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Article de méthode

Une cellule cancéreuse Spheroid test pour évaluer Invasion dans un Cadre 3D

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DOI :

10.3791/53409

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20 novembre 2015

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Dans cet article

Résumé

Cette méthode évalue l’invasion des cellules cancéreuses des sphéroïdes dans une matrice 3D environnante. Les sphéroïdes sont générés par la méthode de culture de gouttes suspendues, puis intégrés dans une matrice composée de matériaux de membrane basale et de collagène de type I. L’invasion des sphéroïdes est ensuite surveillée.

Résumé

La nature invasive des lignées cellulaires cancéreuses est censée être corrélée à leur potentiel métastatique. Cependant, la plupart des tests traditionnels n’examinent pas ces caractéristiques invasives dans un environnement tridimensionnel et les données qui en résultent souffrent d’une applicabilité biologique réduite. Ici, une approche est présentée pour visualiser la capacité invasive des lignées cellulaires dans un cadre physiologiquement pertinent. Le test d’invasion de sphéroïdes de cellules cancéreuses utilise d’abord la gravité pour générer des sphéroïdes dans des gouttes de milieu suspendues au couvercle d’une boîte de culture cellulaire. Ensuite, ces sphéroïdes sont intégrés dans une matrice 3D composée d’un mélange de matériaux de membrane basale et de collagène de type I. La sortie des cellules cancéreuses des sphéroïdes vers la matrice environnante est ensuite surveillée au fil du temps. La méthode décrite ici peut être modifiée pour examiner l’invasion après coculture de différents types de cellules, l’inclusion de médicaments/inhibiteurs ou l’altération des constituants de la matrice extracellulaire (MEC).

Introduction

Il est établi que la motilité des cellules cancéreuses est un facteur prédictif de potentiel métastatique, étant donné qu'un tel comportement facilite invasion à travers la membrane basale et l'entrée dans le système circulatoire 1. La plupart des recherches sur la motilité a mis l'accent sur la façon dont les cellules se comportent dans un (2D) paramètre à deux dimensions, mais il est en plus largement reconnu que le mouvement des cellules dans une matrice tridimensionnelle (3D) est plus représentatif de la façon dont ces mêmes cellules seront effectivement se comporter deux in vivo. Des systèmes de culture 3D de plus en pl....

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Protocole

1. Génération de Sphéroïdes

  1. Préparer une suspension de cellules isolées pour accrocher des cultures de goutte à détacher des cultures de cellules adhérentes cancer de ~ 70% de confluence en utilisant un WASH PBS suivi par l'exposition à la solution de trypsine-EDTA à 0,05%.
    1. Neutraliser la solution de trypsine avec des milieux de culture de cellules et compter les cellules en utilisant une aliquote de la suspension cellulaire. Remarque: Les milieux de culture cellulaire spécifique dépendra de la lignée cellulaire testée. Suivre ATCC recommandations de média, où le milieu de culture cellulaire est généralement DMEM + 10% de FBS. Plus d'infor....

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Résultats

En utilisant le dosage d'invasion sphéroïde (figure 1), un panel de lignées cellulaires du cancer a été testé pour leur aptitude à former des sphéroïdes, ainsi que pour la quantité de sortie de la cellule exposée après l'implantation dans une matrice 3D constitué de matériaux de membrane de sous-sol et de collagène de type I (Tableau 1). Ces résultats démontrent que chaque lignée cellulaire de cancer va créer sphéroïdes bien formés, où les lignes de cellules possédant une morpho.......

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Discussion

Cette étude a évalué la performance d'un panel de lignées cellulaires cancéreuses dans un test d'invasion sphéroïde (tableau 1). En règle générale, nous constatons que la formation sphéroïde est renforcée dans les plus lignées de cellules épithéliales prospectifs, où la présence de jonctions cellule-cellule favorise la formation d'une architecture sphéroïde-like. Connus lignes de cellules qui ont subi une transition épithélio-mésenchymateuse, comme MDA-MB-231 cellules ne forment pas des sphé.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Pris en charge par le NIH subventions P30 CA051008 et CA009686 T32 (ATR).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Matrigel Facteur de croissance réduitCorningCB-40234
Collagène de type I, queue de rat, 100 mgMillipore08-115
DMEMLife Technologies11995-065
RPMI 1640 Moyen  ;Life Technologies11875-093
PBSLife Technologies10010-023
0,05 % Trypsine-EDTALife Technologies25300-054
Sérum fœtal de bovin, inactivé à la chaleurOmega ScientificFB-12
100 mm Plats traités TCCorning Incorporated430167
24 puits TC Plaques traitéesNEST Biotechnlologie702001
inversé Olympus IX-71
Les lignées cellulaires ont été maintenues en DMEM + 10 % FBS, avec l’attente de cellules BT-474 et LNCaP, qui ont été maintenues en RPMI + 10 % FBS.
microscope

Références

  1. Chambers, A. F., Groom, A. C., MacDonald, I. C. Metastasis: Dissemination and growth of cancer cells in metastatic sites. Nat Rev. Cancer. 2 (8), (2002).
  2. Schmeichel, K. L., Bissell, M. J. Modeling tissue-specific signaling and organ function in three dimensions.

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Réimpressions et autorisations

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