Method Article

Une méthode rapide et efficace pour la purification des cellules endoderme Généré à partir d'embryons humains Cellules souches

DOI:

10.3791/53655

March 3rd, 2016

In This Article

Summary

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Ici, nous décrivons une méthode pour la purification de cellules embryonnaires humaines différenciées souches qui se sont engagés envers l'endoderme définitif pour l'amélioration des applications en aval et d'autres différenciations.

Abstract

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Les capacités de différenciation des cellules souches pluripotentes telles que des cellules souches embryonnaires (CSE) permettent une application thérapeutique potentielle pour les thérapies de remplacement cellulaire. Terminalement types de cellules différenciées peuvent être utilisés pour le traitement de diverses maladies dégénératives. In vitro la différenciation de ces cellules vers les tissus du poumon, du foie et du pancréas nécessite dans un premier temps la production de cellules endodermiques définitives. Cette étape est limitante pour une différenciation plus poussée vers des types de cellules matures en phase terminale comme les cellules bêta productrices d'insuline, les hépatocytes ou d'autres types de cellules endoderme dérivés. Les cellules qui se sont engagés envers la lignée endoderme expriment fortement une multitude de facteurs de transcription tels que FOXA2, Sox17, HNF1B, membres de la famille GATA, et le récepteur de surface CXCR4. Cependant, les protocoles de différenciation sont rarement efficaces à 100%. Ici, nous décrivons un procédé pour la purification d'une population de cellules CXCR4 + après différenciationdans le DE en utilisant des microbilles magnétiques. Cette purification élimine en outre des cellules de lignées indésirables. Le procédé de purification douce est rapide et fiable et peut être utilisé pour améliorer les applications en aval et différenciations.

Introduction

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Les cellules souches pluripotentes telles que des cellules souches embryonnaires (CSE) ont la capacité de se différencier en pratiquement tout type de corps humain de la cellule. Ainsi, les protocoles de différenciation in vitro peuvent être utilisés pour produire de nombreux types cellulaires adultes , tels que des cardiomyocytes 1, 2, hépatocytes cellules bêta 3, 4 épithéliale pulmonaire ou des cellules neuronales 5. Cela rend CES un outil précieux pour le traitement potentiel de diverses maladies dégénératives 3.

La différenciation in vitro des CES vers....

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Protocol

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1. Différenciation des ESC humain vers le Endoderme Definitive

  1. Cultiver des cellules souches embryonnaires humaines (CES) dans un incubateur à 37 ° C et 5% de CO 2.
  2. Enduire un nouveau 6 puits plaque de culture cellulaire avec 1 ml d'une matrice de membrane basale et incuber la culture-ware pendant au moins 30 min à température ambiante. Pour plus de détails s'il vous plaît tourner vers les instructions du fabricant respectif.
  3. Vérifiez que les CES de l' homme de culture ont atteint 80% -90% de confluence sous le microscope à l' aide d' un faible grossissement (par exemple, 4X). Aspirer le milieu de....

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Results

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lors de la différenciation CES subissent des changements drastiques dans le gène et l' expression de la protéine. La figure 1 illustre les gènes marqueurs typiques qui peuvent être utilisés pour vérifier une différenciation endoderme réussie. Les principales cibles pour une analyse d'expression génique sont CGC, FOXA2 et Sox17. Dans une analyse relative expression du gène particulier FOXA2 et Sox17 sont augm.......

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Discussion

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protocoles de différenciation utilisés actuellement aboutissent rarement à 100% de cellules différenciées. Pour des raisons qui restent à aborder certaines cellules résistent au processus de différenciation. En fonction de l'efficacité du protocole de différenciation utilisé et la propension de l'ESC aligner un certain nombre de cellules pluripotentes résiduelles sont couramment observée même après différenciation dans l'endoderme définitif. Ces cellules résiduelles peuvent affecter différenciations en aval .......

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Disclosures

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Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Acknowledgements

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L'assistance technique habile de Jasmin Kresse est grandement appréciée.

....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Lignée de cellules souches embryonnaires humaines Hues8Harvard Département de cellules souches et de biologieLignée cellulaire appropriée pour la génération d’endoderme
Lignée de cellules souches embryonnaires humaines Hes3ES Cell InternationalLignée cellulaire appropriée et robuste pour la génération d’endoderme
mTeSR1Stemcell Technologies5850Milieu de culture ESC
FCSBiowestS1860
Advanced RPMI 1640Life Technologies12633012
CD184 (CXCR4)-APC, humainMiltenyi Biotec130-098-357
Microbilles anti-APCMiltenyi Biotec130-090-855  ;
Séparateur OctoMACSMiltenyi Biotec130-042-109champ magnétique
Y-27632Selleck ChemicalsS1049inhibiteur de ROCK
CHIR-99021Tocris Bioscience4423
Activin APeprotech120-14
réactif de dissociation cellulaire douceStemcell Technologies7174sans enzyme solution de passage, alternative : Trypsine/EDTA
Matrigel*Corning354277matrice de membrane basale
* résoudre et stocker dans des aliquotes à -80 ° ; C comme indiqué dans le manuel du fournisseur. Après utilisation, décongeler sur de la glace, diluer dans 25 ml de DMEM/F-12.
Ajouter 1 ml dans chaque puits d’une plaque à 6 puits et incuber pendant 45 min à température ambiante.
Retirer le matrigel et l’utiliser immédiatement.
MS ColumnsMiltenyi Biotec30-042-201
Séparateur MACSMiltenyi Biotec130-042-302
Human FOXA2 FW
gggagcggtgaagatgga
Life TechnologiesNA
Human FOXA2 REV
tcatgttgctcggaggagta
Life Technologies
Human GSC FW
gaggagaaagtggaggtgtgtt
Life Technologies
Humain GSC REV
ctctgatgaggaccgcttctg
Life Technologies
SOX17 TaqMan essaiApplied BiosystemsHs00751752_s1
Humain SOX7 FW
gatgctgggaaagtcgtggaagg
Life Technologies
Humain SOX7 REV
tgcgcggccggtacttgtag
Life Technologies
Humain POU5F1 FW
cttgctgcagaagtgggtggagg
Life Technologies
Humain POU5F1 REV
ctgcagtgtgtttcgggca
Life Technologies
Humain Nanog FW
ccgagggcagacatcatcc
Life Technologies
Humain Nanog REV
ccatccactgccacatcttct
Life Technologies
Humain TBP FW
caa cag cct gcc acc tta cgc tc
Life Technologies
Human TBP REV
agg ctg tgg ggt cag tcc agt g
Life Technologies
Human TUBA1A FW
ggc agt gtt tgt aga ctt gga acc c
Life Technologies
Human TUBA1A REV
tgt gat aag ttg ctc agg gtg gaa g
Life Technologies
Human G6PD FW
agg ccg tca cca aga aca ttc a
Life Technologies
Human G6PD REV
cga tga tgc ggt tcc agc cta t
Life Technologies
Anti-SOX2Santa Cruz Biotechnologysc-17320
Anti-FOXA2MerckMillipore07-633
Anti-SOX17R& D SystemsAF1924
régénérative

References

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sharma, A., Li, G., Rajarajan, K., Hamaguchi, R., Burridge, P. W., Wu, S. M. Derivation of Highly Purified Cardiomyocytes from Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Small Molecule-modulated Differentiation and Subsequent Glucose Starvation. J Vis Exp. (97), (2015).
  2. Sgodda, M., et al.

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Endoderm Cell PurificationHuman Embryonic Stem CellsCXCR4 Positive CellsMagnetic Bead SeparationDefinitive Endoderm DifferentiationFlow Cytometry AnalysisBasement Membrane CoatingROCK Inhibitor SupplementationCell Surface MarkerEndoderm Induction Medium

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