Article de méthode

La combinaison unique molécule manipulation et d'imagerie pour l'étude des interactions protéine-ADN

DOI :

10.3791/51446

27 août 2014

Dans cet article

Résumé

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Nous décrivons ici l'instrumentation et des méthodes pour la détection de molécules de protéine unique marqués par fluorescence qui interagissent avec une molécule d'ADN unique suspendu entre deux microsphères optiquement piégés.

Résumé

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L’article décrit la combinaison de pinces optiques et de détection de fluorescence de molécules uniques pour l’étude de l’interaction protéine-ADN. La méthode offre la possibilité d’étudier les interactions se produisant en solution (évitant ainsi les problèmes dus aux surfaces proches comme dans d’autres méthodes à molécule unique), de contrôler l’extension de l’ADN et de suivre la dynamique des interactions en fonction des paramètres mécaniques et de la séquence d’ADN. Les méthodes permettant d’établir avec succès le piégeage optique et la localisation nanométrique de molécules uniques sont illustrées. Nous illustrons les conditions expérimentales permettant l’étude de l’interaction du répresseur de lactose (lacI), marqué avec Atto532, avec une molécule d’ADN contenant des séquences cibles spécifiques (opérateurs) pour la liaison de Laci. La méthode permet l’observation d’interactions spécifiques au niveau des opérateurs, ainsi que la diffusion unidimensionnelle de la protéine pendant le processus de recherche de cibles. La méthode est largement applicable à l’étude des interactions protéine-ADN mais aussi aux moteurs moléculaires, où le contrôle de la tension appliquée au polymère de piste partenaire (par exemple l’actine ou les microtubules) est souhaitable.

Introduction

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Molécule unique (SM) techniques ont considérablement développé au cours des trente dernières années pour répondre à la nécessité de surmonter certaines des limites de mesures de la solution, en vrac traditionnels 1-3. La manipulation de molécules biologiques simples a créé la possibilité de mesurer les propriétés mécaniques des biopolymères 4 et de contrôler les paramètres mécaniques de protéine-protéine 5 et interactions protéine-ADN 6,7. SM détection de fluorescence, d'autre part, représente un outil très polyvalent pour l'étude de l'activité de la protéine in vitro et in vivo, ce qui conduit....

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Protocole

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1. optiques pincettes installation avec nanomètre stabilité

Le dispositif expérimental doit fournir deux pinces optiques à pointer la stabilité au niveau et l'intensité nanomètre fluctuations du laser de piégeage en dessous de 1%. La combinaison de ces conditions sera d'assurer la stabilité du nanomètre de l'haltère sous tension typique (1 pN - quelques dizaines de PN), la rigidité de piège (0,1 pN / nm) et la bande passante de mesure (taux d'acquisition d'image 20 sec -1). Un schéma du dispositif expérimental est représenté sur la figure 1.

  1. Conception optique des pincettes et la ....

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Résultats

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Dans une expérience réussie, une (ou plusieurs) des protéines marquées subissent liaison / déliaison diffusion et / ou monodimensionnelle long de la molécule d'ADN (figure 3A). La localisation des protéines le long de la molécule d'ADN permet la quantification de paramètres cinétiques en fonction de la séquence d'ADN. Lorsque les conditions de tampon provoquant la diffusion 1D sont appliqués, il est possible de suivre des trajectoires de protéines, et de déterminer, par exemple, le coefficient de diffus.......

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Discussion

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Dans la dernière décennie, les techniques de manipulation et d'imagerie de molécules simples ont vu de grands progrès en termes de résolution spatiale et temporelle. La combinaison des techniques de manipulation et d'imagerie est à la base de puissants outils qui permettent maintenant le contrôle de l'état mécanique d'un polymère biologique unique, tels que ADN, ARN ou du cytosquelette des filaments, et la localisation simultanée de protéines individuelles en interaction avec le même polymère . Contrôle .......

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Déclarations de divulgation

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

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Nous remercions Gijs Wuite, Erwin JG Peterman, et Peter Gross pour l'aide à la microfluidique et Alessia Tempestini de l'aide pour la préparation des échantillons. Cette recherche a été financée par le septième programme-cadre de l'Union européenne (7e PC / 2007-2013) sous convention de subvention n ° 284464 et par le ministère italien de l'éducation, Université et recherche FIRB 2011 RBAP11X42L006, Futuro dans Ricerca 2013 RBFR13V4M2, et dans le cadre de la NANOMAX projet phare.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Isolateurs élastomèresNewportNewdampChoisissez l’élastomère Newdamp approprié en fonction du poids du microscope et des fréquences de résonance
Isolateur optiqueOptique pour la rechercheLaser IO-3-YAG-VHP
Nd :YAG, longueur d’onde de 1 064 nmSpectra-PhysicsMillennia IR
Déflecteurs acousto-optiques (AOD)A& A optoélectroniqueDTS-XY 250
Direct Digital SynthétiseursAnalog Devices
Détecteur de quadrants photodiodesOSI optoélectroniqueSPOT-15-YAG
DIO et FPGANational InstrumentsNI-PCI-7830R
Lampe halogèneSchottKL 1500
LCD CondenseurOlympusU-AAC 1.4NA Aplanat Apchromat
ObjectifNikonCFI Plan Apochromat 60x 1.2NA immersion
532 nm laserCoherentSapphire
CCD 200X et 2000XHamamatsu  ;XC-ST70 CE
CCD multiplié par électronsHamamatsu  ;C9100-13
Platine piézoélectrique avec précision nmPhysik InstrumenteP-527.2CL  ;
Filtre d’émissionChroma Technologies600/100m
Billes de silice (1,54 mm)Bangs LaboratoriesSS04N/5303
Albumine de sérum bovin (BSA)Sigma AldrichB4287
Acétate de pentyle  ;Sigma Aldrich46022Liquide et vapeur inflammables (n° 1272/2008)
NitrocelluloseSigma AldrichN8267-5EASolide inflammable  ; (n° 1272/2008)
Bloc chauffantMPM Instruments SrlM502-HBDavec 2 blocs amovibles ; préchauffé à 120 ° ; C
NanoPort assembleUpchurch Scientific Inc.N-333
Tube en polyétheréthercétone  ;Upchurch Scientific Inc.1535
Support métallique fait maison pour le montage du réservoir de pression de la chambre d’écoulement en plexiglass
Seringues à embout verrouillable Luer 2,5 mlTerumoSS 02LZ1
Vannes d’arrêt  ;Upchurch Scientific, Inc.P-732
Raccords sans bride  ;Upchurch Scientific, Inc.LT-111
Tube d’éthylène-propylène fluoré  ;Upchurch Scientific, Inc.1549
Deux électrovannes commandées par ordinateurClippard, Cincinnati, USAET-2-H-M5
Transducteur de pressionDruck LTDPTX 1400
biotine-14-dCTP  ;Life Technologies19518-018
Désoxynucléotidyltransférase terminale (TdT)ThermoscientificEP0161
ATTO532 maleimideSigma Aldrich68499
N,N-diméthylformamide (DMF)  ;Sigma Aldrich227056Liquide combustible, nocif par absorption cutanée. Irritant, tératogène. H226 ; H303 ; H312 ; H316 ; H319 ; H331 ; H360 ; P201 ; P261 (traduction libre) P280 ; P305 ; P. 351 ; P. 338 ; P311
Chlorhydrate de tris-(2-carboxyéthyl)phosphine (TCEP)  ;Sigma AldrichC4706
L-Glutathion réduit (GSH)Sigma AldrichG4251Toxicité aiguë, orale (catégorie 5), H303
Amicon Ultra-15, Membrane PLQK Ultracel-PL, 10  ; Concentrateurs de centrifugation de coupure kDaMerck MilliporeUFC901024
billes de polystyrène recouvertes de streptavidine 1.87 µ ; mSpherotech, Inc.SVP-15-5
dans l’eau

Références

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  1. Monico, C., Capitanio, M., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S. Optical Methods to Study Protein-DNA Interactions in Vitro and in Living Cells at the Single-Molecule Level. International journal of molecular sciences. 14, 3961-3992 (2013).
  2. Tinoco, I., Gonzalez, R. L.

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Mots-clés

Pinces optiquesfluorescence de mol cule uniqueextension d ADN sous forcer presseur du lactoseassemblage de cellule fluxlocalisation nanom triquedynamique de recherche de ciblecontr le m caniquemicroscopie de fluorescence

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