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Article de méthode

CRISPR Génération / cas9 Mediated monoallélique Suppressions pour étudier la fonction Enhancer dans souris cellules souches embryonnaires

12.5K vues

DOI :

10.3791/53552

2 avril 2016

Dans cet article

Résumé

La meilleure approche de la validation expérimentale de l’activité de l’amplificateur est l’analyse de perte de fonction. Voici un protocole efficace qui utilise la délétion médiée par CRISPR/Cas9 pour étudier la régulation de la transcription des gènes spécifique de l’allèle dans les cellules ES F1 qui contiennent un génome hybride (Mus musculus129 x Mus castaneus).

Résumé

Les amplificateurs contrôlent l’identité cellulaire en régulant l’expression génique spécifique au tissu d’une manière indépendante de la position et de l’orientation. Ces amplificateurs sont souvent situés distalement du gène régulé dans les régions intergéniques ou même dans le corps d’un autre gène. La nature indépendante de la position de l’activité des amplificateurs rend difficile l’appariement des amplificateurs avec les gènes qu’ils régulent. La délétion d’une région d’amplification fournit une preuve directe de l’activité d’un amplificateur et constitue l’étalon-or pour révéler le rôle d’un amplificateur dans la transcription d’un gène endogène. Les méthodes conventionnelles de délétion basées sur la recombinaison homologue ont été dépassées par les progrès récents de la technologie d’édition du génome qui permettent des modifications rapides et précisément localisées des génomes de nombreux organismes modèles. L’édition du génome médiée par CRISPR/Cas9 peut être utilisée pour manipuler le génome de nombreux types de cellules et d’organismes rapidement et à moindre coût, en raison de la facilité avec laquelle Cas9 peut être ciblé sur le génome par un ARN guide à partir d’un plasmide d’expression sur mesure. La délétion homozygote d’éléments régulateurs géniques essentiels peut conduire à la létalité ou à l’altération du phénotype cellulaire, tandis que la délétion monoallélique des amplificateurs transcriptionnels permet d’étudier la régulation cis de l’expression génique sans ce problème de confusion. Voici un protocole pour la délétion médiée par CRISPR/Cas9 dans les cellules souches embryonnaires (ES) de souris F1 (Mus musculus129 x Mus castaneus). La délétion, le criblage et l’analyse de l’expression monoallélique sont facilités par les polymorphismes nucléotidiques simples (SNP) entre les deux allèles qui se produisent en moyenne tous les 125 pb dans ces cellules.

Introduction

Des éléments de régulation transcriptionnelle sont critiques pour réglage fin spatio-temporelle de l' expression des gènes au cours du développement 1 et la modification de ces éléments peut entraîner une maladie due à l' expression génique aberrante 2. De nombreuses régions associées à des maladies identifiées par le génome des études d'association sont larges dans les régions non codantes et présentent des caractéristiques d'amplificateurs de transcription 3-4. L' identification des amplificateurs et les harmoniser avec les gènes qu'ils régulent est compliqué car ils sont souvent situés à plusieurs kilobases ....

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Protocole

1. Concevoir et construire l'gARN

  1. Pour supprimer les régions activatrices transcriptionnelles utilisent deux ARNg, une 5 'et une 3' de la région d'intérêt. Utilisez la piste de UCSC de la souris du navigateur du génome généré par le laboratoire Zhang pour identifier des séquences uniques gARN (http://www.genome-engineering.org 15). Vérifiez ensuite ces ARNg et leur PAM adjacent pour les SNP et indels en utilisant des outils en ligne fournis par l'Institut Sanger (www.sanger.ac.uk/sanger/Mouse_SnpViewer/rel-1211) 27-28. Pour cibler les deux allèles avec une efficacité égale, éviter gARN séquences / PAM qui contienne....

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Résultats

Le protocole décrit ici utilise des cellules ES F1 pour étudier cis - régulation de l' expression génique dans les cellules amplificatrices supprimé monoalléliques générés en utilisant CRISPR / cas9 édition du génome (Figure 1). Le gARN et la conception de l'amorce spécifique d'allèle pour le génotypage et l'expression génique sont les facteurs clés de cette approche. Chaque ensemble d'amorces spécifiques de l'allèle doit être validé par .......

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Discussion

CRISPR / cas9 technologie d'édition du génome médiation fournit une méthode simple, rapide et peu coûteuse pour la modification du génome. La méthode détaillée ici pour générer et analyser monoallélique suppression d'activateur pour la caractérisation fonctionnelle enhancer tire profit de SNP dans les cellules de souris F1. Les avantages de ce type d'approche sont: 1) les suppressions d'activateurs monoalléliques ne produisent pas des effets de confusion qui se produisent quand un activateur critique est.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ont lu les politiques de JoVE sur les conflits d'intérêts et ne pas avoir à divulguer les conflits.

Remerciements

Nous tenons à remercier tous les membres du laboratoire Mitchell pour les discussions utiles. Ces travaux ont été soutenus par les Instituts de recherche en santé du Canada, la Fondation canadienne pour l’innovation et le ministère de la Recherche et de l’Innovation de l’Ontario (subventions de fonctionnement et d’infrastructure détenues par JAM).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Phusion High-Fidelity DNA PolymeraseNEBM0530SADN polymérase haute fidélité utilisée dans l’assemblage de l’ARNg
Gibson Assembly Master MixNEBE2611L
gRNA_Cloning VectorAddgene41824Une séquence cible est clonée dans ce vecteur pour créer le plasmide d’ARNg
pCas9_GFPAddgene44719SpCas9 optimisé pour les codons et EGFP plasmide de co-expression
AflIINEBR0520S
EcoRINEBR3101S
Neon Transfection System 100 µ ; L KitLife TechnologiesMPK10096Technologie de transfection microporatrice
prepGEMZyGEMPT10500réactif d’extraction d’ADN génomique
Nucleo Spin Gel & PCR Clean-upMacherey-Nagel740609.5
Mini-Kit Plasmide Haute VitesseGeneaidPD300
Maxi Kit Plasmide Sans Endotoxine  ;GeneaidPME25
SYBR select mix pour CFXLife Technologies4472942réactif qPCR
iScript kit de synthèse d’ADNcBio-rad170-8891Réactif de transcription inverse
0,25 % Trypsine avec EDTALife Technologies25200072
PBS sans Ca/Mg2+SigmaD8537
0,5 M EDTABioshopEDT111.500
HBSSLife Technologies14175095
1 M HEPESLife Technologies13630080
BSA fraction V (7,5 %)Life Technologies15260037
Max Efficiency DH5&alpha ; cellules compétentesInvitrogen18258012
FBSES qualifiéesFBS est soumis à un test préalable sur des cellules ES de souris pour la pluripotence
DMSOSigmaD2650
GlutamaxInvitrogen35050
DMEMLife Technologies11960069
Pencillin/StreptomycinInvitrogen15140
Pyruvate de sodiumInvitrogen11360
Non essentiel acide aminoacideInvitrogen11140
&beta ;-mercaptoéthanolSigmaM7522
Plaque 96 puitsSarstedt83.3924
Ruban d’étanchéitéSarstedt95.1994
CoolCell LXBiocisionBCS-405récipient de congélation cellulaire sans alcool
CHIR99021Biovision1748-5Inhibiteur pour la culture cellulaire F1 ES
PD0325901Invivogeninh-pd32Inhibiteur pour la culture cellulaire F1
ES LIFHimiconESG1107Inhibiteur pour la culture cellulaire F1 ES

Références

  1. Sagai, T., Hosoya, M., Mizushina, Y., Tamura, M., Shiroishi, T. Elimination of a long-range cis-regulatory module causes complete loss of limb-specific Shh expression and truncation of the mouse limb. Development. 132 (4), 797-803 (2005).
  2. Kleinjan, D. A., Lettice, L. A.

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

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