Method Article

Techniques pour l'analyse des vésicules extracellulaire par cytométrie en flux

DOI:

10.3791/52484

March 17th, 2015

In This Article

Summary

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De nombreux procédés existent pour la mesure de vésicules extracellulaires (VE) à l'aide de la cytométrie de flux (FCM). Plusieurs aspects doivent être considérés au moment de déterminer la méthode la plus appropriée à utiliser. Deux protocoles de mesure pour les véhicules électriques sont présentés, en utilisant soit la détection individu ou une approche à base de billes.

Abstract

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Extracellulaire vésicules (VE) sont de petites vésicules membranaires dérivés trouvés dans les fluides corporels qui sont très impliqués dans la communication cellulaire et aident à réguler un large éventail de processus biologiques. Analyse des véhicules électriques en utilisant la cytométrie de flux (FCM) a été notoirement difficile en raison de leur petite taille et le manque de populations distinctes positifs pour les marqueurs d'intérêt. Méthodes d'analyse des EV, alors considérablement améliorée au cours de la dernière décennie, sont encore un travail en cours. Malheureusement, il n'y a pas de one-size-fits-all protocole, et plusieurs aspects doivent être considérés au moment de déterminer la méthode la plus appropriée à utiliser. Présenté voici plusieurs techniques différentes pour les véhicules électriques de traitement et deux protocoles d'analyse véhicules électriques en utilisant soit la détection individu ou une approche à base de billes. Les méthodes décrites ici vont aider à éliminer les agrégats d'anticorps trouve couramment dans les préparations commerciales, l'augmentation du rapport signal-bruit, et les portes de réglage dans un f rationnelleashion qui minimise la détection de la fluorescence de fond. Le premier protocole utilise une méthode de détection qui est particulièrement bien adapté pour l'analyse d'un volume élevé d'échantillons cliniques, tandis que le second protocole utilise une approche fondée sur bourrelet de capturer et de détecter les plus petits véhicules électriques et des exosomes.

Introduction

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Extracellulaire vésicules (VE) sont de petites vésicules membranaires dérivés trouvés dans les fluides corporels qui sont très impliqués dans la communication cellulaire et aident à réguler un large éventail de processus biologiques. Analyse des véhicules électriques en utilisant la cytométrie de flux (FCM) a été notoirement difficile en raison de leur petite taille et le manque de populations distinctes positifs pour les marqueurs d'intérêt. Méthodes d'analyse des EV, alors considérablement améliorée au cours de la dernière décennie, sont encore un travail en cours. Malheureusement, il n'y a pas de one-size-fits-all protocole, et plusieurs aspects doiven....

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Protocol

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REMARQUE: Les protocoles suivants ont été réalisées en conformité avec toutes les directives institutionnelles, nationales et internationales pour le bien-être humain. Tous les échantillons des sujets humains ont été testés dans un conseil d'examen institutionnel (IRB) -approuvé protocole et avec le consentement éclairé des sujets.

1. Méthode A: Méthode de détection individuelle

1.1) Le traitement de l'échantillon de sang / Isolation des véhicules électriques

  1. Prélever le sang du donneur / patient dans deux tubes de 10 ml en verre contenant 1,5 ml d'ACD-Solution A ou un autre anticoagulant a....

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Results

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La figure 1 présente le schéma général de traitement pour l'isolement et la détection des véhicules électriques en utilisant soit la méthode de la tringle ou de la méthode de détection utilisée. Détection individuelle des véhicules électriques utilisant FCM fonctionne bien pour l'analyse de grands véhicules électriques mais la plupart des cytomètres sont pas capables de détecter individuellement des particules aussi petites que les exosomes. Une approche basée bourrelet permet aux petits véhicules élect.......

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Discussion

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Deux protocoles différents pour l'isolement, le traitement et l'analyse des véhicules électriques ont été présentés, soit en utilisant une détection individuelle ou une approche à base de billes. Sélection de la méthode la plus appropriée à utiliser ne est pas toujours simple et nécessite une compréhension de l'échantillon testé ainsi que les sous-populations individuelles d'intérêt. En outre, la sensibilité du cytomètre utilisée pour l'acquisition doit être considéré au moment de choisir la méthode .......

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Disclosures

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Les auteurs ne ont aucun conflit d'intérêt à divulguer.

Acknowledgements

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Les auteurs tiennent à remercier Dale Hirschkorn de Blood Systems Research Institute pour son aide avec cytomètre de flux réglages de l'appareil. Ce travail a été soutenu par le NIH et accorde HL095470 U01 HL072268 et contrats DoD W81XWH-10-1-0023 et W81XWH-2-0028.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Cytomètre en flux de paillasse LSR IIBD Biosciences3-laser (20 mW Coherent Sapphire 488 nm bleu, 25 mW Coherent Vioflame 405 nm violet et 17 mW JDS Uniphase HeNe 633 nm rouge)
Logiciel FACS Diva  ;BD BiosciencesVersion PC 6.0
Logiciel FlowJo  ;Treestar USMac version 9.6.1 ou PC version 7.6.5
Sphero Rainbow Les particules fluorescentesBD Biosciences556298utilisées pour ajuster toutes les tensions de canal afin de maintenir la cohérence de l’intensité de fluorescence.
Particules fluorescentes Ultra RainbowSpherotechURFP-10-5utilisé en plus des billes Megamix-Plus SSC pour assurer la cohérence de la porte EV d’un lot à l’autre
Perles Megmix-Plus SSCBiocytex7803utilisées pour ajuster les tensions FSC et SSC afin de maintenir la cohérence entre les cycles. Peut également être utilisé pour surveiller le débit et ajuster le débit afin de s’assurer que le même débit est utilisé dans tous les cycles
AbC Anti-Mouse Bead KitLife TechnologiesA-10344utilisé pour les contrôles de compensation et les billes AbC négatives utilisées pour la méthode basée sur les billes
Nonidet P-40 Alternative (NP-40) (CAS 9016-45-9)Santa Cruz  ;SC-281108Utilisé dans la méthode de détection individuelle uniquement pour lyser des échantillons après la lecture initiale afin de les utiliser comme témoins négatifs. Le bouillon peut être dilué à 1:10 dans du PBS et conservé au réfrigérateur jusqu’à 1 mois.
BD TruCOUNT TubesBD Biosciences340334utilisé chaque fois que des concentrations absolues de VE sont nécessaires
Ultrafree-MC, GV 0,22 & micro ; m Unités de filtration centrifugeMillipore  ;UFC30GVNButilisé pour le lavage post-coloration des Evs et/ou le fractionnement des EV en fonction de la taille
Tubes de sang entier en verre Vacutainer ACD-ABD Biosciences364606
Tubes Facs 12x75 polystèneBD Biosciences352058
50 ml Réservoirs emballés individuellement.PhenixRR-50-1s Pointes
de pipette Green-Pak - 10 & micro ; lRaininGP-L10S Pointes
de pipette Green-Pak -200 & micro ; l  ;RaininGP-L250S
Vert -Pak pointes de pipette - 1 000 & micro ; l  ;RaininGP-L1000S
Stable Stack L300 pointes préstériliséesRaininSS-L300S
Pipet-Lite  ;XLS 8 Canaux LTS  ; Réglable  ; Entretoise  ;RaininLA8-300XLS Plaques de culture tissulaire
96 puitsE& K ScientificEK-20180
RPMI 1640 Milieux (sans Hepes)Installation de culture cellulaire UCSFCCFAE001milieux utilisés pour la méthode de détection à base
de billes Dulbeccos PBS D-PBS, sans CaMg, 0,2 & micro ; m filtréUCSF Cell Culture FacilityCCFAL003
Tube ultracentrifuge, paroi mince, ultra-transparentBECKMAN COULTER INC
PANEL I
CD3 PerCP-Cy5.5Biolegend3448082 µ ; l
CD14 APC-Cy7Biolegend3018202 & micro ; l
CD16 V450BD Biosciences5604742 & micro ; l
CD28 FITCbiolegend3029062 & micro ; l
CD152 APCBD Biosciences5558552 & micro ; l
CD19 A700Biolegend3022262 & micro ; l
PANEL II
CD41a PerCP-Cy5.5BD Biosciences3409302 & micro ; l
CD62L APCBiolegend3048102 & micro ; l
CD108 PE  ;BD Biosciences5528302 & micro ; l
CD235a FITCbiolegend3491042 & micro ; l
PANEL III
CD11b PE-Cy7Biolegend3013222 & micro ; l
CD62p APCBiolegend3049102 & micro ; l
CD66b PE  ;Biolegend3051062 & micro ; l
CD15 FITCexalphaX1496M5 & micro ; l
CD9 PEBiolegend555372
CD63 APCBiolegend353008
APC-Cy7 Ms IgG2a, &kappa ;Biolégende400230
344058

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Andaloussi, S., Mäger, I., Breakefield, X. O., Wood, M. J. A. Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nature Reviews Drug Discovery. 12 (5), 347-357 (2013).
  2. Sugawara, A., Nollet, K. E., Yajima, K., Saito, S., Ohto, H.

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Extracellular VesiclesFlow CytometryBead Based DetectionIndividual DetectionPlatelet Poor PlasmaAntibody StainingCytometer SetupFluorescent ParticlesPolystyrene BeadsForward Scatter

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