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Article de méthode

Criblage à haut débit pour à large spectre inhibiteurs chimiques de l'ARN virus

13.6K vues

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DOI :

10.3791/51222

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5 mai 2014

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Dans cet article

Résumé

Les essais in vitro pour mesurer la réplication du virus a été grandement améliorée par la mise au point de virus à ARN recombinants exprimant la luciférase ou d'autres enzymes capables de bioluminescence. Ici, nous détaillons un pipeline de criblage à haut débit qui combine ces souches recombinantes de la rougeole et les virus de chikungunya à isoler antiviraux à large spectre de bibliothèques chimiques.

Résumé

virus à ARN sont responsables de maladies humaines majeures telles que la grippe, la bronchite, la dengue, l'hépatite C ou la rougeole. Ils représentent aussi une menace émergente en raison de l'augmentation des échanges à travers le monde et les populations humaines pénétrant écosystèmes de plus en plus naturelles. Un bon exemple d'une telle situation émergente est épidémies de virus du chikungunya de 2005-2006 dans l'océan Indien. Les progrès récents dans notre compréhension des voies cellulaires contrôlant la réplication virale suggèrent que des composés ciblant les fonctions de la cellule hôte, plutôt que le virus lui-même, pourraient inhiber un large panel de virus à ARN. Certains composés antiviraux à large spectre ont été identifiés avec accueil tests et ciblées. Toutefois, la mesure de l'inhibition de la réplication virale dans des cultures de cellules en utilisant la réduction de l'effet cytopathogène comme une visualisation représente encore une stratégie de dépistage primordiale. Ces écrans fonctionnels ont été grandement améliorées par le développement des virus recombinants exprimant journaliste enzymes capable de bioluminescence tel que la luciférase. Dans le présent rapport, nous détaillons un pipeline de criblage à haut débit, qui combine recombinant de la rougeole et les virus de chikungunya avec des tests de viabilité cellulaire, pour identifier des composés avec un profil antivirale à large spectre.

Introduction

virus à ARN sont responsables d'une grande variété d'infections humaines, et avoir un impact énorme sur les populations à travers le monde à la fois en termes de santé publique et de coût économique. Vaccins efficaces ont été mis au point contre plusieurs virus à ARN humain, et sont largement utilisés comme traitements prophylactiques. Cependant, il ya encore un manque crucial de médicaments thérapeutiques contre les infections de virus à ARN. En effet, les vaccins efficaces ne sont pas disponibles par rapport aux principales agents pathogènes humains tels que le virus de la dengue, virus de l'hépatite C ou le virus respiratoire syncytial humain (hRSV). E....

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Protocole

1. Préparation de 96 puits fille plaques avec les composés

  1. Déplacer plaques mères à 96 puits contenant 10 mM de solutions de composés chimiques dans le DMSO à partir de -20 ° C à la température ambiante. Diluer composés 5x dans le DMSO pour obtenir des plaques de dilution 96 puits intermédiaires à 2 mM. La dilution est réalisée par pipetage de 5 ul dans 20 ul de DMSO et de mélange.
  2. 1 ul de plaques de dilution dans les puits sec de blanc, de culture de tissu à code à barres des plaques 96 puits. Ce premier ensemble de plaques-filles (D1) seront utilisées pour évaluer la toxicité des composés à une concentration finale de 20 uM. Magasin fille plaqu....

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Résultats

Ce pipeline de dépistage repose d'abord sur la sélection de composés qui inhibent la réplication MV et ne présentent pas de toxicité cellulaire significative (figure 1, l'écran principal). Il tire parti des dosages à base de luciférase pour déterminer la toxicité cellulaire et l'inhibition de la réplication virale. Toutes les étapes de pipetage et d'acquisition des données peut être effectué dans un cadre de haut-débit avec une plate-forme robotique.

La toxic.......

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Discussion

Le pipeline de criblage décrit ici vise à sélectionner des composés avec un profil adapté comme inhibiteurs à large spectre de virus à ARN. Quand une bibliothèque de 10 000 composés a été criblée avec ce protocole et les critères de filtrage ci-dessus ont été appliquées, à savoir l'inhibition de la réplication MV supérieur à 75%, 40 composés (0,4%) a reçu positif. En outre, environ la moitié d'entre eux ont montré une toxicité sur dans le test de la viabilité en fonction de la luciférase, et ont été pri.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.

Remerciements

Nous remercions le Dr Yves L. Janin pour ses commentaires et suggestions fructueuses. Nous tenons à remercier HH Gad pour CHIK / Ren et C. Combredet pour son soutien technique. Ce travail a été soutenu par l'Institut Pasteur, le Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), l'Institut National de la Santé Et de la Recherche Médicale (INSERM), l'Institut Carnot - Pasteur Maladies Infectieuses (Programme STING à POV et HM- L), l'Agence Nationale pour la Recherche (ANR-DGITRN, Programme STING 2.0 pour POV), et le "Conseil Régional d'Ile-de-France" (projet de bibliothèque chimique, les subventions n ° 06-222 je / R et I 09-1739 / R pour HM-L.).....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plateforme EVO FreedomPlateforme robotiquePolycarbonate
96 puits de culture cellulaire en polystyrène, blancGreiner Bio One655083
CellTiter-Glo Essai de viabilité cellulaire luminescentePromegaG7570Essai de viabilité basé sur la luciférase
Système d’essai de luciférase Bright-Glo PromegaE2610Réactif contenant de la luciférase de luciférase substrat
Système d’essai de luciférase Renilla-GloPromegaE2710Réactif contenant un substrat de Renilla luciférase
Britelite plus Gene Reporter Système d’essaiPerkin-Elmer6016761Réactif contenant un substrat de luciférase de luciole. Peut être utilisé comme alternative au réactif Brigh-Glo pour déterminer l’activité de la luciférase.

Références

  1. De Clercq, E. Antiviral drugs in current clinical use. J Clin Virol. 30, 115-133 (2004).
  2. Debing, Y., Jochmans, D., Neyts, J. Intervention strategies for emerging viruses: use of antivirals. Curr Opin Virol. , (2013).
  3. Leyssen, P., De Clercq, E., Neyts, J.

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Réimpressions et autorisations

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