Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Souris foie fœtal Système de culture à disséquer les fonctions du gène cible dans les stades précoces et tardifs de l'aérogare de l'érythropoïèse

15K vues

⸱

DOI :

10.3791/51894

⸱

9 septembre 2014

 ,  ,  , 
1Department of Pathology, Northwestern University

Dans cet article

Résumé

Nous présentons un système in vitro de culture de fœtus de souris des érythroblastes de foie qui dissèque les stades précoces et tardifs de l'érythropoïèse terminale. Ce système facilite l'analyse fonctionnelle des gènes spécifiques à différents stades de développement.

Résumé

Érythropoïèse implique un processus dynamique qui commence avec des unités engagées en rafale érythroïde formant (BFU-Es) puis en divisant rapidement érythroïde unités formant colonie (UFC-Es). Après CFU-E, les cellules sont morphologiquement reconnaissable et généralement appelée érythroblastes terminaux. L'un des défis pour l'étude de l'érythropoïèse terminale est le manque d'approches expérimentales pour disséquer les fonctions des gènes d'une manière chronologique. Dans ce protocole, nous décrivons une stratégie unique pour déterminer la fonction des gènes dans les stades précoces et tardifs de l'érythropoïèse terminale. Dans ce système, la souris fœtale Ter119 du foie (marqueur des cellules érythroïdes matures) des érythroblastes négatifs ont été purifiés et transduites avec l'expression exogène d'ADNc ou de petits ARN en épingle à cheveux (shRNA) pour les gènes d'intérêt. Les cellules ont ensuite été cultivées dans des facteurs de croissance de milieu contenant d'autres de l'érythropoïétine (Epo) pour maintenir leur stade de progéniteurs pendant 12 heures tout en laissant les ADNc exogène ou shRNAà exprimer. Les cellules ont été modifiées pour Epo milieu après 12 heures pour induire la différenciation et la prolifération cellulaire, tandis que les matériaux génétiques exogènes ont déjà été exprimés. Ce protocole facilite l'analyse des fonctions des gènes dans le stade précoce de l'érythropoïèse terminale. Pour étudier la fin de l'érythropoïèse terminale de stade, les cellules ont été immédiatement mises en culture dans un milieu Epo après transduction. De cette manière, les cellules ont été déjà différenciées à la fin du stade de l'érythropoïèse terminale lorsque les matériaux génétiques transduites ont été exprimés. Nous recommandons une application générale de cette stratégie qui aiderait à comprendre les fonctions des gènes détaillées à différents stades de l'érythropoïèse terminale.

Introduction

L'érythropoïèse est le processus de différenciation de cellules souches hématopoïétiques multipotentes à maturité érythrocytes. Ce processus par étapes comprend la formation d'unités engagées en rafale érythroïde formant (BFU-E), les unités formant des colonies érythroïdes à division rapide (CFU-Es), et morphologiquement reconnaissables érythroblastes 1,2. Érythropoïèse terminale à partir de cellules souches CFU-E implique séquentielle érythropoïétine-dépendantes et indépendantes étapes 2,3. Dans le stade précoce de l'érythropoïèse terminale, l'érythropoïétine (EPO) se lie à son récepteur sur la surface cellulaire et induit une série de voies de signalisation en aval qui empêchent l'apoptose cellulaire et favorisent la division cellulaire rapide et l'expression du gène 1,4. À la fin du stade de l'érythropoïèse terminale, érythroblastes subissent sortie de la cellule terminale du cycle, de la chromatine et de noyaux de condensation, et l'extrusion des noyaux fortement condensés 5.

Notre compréhension de la borneérythropoïèse s'est grandement améliorée au cours des dernières décennies, ce qui est dû en grande partie à l'utilisation réussie de plusieurs in vitro et dans des modèles murins in vivo 6-9. Parmi ces modèles, la culture in vitro de souris fœtale érythroblastes de foie fournit de nombreux avantages, y compris la facilité de purification des cellules, la prolifération et la différenciation rapide, et un synoptique plus proche de l'érythropoïèse 10,11 humain. Dans ce système, un grand nombre de cellules progénitrices érythroïdes à partir de foie fœtal de souris peuvent être facilement isolés par la purification en une seule étape de Ter119 (un marqueur pour les cellules érythroïdes matures) des érythroblastes négatifs. Au cours de la culture de deux jours des érythroblastes, la différenciation de ces cellules peut être surveillée par une analyse par cytométrie de flux sur la base de l'expression en surface du récepteur de la transferrine (CD71) et l'antigène de Ter119 12. En outre, des érythroblastes énucléation de différenciation terminale peut être détectée par un fabricant de l'ADN (Hoechst 33 342) 13. En outre, les progéniteurs purifiés peuvent être génétiquement modifiées par expression d'ADNc exogène ou de petits ARN en épingle à cheveux (shRNA) pour les gènes d'intérêt, ce qui facilite les études mécanistiques des fonctions de l'expression du gène sur l'érythropoïèse 11,13,14.

D'autre part, le taux de croissance de cellule rapide peut être une arme à double tranchant, car il est difficile de caractériser les fonctions des gènes à différents stades de l'érythropoïèse terminale. Dans la plupart des cas, il est difficile de déterminer si une des fonctions des gènes spécifiques à un stade précoce de l'érythropoïèse terminale depuis le temps des ADNc ou shRNA exprimés, les cellules ont déjà passé le stade précoce. Pour résoudre ce problème, nous avons développé un système unique pour disséquer les stades précoces et tardifs de l'érythropoïèse terminale. Pour le stade précoce de l'érythropoïèse terminale, Ter119 érythroblastes négatifs génétiquement modifiés ont été cultivées dans un milieu sans Epo mais contenant du facteur de cellules souches (SCF), l'IL-6 et FLT3ligand de maintenir leur statut de géniteur et laissez les ADNc transduites ou shRNA à l'expression 13. Les cellules ont été modifiées pour l'Epo contenant le milieu après 12 heures pour induire la prolifération et la différenciation cellulaire. De cette façon, lorsque les cellules ont commencé à se différencier, les ADNc ont été transduites ou shRNA déjà exprimé. Pour la phase tardive de l'érythropoïèse terminale, Ter119 érythroblastes négatives ont été cultivées dans un milieu contenant de l'Epo immédiatement après la transduction. Par conséquent, on peut analyser les fonctions des gènes d'intérêt dans la phase tardive de l'érythropoïèse terminale. En résumé, une large application de ce système aiderait les fonctions des gènes disséquer à différents stades de l'érythropoïèse terminale.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Les expériences décrites dans ce protocole ont été réalisées en conformité avec les directives et règlements établis par l'Université Northwestern institutionnel de protection des animaux et l'utilisation Comité.

1 Préparation du milieu de culture

  1. Préparer la solution de fibronectine. Ajouter 1 ml d'eau à une fiole de la fibronectine humaine (1 mg). Laissez solution dans la culture de tissus capot pendant 30 minutes sans agitation. Transférer le liquide total à 50 ml de PBS pour obtenir une concentration finale de 20 pg / ml et bien mélanger doucement. Rendre la solution de fibronectine frais avant le revêtement de la plaque (voir ci-dessous).
  2. Préparer 50 ml de milieu sans Epo (milieu SCF). Combinez les ingrédients énumérés dans le tableau 1. Le milieu peut être conservé à 4 ° C pendant 1 mois quand fait frais.
  3. Préparer 50 ml de milieu contenant de l'Epo. Combinez les ingrédients énumérés dans le tableau 2. Le milieu peut être conservé à 4 ° C pendant 1 mois quand fait frais.

2. fibronectine plaque recouverte

  1. Ajouter 1 ml de solution de fibronectine à chaque puits d'une plaque à 6 puits (ou 0,5 ml à chaque puits d'une plaque à 12 puits). Laisser la plaque dans la culture de tissus capot pendant 1 heure.
  2. Rincer les puits avec de l'eau stérile et sécher à l'air deux fois la plaque.
  3. Enveloppez la plaque et enregistrer dans la chambre froide à 4 ° C.

3 Purification de foie fœtal érythroblastes

REMARQUE: Utilisez le foie du fœtus à partir de E13 à E15 chronométrés souris gravides (C57BL / 6). foies de E13.5 sont préférées pour optimiser le rendement de progéniteurs CFU-E. Pour obtenir des souris gravides chronométrés, 6 à 8 semaines les souris mâles et femelles ont été placées dans une cage (généralement un mâle avec une ou deux femelles). Bouchon vaginal femmes ont été vérifiés le lendemain matin afin de déterminer si l'accouplement a réussi. Le premier jour de la gestation était le jour après la prise a été trouvé.

  1. Préparation des cellules de foie fœtal total
    1. Sacrifiez le mousoi par inhalation de CO 2 et la dislocation cervicale. Pulvériser l'abdomen avec de l'éthanol à 70% pour la désinfection. Ouvrez l'abdomen avec dissection des ciseaux pour enlever l'utérus. Laver l'utérus en 1x PBS.
    2. Disséquer les foetus dans des conditions stériles en utilisant une hotte de culture de tissus et des outils à l'autoclave et laver 1x PBS.
    3. Disséquer les foies fœtaux des fœtus. Maintenir le corps du fœtus avec une pince, tirez doucement sur le foie fœtal (de couleur rose) à partir du corps avec un autre pince. Nettoyer le foie fœtal avec une pince pour enlever les tissus fibrotiques associées. Placez tous les foies fœtaux en frais 1x PBS contenant 10% de sérum de veau fœtal.
    4. Perturber mécaniquement le foie du fœtus par aspiration et refoulement.
    5. On filtre la suspension de cellules à travers un tamis cellulaire de 40 um dans un tube conique de 50 ml. Pellet les cellules à 800 xg pendant 5 min.
    6. Aspirer le surnageant et remettre en suspension les cellules dans 1 ml de PBS avec 10% de FBS (environ 8 E13.5 foies fœtauxpar ml).
  2. Purification de Ter119 érythroblastes négatifs
    1. Bloquer les cellules avec de l'IgG de rat (0,2 mg / ml) sur de la glace pendant 15 min.
    2. Sans lavage ou centrifugation, ajouter un anticorps biotinylé anti-Ter119 à la suspension de cellules (1 ug / ml). Incuber pendant 15 min sur la glace.
    3. Laver à 1x PBS avec 10% de FBS (1:10) et centrifuger à 800 g pendant 5 min. Remettre en suspension les cellules dans 1 ml de PBS avec 10% de FBS.
    4. Ajouter 75 ul streptavidine conjuguée avec des particules magnétiques et incuber pendant 10 minutes sur la glace.
    5. Ajouter le volume à 2,5 ml avec du PBS contenant 10% de FBS. Transférer la suspension cellulaire dans un 5 ml polypropylene tubes fond rond.
    6. Insérer le tube dans un appareil de tri cellulaire magnétique et incuber pendant 10 min. Ter119 cellules positives se fixeront sur le côté du tube. Les Ter119 seules érythroblastes négatifs resteront dans la suspension.
    7. Verser la suspension de cellules dans un nouveau 5 ml polypropylene tubes fond rond.
    8. Répétez les étapes 3.2.6 et 3.2.7 pour éliminer les cellules positives Ter119 résiduelle.
    9. Pellet les cellules à 800 xg pendant 5 min. Aspirer le surnageant. Remettre en suspension les cellules dans 1 ml de PBS contenant 10% de FBS et compter les cellules vivantes avec du bleu Trypan.

4 transduction avec des virus ou ADNc codant shRNA

  1. Plaque des cellules de foie foetal négatifs Ter119 purifiée à 3-5 x 10 5 / puits dans une plaque revêtue de fibronectine 12 puits (ajuster le nombre de cellules si vous utilisez une plaque différente).
  2. Ajouter polybrène à une concentration finale de 10 pg / ml pour faciliter la transduction virale. Spin infecter les cellules avec des lentivirus ou rétrovirus, ADNc codant ou shRNA, à 800 g pendant 1-1,5 heures à 37 ° C.

5. Culture des transduites Ter119 négatif souris foie fœtal érythroblastes

  1. Pour tester les fonctions des gènes dans le stade précoce de l'érythropoïèse terminale (Figure 1 pointillés).">
    1. Culture des cellules transduites dans un milieu sans Epo (moyen SCF) pour 12 heures afin de permettre l'expression des gènes et de l'entretien de l'état progénitrices transduites.
    2. Centrifuger les cellules à 800 xg pendant 5 min. Aspirer le surnageant. Remettre en suspension les cellules dans 1 ml de milieu contenant de l'Epo dans chaque puits d'une plaque à 12 puits.
    3. Après culture pendant 24 ou 48 heures, la récolte des cellules pour d'autres essais.
  2. fonctions des gènes de test à la fin du stade de l'érythropoïèse terminale (Figure 1 lignes pleines).
    1. Culture des cellules immédiatement à l'Epo milieu contenant une transduction.
    2. Après culture pendant 24 ou 48 heures, la récolte des cellules pour les autres essais.

6. coloration des cellules cultivées foie fœtal pour l'analyse par cytométrie en flux

  1. Lavez et remettre les cellules en PBS 1x. Récolte 2 x 10 5 cellules en culture pour l'analyse par cytométrie en flux.
  2. Incuberles cellules avec des anticorps conjugués à un fluorophore de 20 min à température ambiante dans l'obscurité. Pour tester la différenciation, utilisez APC conjugué anti-CD71 et anti-PE Ter119 conjugué. Pour tester l'énucléation, utilisez Hoechst 33342 tache en plus des autres anticorps.
  3. Laver les cellules avec du PBS 1X. Remettre en suspension les cellules dans 0,5 ml de PBS contenant 1% de FBS et de l'iodure de propidium (PI) (1 pg / ml) pour colorer les cellules mortes et les exclure de l'analyse.
  4. Conduite flux d'analyse cytrometric. Analyser les cellules de contrôle de couleurs colorées et non colorées simples d'abord pour l'ajustement et la rémunération du cytomètre de flux.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

La figure 1 présente les stratégies expérimentales. Le protocole est constitué de deux conditions indépendantes pour viser les fonctions des molécules de signalisation dans les stades précoces et tardifs de l'érythropoïèse terminale. Ter119 négatifs érythroblastes de foie foetal ont été purifiés à partir de fœtus de souris E13.5. Analyse par cytométrie de flux de cellules érythroïdes fœtales du foie avant et après purification a montré que la purification a été efficace (Figures 2A et <...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Nous présentons ici un système unique d'analyser chronologiquement fœtus de souris érythropoïèse terminale du foie. Grâce à l'application de différentes conditions de culture, nous avons disséqué avec succès l'érythropoïèse terminale en début et en fin. Ceci est particulièrement important pour déterminer les mécanismes de gènes ayant des fonctions multiples. Par exemple, GTPases Rac jouent un rôle important dans les différentes étapes de l'érythropoïèse terminale. L'inhibition de GTPases Rac dans le ...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le NIH R00HL102154, et un American Society of Hematology prix de savant à P Ji.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Iscove’s Modified Dulbecco’s MediumIMDM (IMDM)Gibco12440-053
Sérum fœtal bovin (FBS)GEMINI Bio-produit700-102P
Pénicilline-Streptomycine solutionHycloneSV30010100x
L-GlutamineHycloneSH30034.01200 mM
Souris FIT3 Ligand (Flt-3L)BD Biosciences 14-8001-80
Interleukine-6 recombinante de souris (IL-6)  ;GEMINI Bio-produit300-327P
FibronectineBD Biosciences  ;
Albumine sérique bovine (BSA)STEMCELL TECH930010 % stock en IMDM
Érythropoïétine (Epo)PROCRITNOC 59676-303-003 000 U/ml stock
Particules de streptavidine PlusBD Pharmingen557812
EasySep AimantSTEMCELL TECH18000
Tube à fond rond en polypropylène, 5 mlFALCON
354008352063

Références

  1. Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications. Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).
  2. Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin. Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).
  3. Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development. The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).
  4. Koury, M. J., Bondurant, M. C. Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells. Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).
  5. Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts. Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).
  6. Dumitriu, B., et al. Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development. Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).
  7. Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods. Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).
  8. Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. Hematopoietic stem cell characterization and isolation. Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).
  9. Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells. Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).
  10. Bhatia, H., et al. Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells. Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).
  11. Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system. Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).
  12. Socolovsky, M., et al. Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts. Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).
  13. Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2. Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).
  14. Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression. Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).
  15. Patel, V. P., Lodish, H. F. A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes. The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).
  16. Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor. Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).
  17. Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J. New insights into erythropoiesis. Current opinion in hematology. 9 (2), 93-100 (2002).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

TER119 négatifpurification des érythroblastestransduction viraleanalyse par cytométrie en fluxmilieu au facteur de stimulation des colonies des cellules souchesinduction à l'érythropoïétineanalyse de la fonction géniquedifférenciation cellulaire
Souris foie fœtal Système de culture à disséquer les fonctions du gène cible dans les stades précoces et tardifs de l'aérogare de l'érythropoïèse
Contactez-nous
Recommander à la bibliothèque

Confidentialité

Conditions d’utilisation

Politiques

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Tous droits réservés.