Rat Heterotopic abdominale Coeur / Transplantation pulmonaire simple dans une configuration de volume chargé

Résumé

Nous décrivons une nouvelle technique de transplantation cœur-poumon abdominale hétérotopique (HAHLT) chez le rat. La configuration de la greffe entraîne une circulation du greffon partiellement chargée, ce qui permet une évaluation fonctionnelle directe. Ce modèle peut être utilisé pour des études aiguës ou chroniques de la fonction et de l’état immunologique du greffon transplanté.

Résumé

Dans ce document, nous décrivons une nouvelle technique de transplantation cœur-poumon abdominale hétérotopique (HAHLT) chez le rat. La configuration de la greffe implique une anastomose de la veine cave inférieure du donneur (VCI) à la VCI receveuse, et de l’aorte ascendante du donneur (Ao) à l’Ao abdominal du receveur. Les lobes pulmonaires supérieurs et moyens droits sont préservés et fonctionnent comme des conduits pour le flux sanguin du cœur droit au cœur gauche.

Il y a plusieurs avantages à utiliser cette technique, et elle se prête à un large éventail d’applications. Parce que le greffon est transplanté dans une configuration qui permet une charge volumique dyamique, la fonction cardiaque peut être directement évaluée in vivo. L’utilisation de cathéters à conductance pression-volume permet de caractériser les paramètres hémodynamiques dépendants et indépendants de la charge. Le greffon peut être converti en une configuration chargée en appliquant une pince sur la VCI infra-hépatique du receveur. Nous décrivons des techniques chirurgicales modifiées pour les opérations du donneur et du receveur, ainsi qu’une stratégie idéale de protection du myocarde. Selon l’objectif de l’expérience, ce modèle peut être adapté pour être utilisé dans des études aiguës et chroniques de la fonction du greffon, de l’état immunologique et des conditions de charge ventriculaire variables. Les voies respiratoires conductrices vers le poumon transplanté sont préservées et permettent une reventilation pulmonaire aiguë. Cela facilite l’analyse des effets du mélange de sang veineux et artériel fournissant une perfusion coronaire au greffon.

Une limitation de ce modèle est sa complexité technique. Il y a une courbe d’apprentissage importante pour les nouveaux opérateurs, qui devraient idéalement être encadrés dans la technique. Une formation en chirurgie est avantageuse pour ceux qui souhaitent appliquer ce modèle. Malgré sa complexité, nous visons à présenter le modèle dans un format clair et facilement applicable. En raison de la similitude physiologique de ce modèle avec la transplantation orthotopique et de son large éventail d’applications d’étude, l’effort investi dans l’apprentissage de la technique est susceptible d’en valoir la peine.

Introduction

Le premier modèle de transplantation cardiaque abdominale hétérotopique (HAHT) chez le rongeur a été décrit par Abbott et ses collègues en 1964¹. Cette technique et les modifications ultérieures ont été largement appliquées pour caractériser la fonction du greffon et l’état immunologique. La majorité des techniques HAHT décrites impliquent un cœur non chargé en volume^2,3. Des modèles de HAHT impliquant des ventricules chargés de volume ont été décrits, mais ils sont souvent limités à un ou plusieurs égards.

La transplantation cœur-poumon abdominale hétérotopique (HAHLT) avec un ventricule gauche (VG) chargé de volume a été décrite précédemment. Chen et ses collègues⁴, puis Ibrahim et ses collègues⁵ ont décrit HAHLT avec une seule anastomose aorto-aortique (donneur montant vers l’aorte abdominale receveuse). La seule charge volumique présentée au ventricule dans cette circulation est le retour veineux coronaire. Asfour et ses collègues ont décrit une technique HAHT dans laquelle le circuit pulmonaire a été éliminé par anastomosation de l’artère pulmonaire (PA) du donneur à l’oreillette gauche du donneur (LA)⁶. Dans cette circulation, l’afflux veineux vers le ventricule droit (VD) se produit via une anastomose SVC du donneur vers l’IVC du receveur, et la charge VG subséquente est éjectée dans l’anastomose aorto-aortique. La fonction cardiaque a été partiellement évaluée in vivo, ainsi qu’in vitro à l’aide d’un appareil de Langendorff. Figueiredo et ses collègues ont décrit un modèle HAHLT similaire à notre propre^{modèle 7}, mais chez la souris. L’entrée veineuse vers le VD se produit par anastomose SVC du donneur vers le receveur. Le sang passe ensuite dans la circulation pulmonaire unique et la charge VG est éjectée dans l’anastomose aorto-aortique. La fonction cardiaque dans leur étude a été évaluée par imagerie par résonance magnétique (IRM). Wen et ses collègues ont décrit une technique HAHT unique dans laquelle le VG est chargé au moyen d’une aorte receveuse vers l’anastomose LA⁸ du donneur. Le LV se remplit donc à des pressions systémiques. La fonction cardiaque et la question de savoir si le volume systolique VG est éjecté avant la fin dans leur modèle n’ont pas été évaluées.

De nombreuses techniques référencées ci-dessus impliquent des conditions de charge VG non physiologiques, y compris les techniques dont la charge partielle LV n’est représentée que par un retour veineux coronaire. D’autre part, de nombreuses techniques s’approchent de la charge physiologique du VG. La majorité de ces techniques, comme la technique d’Asfour et de ses collègues, omettent la circulation pulmonaire et utilisent une anastomose AP du donneur avec le donneur^{LA 6,9}. La circulation décrite par Galinanes et ses collègues¹⁰ utilise une anastomose cave receveuse directe vers le donneur LA, omettant la circulation pulmonaire et le cœur droit. Yokoyama et ses collègues obtiennent le même effet en ligaturant l’AP du donneur et en créant une communication interauriculaire dans le cœur du donneur (en omettant les circulations du poumon du donneur et du cœur droit)¹¹. La circulation de Maruyama et de ses collègues¹² implique une anastomose entre l’AP gauche du donneur et le receveur Ao, ce qui permet le remplissage du VG via la circulation pulmonaire comme conduit, mais exclut effectivement le cœur droit.

Dans les cas où des conditions de charge quasi physiologiques étaient remplies, nous faisons progresser la technique de HAHLT sur 2 points majeurs. Tout d’abord, à notre connaissance, la configuration exacte que nous rapportons n’a pas été décrite chez les rats. C’est peut-être la circulation la plus polyvalente pour les chercheurs souhaitant étudier la physiologie, la structure et l’immunologie de la greffe cœur-poumon transplantée. Deuxièmement, nous décrivons comment la fonction du greffon de greffe peut être directement caractérisée in vivo. Pour cette application, des cathéters à conductance pression-volume peuvent être introduits directement dans l’apex VG du greffon de greffe, ce qui permet une caractérisation complète de la fonction cardiaque.

La technique décrite ici peut être appliquée à la fois aux études aiguës et chroniques de la fonction du greffon de greffe, tandis que l’évaluation fonctionnelle peut être réalisée soit in vivo, soit in vitro. Nous présentons un modèle dans lequel les conditions de charge peuvent être proches de la physiologie, mais le degré de charge ventriculaire peut être manipulé à la fois de manière aiguë et chronique en détournant le retour veineux vers ou loin du greffon. Les conditions de postcharge peuvent également être manipulées. Parce que le poumon et ses voies respiratoires sont conservés dans cette configuration de greffe, les chercheurs peuvent réaérer le poumon du donneur de manière aiguë. De manière unique, la reventilation pulmonaire modifie la composition du sang perfusant les artères coronaires de la greffe. Dans des conditions non ventilées, le sang éjecté de l’aorte du donneur est désoxygéné et se mélange au sang oxygéné dans l’aorte du receveur. Dans des conditions de ventilation aiguë, le sang éjecté devient oxygéné. Ainsi, la fonction du greffon de transplantation peut être comparée dans des conditions ventilées et non ventilées, ainsi que dans des conditions de charge variable.

Le protocole ci-dessous décrit les modifications importantes apportées aux opérations du donneur et du receveur de HAHLT précédemment décrites. Il décrit également une technique optimale pour protéger le greffon transplanté tout au long de la période d’ischémie (temps entre l’explant du donneur et l’implant receveur). Les avantages de cette technique comprennent des conditions physiologiques potentiellement proches de celles d’un greffon transplanté orthotopique, et un large éventail d’applications d’investigation. Une limitation importante est sa complexité technique. Avec un mentorat et une pratique adéquats, les avantages de cette technique l’emporteront probablement sur les défis liés à son adoption.

Protocole

Tous les animaux ont été logés et soignés conformément aux directives institutionnelles pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire national et. L'approbation éthique pour ce protocole a été accordée par l'Université du Comité de protection des animaux de la Colombie-Britannique. Mâles, les rats Sprague-Dawley pesant entre 300 à 450 g ont été utilisés pour ce protocole.

Opération 1. des donateurs

1. Avoir environ 100 ml de cardioplégie (RT) dans un ballon cylindrique reliée à longue intraveineuse (IV) tube de cathéter par un robinet à 3 voies. Utilisez un support pour élever le ballon à environ 80 cm au-dessus de la surface active, permettant la livraison de cardioplégie par gravité.
2. Pour visualiser correctement les structures, utiliser une paire de loupes chirurgicales ou d'un microscope à dissection.
   NOTE: Nous utilisons actuellement un microscope opératoire binoculaire avec 3.4 - 21.3X grossissement.
3. Placez le donateur dans une chambre d'anesthésie et induire une anesthésie avec 4 - 5% d'isoflurane.
4. Transférez le rat à une plate-forme d'exploitation et maintenir une anesthésie par le nez cône avec 1 - 2% d'isoflurane. Appliquer une pommade vétérinaire aux yeux de l'animal pour prévenir la sécheresse. Administrer midazolam (2 mg / kg) par voie intrapéritonéale avec une aiguille 25 G.
5. L'aide de tondeuses chirurgicales, de se raser le donneur de xiphisternum à la mandibule. Raser une petite région de l'aine gauche (pour un accès ultérieur de IV). Appliquez un agent d'épilation les surfaces actives, attendez environ 5 min, et enlever les poils avec un morceau de gaze.
6. Prep les sites chirurgicaux avec une solution à base de chlorhexidine povidone-iode ou (nous utilisons seulement la chlorhexidine). Infiltrez sites incisionnelles avec 0,1 à 0,5% de lidocaïne sous-cutanée.
7. Fixez les membres antérieurs et postérieurs gauche à la plate-forme d'exploitation avec du ruban adhésif, laissant le droit postérieur gratuit pour le suivi de profondeur de l'anesthésie et les signes vitaux.
8. Après avoir vérifié la profondeur de l'anesthésie appropriée par la pédale pincée, faire une incision dans l'aine pli gauche en utilisantun scalpel 22-lame. Par dissection, exposer la veine fémorale commune gauche et d'obtenir un accès IV comme suit:
   1. Rétracter délicatement le tissu recouvrant la veine fémorale, et cathétériser la veine avec un 24 G IV. Connectez le IV à une courte longueur de tubulure IV rempli de solution saline, et fixer le tube en place avec du ruban adhésif.
      NOTE: La procédure de cathétérisme veineux fémoral chez le rat est décrit ailleurs par Jespersen et ses collègues ^14.
   2. Raccorder une seringue de 10 ml rempli de solution saline pour le tuyau IV, et aspirer le sang doucement pour assurer un positionnement correct de l'IV.
   3. Injecter 300 à 500 UI d'héparine non fractionnée à travers le tuyau IV, et ensuite rincer le tube avec 3-5 ml d'une solution saline.
9. Ensuite, tracheotomize le donneur comme suit:
   1. Faire une incision médiane dans les tissus mous entre la veine jugulaire et la mandibule à l'aide d'un scalpel 22-lame. Pénétrer dans la capsule de la glande thyroïde dans la ligne médiane en utilisant Metzenciseaux Baum, et ses lobes distincts utilisant dissection.
   2. Utilisation de dissection émoussé, séparer les muscles de la sangle du cou sur la ligne médiane pour exposer la surface antérieure de la trachée.
   3. Utilisez une pince à disséquer courbes carrément un plan circonférentiel autour de la trachée. Entourez la trachée avec une cravate de soie 4-0.
   4. Utilisation de ciseaux à iris, faire une incision transversale dans la trachée-artère antérieure, inférieure à environ 5 mm du cartilage thyroïde. Introduire doucement la canule trachéale (un 14 G IV) et le fixer en place à l'aide de la cravate de soie 4-0.
   5. Raccorder la canule trachéale à un ventilateur mécanique. Rediriger le flux d'oxygène et de l'isoflurane à travers le circuit de ventilation, et ventiler le donateur à un rythme et le volume de marée prédit par son poids ^13.
10. Faire une incision sur la ligne médiane de la poitrine (en utilisant un scalpel à lame 22), prolongeant l'incision à l'encoche jugulaire au-dessous de la xipisternum.
11. Rester dans la ligne médiane, Effectuez une sternotomie médiane à l'aide d'un coupe-os. Rétracter les bords du sternum avec un écarteur autostatique. Entrez le péricarde et cavités pleurales.
12. Effectuez une thymectomie. Il est plus facile de diviser premier carrément le thymus dans la ligne médiane, puis séparer de structures environnantes utilisant une combinaison de dissection et nette.
    NOTE: L'origine des artères thoraciques internes peut être blessé en disséquant le thymus à partir des bords supérieurs du sternum. Pour prévenir les saignements, pinces hémostatiques peuvent être appliquées avant de retirer le thymus à ces points.
13. Avec des ciseaux de Metzenbaum et / ou une forte Lauer, disséquer péri-caval graisse loin de la veine cave inférieure (VCI). Assurez-vous que l'IVC est relativement exempt de graisse et du tissu conjonctif de la jonction de cavo-auriculaire supérieurement, au diaphragme en bas.
14. Utiliser une forte Lauer, la circonférence gratuitement la veine cave supérieure (SVC) et l'encercler avec une cravate de soie 4-0.
15. Ensuite, disséquer leveine cave laissé libre de structures environnantes, et ligaturer proximale et distale avec 4-0 cravates en soie. Réséquer la partie intermédiaire de cava pour exposer l'artère sous-clavière gauche.
16. Circonférence gratuitement les vaisseaux de l'arc aortique utilisant une forte Lauer. Appliquer agrafes chirurgicales proximale et distale de l'artère iliaque, et de le diviser entre les clips. Laissez l'artère carotide commune gauche et l'artère sous-clavière gauche non coupée.
17. Ensuite, canuler SVC avec un cathéter 24 G IV. Fixez le cathéter avec le 4-0 cravate de soie placé précédemment.
18. Préparez-vous à une récolte de greffe expédient, mais en douceur.
19. Avec des ciseaux pointus, diviser la VCI juste supérieure à la surface diaphragmatique. Divisez la SVC supérieure à son site de canulation, veiller à ce que les structures des voies respiratoires à proximité ne sont pas blessés.
20. Éteignez le ventilateur et débranchez la canule trachéale. Transect la trachée proximale.
21. Saisir la trachée sectionnée avec une pince, et retirer le coeuret les poumons en bloc. Cela nécessitera une légère traction avec dissection fine que la greffe cœur-poumon est enlevée. Séparer la trachée de l'oesophage sous-jacent. Éviter de blesser l'aorte descendante, de sorte qu'une longue portion de celui-ci reste intact après la récolte.

2. Préparation du Coeur-poumon Graft

REMARQUE: tout en complétant cette partie de la procédure, un assistant devrait être anesthésier le rongeur bénéficiaire et préparer implantation du greffon.

1. Passer la greffe cœur-poumon sur gaze chirurgicale avec la face antérieure du cœur vers le bas. Utilisation de dissection, enlever toute oesophage résiduelle, éviter les blessures aux voies aériennes postérieures.
2. Situer l'aorte thoracique descendante et insérer un 16 G bout arrondi canule. Fixez la canule en place avec une cravate de soie 4-0.
3. Repérez les navires de l'arc aortique, et appliquer une pince chirurgicale à l'artère sous-clavière gauche. Laissez l'artère carotide gauche non taillés pour la sousséquent de-diffusion.
4. Administrer la première dose de cardioplégie en raccordant la tubulure de cardioplégie à la canule aortique 16 G. L'artère carotide doit être obturée temporairement avec une pince pour assurer la livraison adéquate de cardioplégie.
   NOTE: Un avantage d'avoir la canule aortique attaché est que cardioplégie peut être administré en continu et / ou par intermittence comme souhaité. Pour le dosage intermittent, nous livrons généralement cardioplégie tous les 10 - 15 min dans 5 ml bolus sur 30 - 45 sec.
5. Avec des ciseaux de Metzenbaum et / ou une forte Lauer, disséquer la graisse péri-aortique loin de l'aorte. Assurez-vous que l'aorte est relativement exempt de graisse et de tissu conjonctif à partir de l'artère sous-clavière gauche (arche distale) de son site de canulation.
6. Ensuite, exposer la bronche souche gauche en utilisant une forte Lauer et ligaturer proximale avec une cravate de soie 4-0. Transect la bronche distale gauche à la ligature en utilisant l'iris ciseaux. Effectuez une pneumonectomie gauche en ligaturant pulmonaire gaucheartère et la veine avec 4-0 cravates en soie. Transect distale de la ligature et retirer le poumon gauche.
7. Comme ci-dessus, retirez tous les autres lobes pulmonaires à l'exception des lobes supérieur et moyen droite. Éviter de blesser l'IVC dans le processus d'exécution lobectomies.
8. Connectez le tube de cardioplégie à la canule aortique et administrer cardioplégie continue alors que le destinataire est en cours de préparation. Placez la greffe cœur-poumon dans un récipient stérile (par exemple, un bécher).

3. bénéficiaire d'exploitation

1. Anesthésier le destinataire que par l'opération de donateurs, ci-dessus. Utilisez vétérinaire pommade pour protéger les yeux de l'animal de la sécheresse. Confirmez anesthésie fréquemment par la pédale pincée.
2. Placez l'animal comme par l'opération des donateurs, laissant cette fois le droit des membres antérieurs libre de surveiller les signes vitaux et profondeur de l'anesthésie.
3. Raser l'abdomen de xiphisternum à pénis. Raser une petite région de l'aine gauche (pour un accès ultérieur de IV). Appliquer uneAgent d'épilation les surfaces actives, attendez environ 5 min, et enlever les poils avec un morceau de gaze.
4. Prep les sites chirurgicaux avec une povidone-iode ou une solution à base de chlorhexidine. Infiltrez sites incisionnelles avec 0,1 à 0,5% de lidocaïne sous-cutanée.
5. Tracheotomize et ventiler le destinataire comme indiqué ci-dessus. Alternativement, de maintenir le destinataire sous le nez cône anesthésie.
6. L'introduction d'un cathéter dans la veine fémorale comme décrit ci-dessus. Injecter 300 à 500 UI d'héparine non fractionnée à travers le tuyau IV, et ensuite rincer le tube avec 3-5 ml d'une solution saline.
7. Effectuez une laparotomie en faisant une incision abdominale médiane avec un scalpel 22-lame xiphisternum à pénis. Rétracter la paroi abdominale à l'aide d'un écarteur autostatique. Ensuite, retirer les entrailles en haut et à gauche du rat. Enveloppez-les dans un endroit chaud, de la gaze imbibée de solution saline.
8. Exposer l'aorte abdominale IVC et en disséquant fortement à travers la re sus-jacentetro-péritonéale graisse.
9. Avoir une pince de vaisseau courbe disponible et prêt.
10. Circonférence libérer la VCI et l'aorte proximale et distale et les encercler avec 4-0 cravates en soie. Il devrait y avoir environ 2 - 3 cm d'espace entre ces sites.
11. Appliquer soigneusement la pince de vaisseau courbe, veiller à ce qu'une part suffisante des deux IVC et l'aorte sont exposés ci-dessus les mâchoires de la pince.
12. Faire une incision dans la paroi antérieure de la veine cave inférieure avec une aiguille 25 G raccordée à une seringue de 1 ml rempli de solution saline. Elargir l'incision avec des ciseaux de Potts pour correspondre à la longueur du donneur IVC orifice.
13. Retirer la greffe cœur-poumon de son récipient et débrancher de cardioplégie. Placer le greffon dans l'abdomen du destinataire dans une position optimale pour effectuer l'anastomose veineuse.
    NOTE: La greffe cœur-poumon sera finalement orienté légèrement en oblique, avec le sommet pointant vers l'abdomen de quadrant inférieur gauche.
14. Fixez le talonet bouts de chaussures de l'anastomose avec 9-0 suture en nylon. Faire un nœud sécurisé à chaque extrémité, laissant l'aiguille fixée à un long bras de suture, et une courte fin de suture d'être lié à plus tard. Administrer une dose de cardioplégie.
15. En exécutant la mode, complète la moitié de la ligne de suture et une cravate au bras opposées de suture courte. Administrer une dose de cardioplégie.
16. Remplissez l'autre moitié de la ligne de suture et l'attacher vers le bas. L'anastomose veineuse est terminée. Administrer une dose de cardioplégie
17. Orientez la greffe cœur-poumon avec sommet pointant du cœur vers l'abdomen de quadrant inférieur gauche. Assurez-vous que l'anastomose veineuse ne soit pas plié ou tordu.
18. Évaluer la longueur de l'aorte des donateurs qui sera nécessaire pour atteindre l'aorte bénéficiaire, le maintien à la fois IVC et anastomoses aortiques dans des configurations sans tension et non vrillées.
19. Diviser l'aorte descendante (distal par rapport au artère sous-clavière gauche) avec une paire de ciseaux à iris.
20. Faire une incision, dans la paroi antérieure de l'aorte de destinataire avec une aiguille 25 G raccordée à une seringue de 1 ml rempli de solution saline. Elargir l'incision avec des ciseaux de Potts pour correspondre à la longueur de l'orifice aortique de donneur.
21. Ancrer la pointe (de face supérieure) de l'aorte donneur au receveur aorte en utilisant une suture 9-0 en nylon. Ensuite, passer l'aiguille à la face médiale de l'aorte et remplir la moitié de l'anastomose dans la gestion de la mode.
22. Au talon de l'anastomose aortique, inverser l'orientation de la ligne de suture (une transition dans le sens de la couture), et compléter la moitié latérale de l'anastomose dans la gestion de la mode.
23. Lentement retirer le cathéter IV dans le SVC, et ligaturer le SVC avec une pince chirurgicale.
24. De l'air de l'aorte en localisant l'artère carotide commune non écrêté gauche. Maintenez l'artère ouverte, dans une position verticale qui permet à l'air d'être évacué librement.
25. Brièvement ouvrir les mâchoires de la pince du vaisseau courbé et permettre à l'artère carotide à saigner (de-air) pour les 2 - 3 sec. Re-appliquer la pince de navire.
26. Appliquer une pince chirurgicale à l'artère carotide. Retirer la pince de vaisseau courbe.
27. Vérifiez saignements au niveau des lignes de suture. Le cas échéant, appliquer une compression douce avec de la gaze chirurgicale ou la réparation d'une longueur de 9-0 suture en nylon (selon la gravité de l'hémorragie).
28. Le cœur d'un donneur devrait reprendre en battant en quelques minutes.
29. Portez une attention particulière aux signes vitaux du destinataire, la profondeur de l'anesthésie, de réanimation et administrer le volume au besoin.
30. Selon les paramètres expérimentaux, soit fermer l'abdomen de l'animal et laissez-le se remettre de l'anesthésie, ou de préparer l'animal pour l'évaluation cardiovasculaire.
    NOTE: Exemples d'évaluation de greffe comprennent des mesures in vivo de l'hémodynamique fonction de la charge et indépendant de la charge, des mesures in vitro de la fonction dans Langendorff et les modes de travail, et cardiaques (en chirurgie de survie) ou échocardiographiques enquêtes IRM.
31. Aufin des expériences terminaux aiguës, les animaux sont euthanasiés par exsanguination.

Résultats

La technique de HAHLT décrit ci-dessus est très technique et nécessite une attention particulière aux détails. Tableau 1 met en évidence certains des principaux facteurs associés à la réussite par rapport procédures infructueuses, et peuvent être utilisées comme un guide pour le dépannage de difficultés techniques.

Après l'aorte du destinataire est desserré, les artères coronaires greffés doivent être considérées à se remplir de sang oxygéné. En conséquence, le myocarde ...

Discussion

Le succès de la technique décrite ici est fondée sur plusieurs facteurs. Clé d'entre eux sera d'assurer la stabilité des deux animaux donateurs et bénéficiaires, en adoptant la technique opératoire méticuleuse qui est sûr et associé avec un minimum de perte de sang, assurant un arrêt cardioplégique complète avec refroidissement de greffe uniforme, minimisant le temps ischémique totale, et suffisamment dé-aérer la greffe. Comme l'a reconnu ci-dessus, la complexité technique de la technique est sa limitation e...

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Celsior Cardioplegic Soution	Genzyme		La solution est conservée sur de la glace tout au long de la procédure. Nous préparons notre propre solution, avec de légères modifications.
Ventilateur de rongeur	Appareil Harvard	Modèle 683
Moniteur de signes vitaux	Nonin	Modèle 9847V	Affiche SpO2 et fréquence cardiaque.
Canules IV	Jelco	3063	24 - 26 G x 3/4" canules.
Tube IV	CareFusion	MP9259-C	Tube de raccordement de courte longueur (18 cm).
Pinces chirurgicales	Teleflex Medical	001204	Clips de ligature en titane Horizon.
Sutures	Ethicon, Sharpoint	LA54G, moulinet en soie AK-0107	3-0 et suture prolène 9-0 (à un bras, aiguille DR5).
		Les instruments utilisés	sont génériques et peuvent être achetés auprès de n’importe quelle entreprise de fournitures chirurgicales.