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Un microbienne aquatique métaprotéomique Workflow: à partir de cellules à tryptique peptides appropriés pour l'analyse comparative-spectrométrie de masse en tandem

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DOI :

10.3791/52827

15 septembre 2015

Dans cet article

Résumé

Ce protocole permet l’extraction et la concentration de protéines et d’ADN à partir de biomasse microbienne prélevée dans l’eau de mer, suivie de la génération de peptides tryptiques adaptés à l’analyse protéomique basée sur la spectrométrie de masse en tandem.

Résumé

Les technologies méta-omiques telles que la métagénomique, la métatranscriptomique et la métaprotéomique peuvent aider à la compréhension de la structure et du métabolisme des communautés microbiennes. Bien que puissante, la métagénomique ne peut à elle seule qu’élucider le potentiel fonctionnel. D’autre part, la métaprotéomique permet de décrire le métabolisme et la fonction exprimés in situ d’une communauté. Nous décrivons ici un protocole pour la lyse cellulaire, l’isolement des protéines et de l’ADN, ainsi que la digestion et l’extraction des peptides à partir de cellules microbiennes marines collectées sur une unité de filtre à cartouche (comme l’unité de filtre Sterivex) et conservées dans une solution de stabilisation d’ARN (comme RNAlater). Dans les études de protéomique basées sur la spectrométrie de masse, l’identification des peptides et des protéines est réalisée en comparant les spectres de masse en tandem peptidiques à une base de données de séquences nucléotidiques traduites. L’inclusion du métagénome d’un échantillon dans la base de données de recherche augmente le nombre de peptides et de protéines qui peuvent être identifiés à partir des spectres de masse. Par conséquent, dans ce protocole, l’ADN est isolé à partir du même filtre, qui peut être utilisé par la suite pour l’analyse métagénomique.

Introduction

Les microorganismes sont omniprésents et jouent des rôles essentiels dans les cycles biogéochimiques de la Terre 1. Actuellement, il existe de nombreuses approches moléculaires disponibles pour caractériser la structure de la communauté microbienne et la fonction. La plus courante est l'analyse du gène ARNr 16S séquences amplifié par PCR de l'ADN de l'environnement 2 - 4. Un inconvénient de l'analyse du gène ARNr 16S est qu'elle ne fournit des informations sur l'identité phylogénétique et structure de la communauté, avec peu d'informations sur la fonction métabolique. En revanche, les approches telles que la métagénom....

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Protocole

1. Préparer Réactifs

  1. Préparer la solution de SDS-extraction: 0,1 M Tris-HCl pH 7,5, 5% de glycerol, 10 mM d'EDTA et 1% de SDS. Filtre-stériliser en utilisant un filtre de 0,22 um et stocker à 4 ° C.
  2. Préparer les réactifs sous licence nécessaires au gel de Polyacrylamide.
    1. Préparer 1,5 M Tris-HCl pH 8,8. Filtre-stériliser en utilisant un filtre de 0,22 um et stocker à température ambiante.
    2. 0,5 M de Tris-HCl pH 6,8. Filtre-stériliser en utilisant un filtre de 0,22 um et stocker à température ambiante.
    3. Préparer 10% de SDS. Stériliser par filtration en utilisant un filtre de 0,22 um et stocker à température ambiante. <....

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Résultats

Comme une démonstration, nous avons effectué le protocole sur deux échantillons d'eau de mer prélevés dans la surface et le maximum de la chlorophylle de l'océan côtier dans le Nord canadien. En mer, l'eau de mer 7/6 L a été passé à travers un 3 um GF / D préfiltre, puis les cellules microbiennes ont été recueillis sur un filtre à cartouche de 0,22 pm en suivant le protocole de Walsh et al. 20. Les cellules ont été immédiatement stockés dans une solution de stabilisation de l'ARN jusq.......

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Discussion

Exemple de préservation est essentielle pour metaproteomic études et des travaux antérieurs ont démontré que la solution de stabilisation de l'ARN est un tampon de stockage pour stocker des cellules utile avant l'extraction des protéines 28. Idéalement, les échantillons seraient conservés in situ pour annuler des changements dans l'expression des protéines pendant la manipulation 33,34. En effet, in situ technologies d'échantillonnage et de fixation ont été dévelop.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Marcos Di Falco pour son expertise et ses conseils concernant la préparation des échantillons pour la nano-LC MS/MS ainsi que le Dr Zoran Minic de l’Université de Regina pour l’analyse LC MS/MS. Ces travaux ont été financés par le CRSNG (DG402214-2011) et le CRC (950-221184). D.C. a été soutenu par l’Institut Concordia sur l’eau, l’énergie et les systèmes durables et le FQRNT.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Sterivex -GP 0.22 &mu ; m unité de filtrationMilliporeSVGP01050Sampling
RNAlater Stabilization SolutionAmbionAM7021Sampling Tris
  ;Bio Basic77-86-1 ou TB0196-500GExtraction de protéines/ SDS PAGE gel
DTTSigma-AldrichD0632-1GExtraction
de protéines SDSBio Basic15-21-3Extraction de protéines/ SDS PAGE gel
EDTABio Basic6381-92-6Extraction de protéines
GlycérolFisher Scientific56-81-5Extraction
de protéines10K Amicon FilterMilliporeUFC801024Extraction de protéines
MéthanolSigma-Aldrich179337-4LPrécipitation de protéines
AcétoneFisher Scientific67-64-1Précipitation de protéines
MPC Réactif de précipitation de protéines EpicentermmP03750Précipitation d’ADN
2-PropanolFisher Scientific67-63-0Précipitation de l’ADN
Qubit dsDNA BR Kit de dosageLife TechnologiesQ32850Quantification de l’ADN
Kit de dosage des protéines QubitLife TechnologiesQ33211Quantification des protéines
SaccharoseBio Basic57-50-1SDS PAGE gel
TEMEDBio Rad161-0800SDS PAGE gel
APSBio Rad161-0700SDS PAGE gel
30 % AcrylamideBio Rad161-0158SDS PAGE gel
SimplyBlue SafeStainInvitrogenLC6060SDS PAGE gel
GlycineBio Rad161-0718SDS PAGE gel
B-mercaptoethanolBio Basic60-24-2SDS PAGE gel
Laemmli Tampon d’échantillonBio Rad161-0737SDS PAGE gel
Precision Plus Protein Kaléidoscope EchelleBio Rad161-0375EDUSDS PAGE gel
AcétonitrileVWRCABDH6044-4In-gel Trypsine digest
NH4HCO3Bio Basic1066-33-7In-gel Trypsine digest
DTTSigma-AldrichD0632-1GIn-gel Trypsine digest
Acide FormiqueSigma-AldrichF0507-500MLIn-gel Trypsine digest
Qualité HPLC H2OSigma-Aldrich270733-4LIn-gel Trypsine digest
IodoacétamideBio Basic144-48-9In-gel Trypsin digest
TrypsinePromega V5111In-gel Trypsin digest
Protein LoBind Tube 1,5 mlEppendorf22431081In-gel Trypsin digest
2 ml ROBO flacon 9 mmCandian Life ScienceVT009/C395SBDigestion de trypsine dans le gel
Insert PP BM, sans ressortCandian Life Science4025P-631Digestion de trypsine en gel

Références

  1. Madsen, E. L. Microorganisms and their roles in fundamental biogeochemical cycles. Current opinion in biotechnology. 22 (3), 456-464 (2011).
  2. El-Swais, H., Dunn, K. A., Bielawski, J. P., Li, W. K. W., Walsh, D. A. Seasona....

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Mots-clés

Extraction de prot inesisolement de l ADNg n ration de peptides tryptiquesfiltre ultracentrifugepr cipitation des prot inespr cipitation de l ADNdigestion tryptique in gelanalyse m tag nomique

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