Cette vidéo montre les étapes de base pour effectuer une analyse du transcriptome entier sur des échantillons de moelle épinière embryonnaire de poussin disséqués après transfection avec électroporation in ovo.
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Article de méthode
Cette vidéo montre les étapes de base pour effectuer une analyse du transcriptome entier sur des échantillons de moelle épinière embryonnaire de poussin disséqués après transfection avec électroporation in ovo.
L’électroporation in ovo du tube neural du poussin est une méthode rapide et peu coûteuse pour l’identification de la fonction des gènes au cours du développement neuronal. L’analyse à l’échelle du génome des transcrits exprimés différentiellement après une telle manipulation expérimentale a le potentiel de découvrir une image presque complète des effets en aval causés par la construction transfectée. Ce travail décrit une méthode simple de comparaison des transcriptomes d’échantillons de moelles épinières embryonnaires transfectées, comprenant toutes les étapes entre l’électroporation et l’identification des transcrits exprimés de manière différentielle. La première étape consiste en des directives pour l’électroporation et des instructions pour la dissection de moitiés de moelle épinière transfectées à partir d’embryons HH23 dans un environnement exempt de ribonucléase et l’extraction d’échantillons d’ARN de haute qualité adaptés au séquençage du transcriptome. L’étape suivante est celle de l’analyse bio-informatique avec des directives générales pour le filtrage et la comparaison des ensembles de données RNA-Seq dans le serveur public Galaxy, ce qui élimine le besoin d’une structure de calcul locale pour les expériences à petite et moyenne échelle. Les résultats représentatifs montrent que les méthodes de dissection génèrent des échantillons d’ARN de haute qualité et que les transcriptomes obtenus à partir de deux échantillons de contrôle sont essentiellement les mêmes, une condition importante pour la détection des gènes d’expression différentielle dans les échantillons expérimentaux. En outre, un exemple est fourni où la surexpression expérimentale d’une construction d’ADN peut être vérifiée visuellement après comparaison avec des échantillons de contrôle. L’application de cette méthode peut être un outil puissant pour faciliter de nouvelles découvertes sur la fonction des facteurs neuronaux impliqués dans le développement précoce de la moelle épinière.
Les études génétiques sur les organismes vivants utilisent fréquemment l'embryon de poulet comme modèle parce que dans l'électroporation in ovo représente un moyen rapide et peu coûteux pour la transfection partiellement structures embryonnaires in vivo avec des constructions d'ADN 1-5. Des vecteurs d'expression bicistronique qui codent pour un produit de transcription contenant un rapporteur fluorescent en même temps que le gène d'intérêt, comme pCIG 6 ou 7 PMES, permettent une vérification rapide de la qualité de la transfection dans la région souhaitée sous un stéréomicroscope avant de....
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1. électroporer la construction d'intérêt dans les tubes neuraux de HH12-13 embryons de poulet in ovo
Utilisez un rapporteur fluorescent, de préférence dans une transcription bicistronique ou fusionnée à la protéine d'intérêt avec un 2a virale intercalant peptide 11, pour permettre l'identification rapide des individus avec des niveaux satisfaisants de transfection. REMARQUE: Le temps d'incubation typique pour ce stade est d'environ 48 heures à 37,8 ° C.
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Pour valider la méthode décrite, deux échantillons de contrôle ont été générés à partir d'embryons électroporées avec le vecteur PMES vide 7 et un échantillon à partir d'embryons transfectées avec le même vecteur contenant l'insert construire SCRT2-ZNF, qui code pour les domaines en doigt de zinc de poulet SCRT2 18. Les échantillons donnant des 11 à 22 pg d'ARN total ont été obtenus chacun à partir de pools de 8 à 12 embryons. Les trois échantillons ont obtenu une valeur optimale RIN de 10 à un con.......
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Ici nous fournissons des lignes directrices pour l'analyse des effets après l'électroporation de la poule de la moelle épinière. Bien que l'électroporation de vecteurs d'ADN est plus fréquemment utilisé pour surexprimer un gène d'intérêt, on peut aussi utiliser des constructions codant des dominants négatifs, protéines quimeric ou précurseurs de siRNA pour créer les conditions fonction des gènes knock-down 19-21. En effet, la comparaison des profils de transcriptome résultant de l'anal.......
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
CYIY est soutenu par la FAPESP (2012/14421-5) et FMV est soutenu par une bourse de la FAPESP (2009/53695-0). Nous remercions le DNA Technologies Core de l’Université de Californie à Davis pour la préparation et le séquençage des banques RNA-Seq utilisées dans ce travail, l’équipe Galaxy pour avoir fourni une excellente interface gratuite pour les outils d’analyse de données de séquençage à haut débit et le Dr Marianne Bronner pour nous avoir permis de filmer dans son laboratoire.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Encre de Chine | Tout fournisseur | ||
| 18G x 1 1/2 aiguille | BD | 305196 | |
| seringue de 3 ml | BD | 309657 | |
| Tris | MP Biomedicals | 819620 | |
| F D & C Bleu 1 | Spectra Colors Corporation | 5.FC.0010P0 | Colorant alimentaire utilisé pour visualiser l’injection |
| d’ADN Solution de Ringer (1 L) | |||
| ; ; ; ; - 7,2 g NaCl | Sigma-Aldrich | S-9888 | |
| ² ; ; ; - 0,37 g KCl | Sigma-Aldrich | P-4504 | |
| ; ; ; ; - 0,225 g de CaCl2• ; 2H2O | Fisher Scientific | 10043-52-4 | |
| ; ; ; ; - 0,217 g Na2HPO4.7H2O | Sigma-Aldrich | S-9390 | |
| ; ; ; ; - 0,02 g KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P-5379 | |
| ; ; ; ; - ddH2O à 800 ml et ajuster le pH à 7,4 | |||
| ; ; ; - ddH2O à 1 L | |||
| ; ; ; ; - Filtre et autoclave | |||
| PBS (solution tamponnée au phosphate) (1 L) | |||
| ; ; ; ; - 8 g de NaCl | Sigma-Aldrich | S-9888 | |
| ; ; ; ; - 0,2 g de KCl | Sigma-Aldrich | P-4504 | |
| ; ; ; - 1,15 g Na2HPO4• ; 7H2O | Sigma-Aldrich | S-9390 | |
| ; ; ; ; - 0,2 g KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P-5379 | |
| ² ; ; ; ; - ddH2O à 800 ml et ajuster le pH à 7,2 | |||
| ; ; ; - ddH2O à 1 L et filtre | |||
| ; ; ; ; - 1 ml de DEPC (Diéthylpyrocarbonate) | Sigma-Aldrich | D-5758 | |
| ; ; ; ; - Agitez vigoureusement et laissez reposer toute la nuit à température | |||
| . ; ; ; - Autoclave | |||
| Cuillère tamisée | Tout fournisseur | ||
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| RNaseZap Solution de décontamination RNase | Life Technologies | AM9780 | |
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| Pompe à pipette manuelle | Tout fournisseur | ||
| Transparent Microcentrifugeuse Tubes en polypropylène de 1,5 ml | Corning Life Sciences | MCT-150-C | |
| Microcentrifugeuse | Tout fournisseur | ||
| Solution RNAlater pour la stabilisation de l’ARN | Life Technologies | AM7020 | |
| Kit d’isolement de l’ARN total aqueux | Life Technologies | AM1912 | |
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| Truseq Kit de préparation d’échantillons d’ARN v2 | Illumina | RS-122-2001/RS-122-2002 |
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