Une méthode pour générer pulmonaire Neutrophilie Utilisation Aerosolized lipopolysaccharide

Résumé

Nous décrivons une méthode pour induire une inflammation pulmonaire neutrophile par défi pour lipopolysaccharide aérosol par nébulisation, pour modéliser une lésion pulmonaire aiguë. En outre, des techniques chirurgicales de base pour l'isolement du poumon, l'intubation endotrachéale et lavage broncho-alvéolaire sont également décrits.

Résumé

Lésion pulmonaire aiguë (ALI) est une maladie grave caractérisée par neutrophilie alvéolaire, avec des options de traitement limitées et une mortalité élevée. Des modèles expérimentaux de ALI sont clé dans l'amélioration de notre compréhension de la pathogenèse de la maladie. Le lipopolysaccharide (LPS) provenant de bactéries à gram positif induit une inflammation neutrophile dans les voies respiratoires et du parenchyme pulmonaire de la souris. Délivrance pulmonaire efficace des composés tels que le LPS est toutefois difficile à réaliser. Dans l'approche décrite ici, l'administration pulmonaire chez la souris est réalisé par défi pour aérosol Pseudomonas aeruginosa LPS. LPS a été dissous en aérosol par un nébuliseur relié à air comprimé. Les souris ont été exposées à un flux continu d'aérosol de LPS dans une boîte en plexiglas pendant 10 minutes, puis 2 min après le conditionnement aérosol a été abandonnée. L'intubation endotrachéale et lavage broncho-alvéolaire subséquente, suivi par une perfusion de formol a été prochain effectuées, ce qui permet la caractérisation de la p stérileulmonary inflammation. LPS en aérosol génère une inflammation pulmonaire alvéolaire caractérisé par neutrophilie, détecté dans le lavage broncho-alvéolaire et par évaluation histologique. Cette technique peut être mis en place à un faible coût avec quelques appareils, et exige une formation et une expertise minimale. Le système d'exposition peut donc être effectuée systématiquement dans tout laboratoire, avec le potentiel d'améliorer notre compréhension de la pathologie pulmonaire.

Introduction

Le lipopolysaccharide (LPS) est un composant de la paroi cellulaire de bactéries à Gram négatif ^1. Défi au LPS est un modèle bien documenté de lésion pulmonaire aiguë, un syndrome caractérisé par une inflammation neutrophile aiguë et un oedème ^2. En outre, neutrophilie pulmonaire est également une caractéristique de la maladie pulmonaire obstructive chronique (MPOC) ^3, et le défi LPS chez l'homme a été utilisé pour modéliser exacerbations de la MPOC ^4. Ainsi, les modèles expérimentaux d'exposition LPS sont des outils pertinents et utiles pour comprendre la pathologie humaine cliniquement.

L'objectif de l'administration pulmonaire de LPS aérosol décrits ici est de générer une réponse inflammatoire neutrophile dans la conduite et les voies respiratoires, sans atteinte systémique. Plusieurs techniques de LPS ont été décrits précédemment. L'injection intra-veineuse de LPS est la voie d'administration la plus couramment utilisée. Bien que cette technique est facilement accessible, til dommages primaires est à l'endothélium, la destruction secondaire de l'épithélium pulmonaire après la migration des neutrophiles dans les poumons. L'administration intra-veineuse provoque également une inflammation systémique ^deux, ce qui peut compliquer le tableau clinique chez des modèles animaux. L'inflammation systémique est en revanche pas observé avec l'administration intra-trachéale. Cette technique, cependant, est beaucoup de travail et nécessite anesthésiques ainsi que la formation considérable ^{5, 6.} En outre, le dépôt pulmonaire par cette voie d'administration dépend de la respiration ^7. Ainsi, le dépôt pulmonaire est affectée par la profondeur de l'anesthésie nécessaires pour l'administration intra trachéale et le dépôt dans les voies aériennes variables peuvent être observées. En revanche, l'administration pulmonaire avec du LPS en aérosol nécessite une formation minimale, et peut facilement être réalisée sur un grand nombre d'animaux avec peu ou pas de variation entre les individus ^{5, 8.}Une étude récente confirme que l'administration par aérosol est supérieure à la voie intra-trachéale à l'égard de dépôt, et que des doses plus pertinentes de LPS induit une inflammation neutrophile ⁸ avec ce modèle.

Des études antérieures ont démontré que défi pour aérosol Pseudomonas aeruginosa LPS génère une réponse inflammatoire marquée dans la lumière des voies respiratoires et du parenchyme pulmonaire, y compris les espaces alvéolaires ^{9, 10.} L'inflammation est caractérisée par une prédominance de neutrophiles et la présence d'un œdème pulmonaire, et peut ainsi être utilisée pour traiter pathogenèse de la lésion pulmonaire aiguë et obtenir en outre la connaissance des mécanismes qui contribuent à la pathologie de la maladie.

Protocole

Les études chez l'animal ont été approuvés par le comité d'éthique de bien-être animal du Nord de Stockholm. Les procédures expérimentales ont été effectuées en conformité avec la législation suédoise.

1. Génération d'un aérosol LPS

1. Dissoudre 0,5 g purifiée P. aeruginosa LPS dans 50 ml de solution saline stérile avec agitation douce et vérifier dissolution. Diluer 1 ml de LPS en solution dans 9 ml de solution saline stérile, à une concentration finale de 1 mg / ml. Protéger de la lumière avec une feuille d'aluminium et conserver à -20 ° C.
2. Décongeler LPS solubilisées dans l'obscurité à la température ambiante et bien mélanger immédiatement avant utilisation.
3. Dans un ventilé niveau II Biohazard capot, insérer une entrée rouge dans un nébuliseur, et connectez le nébuliseur à l'air ambiant sous pression via la tubulure fournie par le (régime d'examen présentant les dispositifs expérimentaux dans la figure 1) du fabricant.
   ATTENTION: l'équipement de protection individuelle approprié, y compris une demi-pièce faciale respirat réutilisableou de filtres à particules, lunettes, gants et vêtements de protection doit être utilisé au cours de l'exposition.

Figure 1:. Présentation schématique des dispositifs expérimentaux utilisés pour générer un aérosol de l'entrée du nébuliseur est relié à une alimentation en air. La sortie du nébuliseur est relié à un premier compteur de débit par l'intermédiaire d'un tube de 15,9 mm et un filtre à air, et l'alimentation en air est ajusté à 5,0 L / m à une pression de 2 kbar. La sortie est à côté connecté à une boîte en plexiglas équipée avec des couvercles amovibles et 5 trous de mm pour éviter l'accumulation de pression.

4. Raccorder la sortie du nébuliseur pour un débitmètre de masse par l'intermédiaire d'un filtre à air. Connectez le débitmètre massique à une alimentation électrique.
5. Réglez l'alimentation en air à 5 L / min, avec une pression en restant à 1,0-2,0 bar.
6. Retirez le débitmètre massique etdébrancher l'alimentation en air.
7. Raccorder la sortie du nébuliseur pour un tube de 15,9 mm, ce qui bifurque et se connecte à deux boîtes en plexiglas de dimensions: 150 x 163 x 205 mm, munis de couvercles amovibles. Chaque boîte doit avoir un trou de 5 mm dans le côté opposé de l'entrée, pour éviter l'accumulation de pression.
8. Placez jusqu'à 5 souris dans chaque boîte de plexiglas et fermer les couvercles.
9. Ouvrir le nébuliseur et remplir l'insert avec au moins 4 ml de LPS en solution dans du sérum physiologique stérile ou le véhicule seul (solution saline stérile, le volume ne doit pas dépasser 8 ml). Re-connecter l'entrée de l'alimentation en air.
10. Laisser l'aérosol se écouler dans les boîtes en plexiglas fermées pendant 10 min. Surveiller en continu les animaux. Assurez-vous que l'alimentation en air reste solidement attaché à l'entrée du nébuliseur.
11. Débranchez l'alimentation en air. Avec les couvercles fermés, laisser les animaux restent dans les boîtes en plexiglas pendant 2 min.
12. Ouvrez les couvercles et permettre l'aérosol de se disperser, et de renvoyer les animaux à tes cages. Si les animaux semblent humide, placer les cages sur un coussin chauffant à basse température, pour éviter l'hypothermie.
13. Surveiller les animaux en continu pendant les 30 premières minutes, et ensuite tous les 2 h pour le 6 premières heures. Les animaux doivent présenter motif respiratoire normale et l'activité pendant et après la procédure de nébulisation.

2. lavage broncho-alvéolaire (LBA)

1. Au point de fin expérimentale, profondément anesthésier les animaux avec de l'isoflurane à effet tel que recommandé par le personnel vétérinaire de votre institution. Pincez la patte arrière pour vérifier un réflexe de retrait pour assurer une profondeur suffisante de l'anesthésie pour mener une intervention chirurgicale majeure. Arroser la fourrure des animaux avec 70% d'éthanol.
2. Ouvrez l'abdomen avec des ciseaux, et de rompre l'aorte pour être exsangue l'animal. Placez un morceau de tissu sur l'abdomen pour absorber le sang.
3. Follwing l'euthanasie, utiliser une seule coupe des ciseaux antéro-postérieur àexposer le thorax. Soulevez la cage thoracique par l'extrémité antérieure du sternum et utiliser les ciseaux pour percer la membrane au point ventrale plus, sans couper dans toute lobe pulmonaire. Ouvrez la cage thoracique en faisant deux entailles dans le sens antéro-postérieur (réunion en dessous de la mâchoire).
4. Tirez doucement en dehors de la cage thoracique en utilisant une pince, et couper la trachée sous le larynx.
5. Soulevez la trachée avec la pince et retirer les poumons en coupant les ligaments reliant les lobes de la cavité thoracique, et en tirant doucement par le tissu adipeux et cardiaque.
6. Insérez un tube de polyéthylène (diamètre intérieur: 0,58 mm; diamètre extérieur: 0,965 mm) dans la trachée et fixer le tube avec une chaîne de fil de soie.
7. Nouez le multilobe (les quatre lobes du poumon droit) avec du fil de soie.
8. Insérer une aiguille de calibre 23 dans le tube de polyéthylène et injecter lentement 250 ul de glacé PBS stérile dans le lobe unique avec une seringue de 1 ml.
9. Enfoncer délicatement les poumons30 heures et recueillir le liquide à travers la seringue. Répéter la procédure avec 200 ul de PBS (environ 300 ul de PBS doit être récupéré à partir du lobe unique à partir du volume injecté de total de 450 ul).
10. Gardez le liquide de lavage broncho-alvéolaire (BALF) sur la glace, ou énumérer les cellules BAL immédiatement. Compter les cellules avec un heamocytometer, en utilisant une solution Turk pour colorer les cellules ^11. Calculer le nombre total de cellules en multipliant le nombre de cellules avec le facteur de dilution de la solution de coloration et le volume dans le domaine de la heamocytometer compté.
11. Préparer numérations cellulaires différentielles à partir de cellules cytocentrifuged comme décrit par ailleurs ^11.

3. La fixation au formol des tissus pulmonaires pour l'évaluation histologique

1. Retirez le multilobe et enclenchez-gel sur glace sèche. Stocker à -80 ° C.
2. Monter une seringue de 60 ml avec le piston retiré sur un stand de support métallique. Remplir la seringue avec 10% de formol àla hauteur de 20 cm au-dessus du banc de laboratoire, soit 20 cm de pression constante.
3. Connecter l'aiguille de calibre 23 fixée à la trachée de la seringue de 60 ml par l'intermédiaire d'un tube en plastique avec une vanne pour commander l'écoulement de la formaline.
4. Insuffler le lobe du poumon avec de la formaline pendant 5 min. Déconnecter l'aiguille et la retirer avec le tube de polyéthylène à partir de la trachée tout en tirant sur le fil de soie pour fermer la trachée et de conserver la pression dans le poumon.
5. Immerger le lobe du poumon dans le formol et fixer pendant 24 heures à 4 ° C.
6. Laver le tissu fixé à trois reprises pendant au moins 20 min avec 70% d'éthanol, et déshydrater au xylène par le schéma suivant (1 h chacun):
   • 3x éthanol à 70%
   • 3x éthanol à 95%
   • 3x éthanol à 100%
   • 3x xylène
   • 1x (liquide) de paraffine
7. Incluez tissus déshydratés dans de la paraffine, coupés en sections 4-5 pm, et les taches avec de l'hématoxyline et de l'éosine pour permettre une évaluation histologique.

Résultats

Défi d'aérosol P. aeruginosa LPS donne généralement une réponse inflammatoire marqué dans la lumière des voies aériennes et de l'espace alvéolaire, caractérisé par une prédominance de neutrophiles aux deux points de temps précoces et tardifs.

Aérosol LPS induit neutrophilie pulmonaire

Souris C57BL / 6BY et BALB / c ont été exposées à des aérosols P. aeruginosa LPS ou du véhicule et les neutrophiles ont été dénombrées dans BALF. Le nombre to...

Discussion

LPS en aérosol génère une réponse inflammatoire dans les voies respiratoires, caractérisé par des neutrophiles dans la muqueuse epitheliale, les espaces entourant les voies respiratoires conductrices, ainsi que les espaces alvéolaires. Ce est, avec la teneur en protéines totales ont augmenté dans BALF, indicatif de fuite plasmatique, représentant de la pathologie de la lésion pulmonaire aiguë. Comme LPS induit une inflammation stérile, la réaction est indépendante de la réponse immunitaire adaptative, et il existe des l...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
LPS purifiée de Pseudomonas aeruginosa	Sigma-Aldrich		Nocif. Purification recommandée. La LPS purifiée à partir d'autres bactéries peut être utilisée.
Nébuliseur Pari LC sprint star	PARI Respiratory Equipment Inc.	023G1250
Débitmètre massique TSI 4040	TSI	4040	Un produit alternatif du fournisseur peut être utilisé.
Tuyau Tygon Saint-Gobain 15,9 mm	Sigma-Aldrich	Z685704	Marque recommandée.
Boîtes en plexiglas avec couvercles amovibles	Construit sur mesure	N/A	150 x 163 x 205 mm (un trou de 2 mm sur le côté).
Réservoir respiratoire réutilisable demi-facial 3M	3M	7503	Marque recommandée.
Filtres particulaires avancés 3M (P100)	3M	2291	Marque recommandée.
Ciseaux	VWR	233-1104	Les ciseaux de préférence peuvent être utilisés.
Pinces	VWR	232-1313	Les pinces de préférence peuvent être utilisées.
Tuyau en polyéthylène Intramedic PE50	BD	427411	Marque recommandée.
Fil de soie Ethicon 2-0 Perma-hand	VWR	95056-992	Marque recommandée.
Aiguille de calibre 26 ½			Des fournisseurs alternatifs existent.
Seringue BD de 1 ml à embout glissant, non stérile	BD	301205	Des fournisseurs alternatifs existent.
Seringue BD Luer-Lok de 60 ml, non stérile, en polypropylène	BD	301035	Des fournisseurs alternatifs existent.
Hématoxyline-éosine Fluka	Sigma-Aldrich	3972	Des fournisseurs alternatifs existent.
Solution de Türk	Merck Millipore	109277
Centrifugeuse de table			Des fabricants alternatifs existent.
Cytocentrifugeuse Cytospin 4	Thermo Scientific	A78300003	Une autre centrifugeuse peut être utilisée.
Kit de coloration HEMA-3 stat pack	Fisher Scientific	23-123-869	Des kits de coloration alternatifs existent.
Solution de formol tamponnée neutre à 10 %	Sigma-Aldrich	HT501128	Des fournisseurs alternatifs existent.