter 5 ml de DMEM complet qui a été chauffé à 37 ° C. Détachez BMDMs en grattant doucement avec une spatule en caoutchouc.
- Recueillir BMDMs en tubes de 50 ml et centrifuger à 450 g pendant 10 min. Dissocier doucement culots de cellules dans 20 ml de DMEM complet.
- Comptez BMDMs en présence de bleu trypan (pas de mortalité de plus de 10% doit être observé).
Remarque: En règle générale, d'environ 6 à 7,5 x 10 7 macrophages sont obtenus à partir de 15 boites de Pétri (100/20 mm) des macrophages. Il ya environ 4-5 x 10 6 macrophages / boîte de Pétri (100/20 mm).
- Préparer BMDMs comme requis pour l'expérience. Après 16 heures dans un milieu complet à 37 ° C, 5% CO 2, les macrophages de nouveau adhérer au support.
5. Stockage BMDMs
- Recueillir BMDMs isolés (étape 4.3). Centrifuger à 450 g pendant 10 min. Remarque: BMDMs peuvent être congelées dans l'azote liquide.
- les culots de cellules de remettre en suspension dans des milieux de congélation consistant en 10% de DMSO et 90% de FCS à une concentration finale de 4 x 10 6 cellules / ml et pipette 1 ml dans chaque ampoule.
- Geler les cellules à une vitesse de refroidissement de 1 ° C / min. Après 24 h, le transfert de l'ampoule dans un récipient d'azote liquide pour un stockage à long terme.