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Article de méthode

La différenciation de la SH-SY5Y neuroblastome humain Cell Line

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DOI :

10.3791/53193

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17 février 2016

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Dans cet article

Résumé

Il est essentiel en neurobiologie et en neurovirologie de disposer d’un système in vitro fiable et reproductible qui serve de modèle translationnel pour ce qui se passe in vivo dans les neurones humains. Ce protocole décrit comment cultiver et différencier les cellules de neuroblastome humain SH-SY5Y en neurones viables pour une utilisation dans des applications in vitro.

Résumé

Disposer de systèmes in vivo et in vitro appropriés qui fournissent des modèles translationnels pour les maladies humaines fait partie intégrante de la recherche en neurobiologie et en neurosciences. Les modèles expérimentaux in vitro traditionnels utilisés en neurobiologie comprennent des cultures neuronales primaires de rats et de souris, des lignées cellulaires de neuroblastome comprenant des cellules B35 de rat et des cellules Neuro-2A de souris, des cellules PC12 de rat et des cultures de tranches à court terme. Bien que de nombreux chercheurs s’appuient sur ces modèles, ils n’ont pas de composante humaine et les effets expérimentaux observés pourraient être exclusifs aux espèces respectives et ne pas se produire de manière identique chez l’homme. De plus, bien que ces cellules soient des neurones, elles peuvent avoir des caryotypes instables, ce qui rend leur utilisation problématique pour les études de l’expression des gènes et les études reproductibles de la signalisation cellulaire. Il est donc important de développer des modèles plus cohérents de maladies neurologiques humaines.

La procédure suivante décrit une méthode facile à suivre et reproductible pour obtenir des cultures neuronales humaines homogènes et viables, en différenciant la lignée cellulaire de neuroblastome humain chromosomiquement stable, SH-SY5Y. Cette méthode intègre plusieurs méthodes1 à 4 décrites précédemment et est basée sur l’élimination séquentielle du sérum du milieu. La chronologie comprend une famine sérique progressive, avec l’introduction de protéines de matrice extracellulaire et de facteurs neurotrophiques. Cela permet aux neurones de se différencier, tandis que les cellules épithéliales sont sélectionnées, ce qui donne une culture neuronale homogène. Les résultats représentatifs démontrent la différenciation réussie des cellules de neuroblastome SH-SY5Y d’un phénotype cellulaire initial de type épithélial en un phénotype neuronal plus expansif et ramifié. Ce protocole offre un moyen fiable de générer des populations homogènes de cultures neuronales qui peuvent être utilisées pour des analyses biochimiques et moléculaires ultérieures, ce qui fournit aux chercheurs un modèle translationnel plus précis de l’infection et de la maladie humaines.

Introduction

La possibilité d'utiliser dans des systèmes modèles in vitro a grandement amélioré les domaines de la neurobiologie et les neurosciences. Cellules en culture constituent une plate-forme efficace pour caractériser la fonctionnalité des protéines et des mécanismes moléculaires spécifiques phénomènes sous-jacents, de comprendre la pathologie de la maladie et l'infection, et d'effectuer des évaluations préliminaires de dépistage de drogues. En neurobiologie, les principaux types de modèles de culture de cellules comprennent des cultures de neurones primaires dérivées de rat et la souris, et des lignées cellulaires de neuroblastome comme les cellules ....

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Protocole

1. Considérations générales

  1. Voir la Table des Matières / Équipement pour la liste des réactifs nécessaires. Effectuez toutes les étapes dans des conditions aseptiques strictes.
  2. Utiliser du sérum de veau fœtal inactivé par la chaleur (hiFBS) pour toutes les préparations de médias qui incluent FBS. Pour chauffer inactiver, chauffer 50 ml aliquote de FBS à 56 ° C pendant 30 min, en inversant toutes les 10 min (voir également le tableau 1).
    Remarque: Lors de FBS est utilisé sans inactivation par la chaleur, le phénotype de type epithelial progresse plus rapidement dans des cultures de cellules SH-SY5Y.

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Résultats

À l'heure actuelle, il existe de nombreux cas dans le domaine de la neurobiologie et neurovirologie où SH-SY5Y indifférenciées sont utilisés comme un modèle fonctionnel pour les neurones humains 27-36, et surtout, des cellules indifférenciées peuvent manquer phénotypes tels que optimale absorption virale 2 qui sont nécessaire pour une interprétation précise. Il est essentiel que l'utilisation de cellules SH-SY5Y ou tout autre système neuronale in vitro, les cellules se différencien.......

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Discussion

Le protocole ci-dessus fournit une méthode simple et reproductible pour produire des cultures de neurones humains homogènes et viables. Ce protocole utilise des techniques et des pratiques qui intègrent plusieurs méthodes publiées antérieurement 1-4 et a pour objectif de définir les meilleures pratiques de chacun. La différenciation des cellules SH-SY5Y repose sur la privation de sérum progressive; l'addition de l'acide rétinoïque, les facteurs neurotrophiques et les protéines de la matrice extracellu.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous sommes reconnaissants de la contribution de Yolanda Tafuri à l’optimisation des conditions de différenciation de SH-SY5Y, et du soutien de la Dre Lynn Enquist, dans le laboratoire de laquelle ce travail a été initié. Y. Tafuri a contribué aux images présentées à la figure 3. Ce travail a été soutenu par le NIH-NIAID Virus Pathogens Resource (ViPR), le Bioinformatics Resource Center (MLS et L. Enquist) et le K22 AI095384 (MLS).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
B-27ThermoFisher Scientific17504-044Voir Tableau 1 pour la préparation
Facteur neurotrophique dérivé du cerveau (BDNF)SigmaSRP3014 (10 &mu ; g)/B3795 (5 &mu ; g)Voir Tableau 1 pour la préparation
dibutyryl cyclique AMP (db-cAMP)SigmaD0627Voir Tableau 1 pour la préparation
DMSOATCC4-X-Minimum
Essential Medium Eagle (EMEM)SigmaM5650-Fetal
Bovin Serum (FBS)  ;HycloneSH30071.03Voir Tableau 1 pour la préparation
GlutamaxILife Technologies35050-061-Glutamine
HycloneSH30034.01-Chlorurede
potassium (KCl)Fisher ScientificBP366-1Voir Tableau 1 pour la préparation
la solution de matrice extracellulaire (ECM) MaxGelSigmaE0282Voir l’étape 11 du protocole
NeurobasalLife Technologies21103-049-Pénicilline
/Streptomycine (Pen/Strep)Life Technologies15140-122-Acide
rétinoïque (RA)SigmaR2625Doit être stocké dans l’obscurité à 4 ° ; C parce que ce réactif est sensible à la lumière
SH-SY5Y CellulesATCCCRL-2266-0,5
 % Trypsine + EDTALife Technologies15400-054-Falcon
35 mm TC DishesFalcon (A Corning Brand)353001-
de

Références

  1. Christensen, J., Steain, M., Slobedman, B., Abendroth, A. Differentiated Neuroblastoma Cells Provide a Highly Efficient Model for Studies of Productive Varicella-Zoster Virus Infection of Neuronal Cells. Journal of Virology. 85 (16), 8436-8442 (2011).
  2. Gimenez-Cassina, A., Lim, F., Diaz-Nido, J.

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Réimpressions et autorisations

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