Article de méthode

Identification des conditions critiques pour Immunocoloration dans le puceron du pois embryons: L'augmentation de la perméabilité des tissus et la diminution de la coloration de fond

9.8K vues

DOI :

10.3791/53883

2 février 2016

Dans cet article

Résumé

Un protocole d’immunomarquage complet sur des embryons de pucerons est présenté, dans lequel les conditions critiques pour diminuer la coloration de fond et augmenter la perméabilité tissulaire sont abordées. Ces conditions sont spécifiquement développées pour la détection efficace de l’expression des protéines dans les tissus embryonnaires des pucerons.

Résumé

Le Acyrthosiphon pisum du puceron, avec un génome séquencé et la plasticité phénotypique abondante, est devenue un modèle émergent des études de génomique et de développement. Comme d'autres pucerons, A. Pisum propager rapidement par reproduction vivipare parthénogénétique, où les embryons se développent dans des chambres d'œufs dans une chaîne de montage dans le ovariole. Auparavant, nous avons établi une plate-forme robuste de l'ensemble de montage hybridation in situ permettant la détection de l'expression des ARNm dans les embryons de pucerons. Pour l'analyse de l'expression de la protéine, cependant, les protocoles établis pour immunocoloration les ovarioles de pucerons vivipares asexués n'a pas produit de résultats satisfaisants. Nous rapportons ici des conditions optimisées pour augmenter la perméabilité des tissus et la diminution de la coloration de fond, qui étaient tous deux des problèmes lors de l'application des approches établies. Optimisations incluent: (1) l'incubation de la protéinase K (1 pg / ml, 10 min), qui a été trouvé f essentielleou la pénétration d'anticorps dans les embryons à moyen et pucerons en fin de ligne; (2) le remplacement de sérum-albumine de sérum de chèvre / bovin normal avec un réactif de blocage fourni par un Digoxigénine (DIG) à base de jeu de tampons et (3) l'application de méthanol au lieu du peroxyde d'hydrogène (H 2 O 2) pour le blanchiment de peroxydase endogène; qui réduit de manière significative le bruit de fond dans les tissus de pucerons. Ces conditions critiques optimisés pour un marquage permettra une détection efficace des produits de gènes dans les embryons de A. Pisum et autres pucerons.

Introduction

Les pucerons sont des insectes hémiptères avec des petits (1-10 mm) corps mous. Ils se nourrissent de plantes en suçant la sève de phloème pièces buccales perçants. En outre, ils comptent sur ​​une bactérie endosymbiotique obligatoire, Buchnera aphidicola, pour synthétiser des acides aminés essentiels qui sont déficients dans le régime alimentaire de la sève du phloème. Les pucerons ont une histoire de vie complexe qui comprend la reproduction vivipare parthénogénétique au printemps et en photopériode longue journée d'été et la reproduction ovipare sexuelle déclenchée par une photopériode de jours courts pendant laquelle ils pondent un ....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

1. Culture de pucerons

NOTE:. La souche de laboratoire de l'parthénogénétique vivipare puceron du pois A pisum été initialement collectées dans le centre de Taiwan et a été élevé sur les plantes hôtes (le sativum jardin pois Pisum ou la fève Vicia faba) sous photopériode de jours longs pour plus de 300 générations (une génération: ~ 10 jours).

  1. Germination des graines
    1. Faire tremper les graines de plantes hôtes dans l'eau du robinet pendant 3-5 jours à température ambiante. Remplir avec de l'eau fraîche une fois par jour.
      NOTE: Vous pouvez également mettre des graines de plantes....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Dans cette étude, nous avons effectué tout le montage immunocoloration sur des embryons de pucerons du pois asexuées (figure 1A). Ces femelles produisent progéniture par parthénogenèse et vivipares. Ces embryons femelles se développent dans des chambres d'œufs des tubules ovariens (de ovarioles) (figure 1B et figure 2A). Avant la microscopie, les ovarioles disséqués sont les cibles de coloration; Toutefois, la séparation des chambres.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Nous avons identifié des conditions optimales critiques immunocoloration succès dans le puceron du pois A. Pisum, un organisme modèle émergent des études de génomique et de développement 3,15. Des conditions optimisées pour augmenter la perméabilité du tissu et réduire la coloration de fond amélioré l'intensité et la spécificité des signaux. Ils diffèrent des protocoles standard pour immunocoloration dans d'autres modèles animaux dans les étapes de création de pores dans les membrane.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous sommes reconnaissants à Chau-Ti Ting (Fly Core à Taïwan) pour avoir fourni l’anticorps monoclonal 4D9, à Technology Commons (TechComm) du College of Life Science NTU pour la microscopie confocale, à Hsiao-Ling Lu pour la relecture du manuscrit et à Chen-yo Chung pour son aide au tournage. CC remercie tout particulièrement Charles E. Cook pour ses suggestions stratégiques et pour l’édition critique du manuscrit. Ce travail a été soutenu par le ministère de la Science et de la Technologie (101-2313-B-002-059-MY3 et 104-2313-B-002-022-MY3 pour GWL et CC), et l’Université nationale de Taiwan (NTU-CESRP 101R4602D3 pour CC ; 103R4000 pour GWL).

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
30 % d’hydrogène perxidase (H2O2)Sigma-Aldrich18304Pour le blanchiment de la peroxydase endogène des embryons.
4' 6-diamidino-2-phényl-indole dichlorhydrate (DAPI)Sigma-AldrichD9542Pour le marquage de l’ADN double brin. TOXIQUE. Porter des gants, distribuer dans de petites aliquotes et feeze pour minimiser l’exposition
4D9 anticorps monoclonal de souris anti-engrêlée/invectivée Étudesde développement banque d’hybridomesAB_528224Pour l’étiquetage des segments en développement de l’embryon.
Anticorps polyclonal de lapin ApVas1Notre laboratoireN/APour le marquage de la protéine Vas1 spécifique de la lignée germinale du puceron dans les embryons. Cet anticorps a été fabriqué par notre laboratoire.
Austerlitz Épingles à insectesENTOMORAVIAN/APour séparer chaque chambre d’œuf d’un ovariole. Taille 000, ÉMAILLÉ NOIR.  ;
Albumine sérique bovine (BSA)Sigma-Aldrich9048-46-8Pour bloquer la liaison non spécifique des anticorps.
Appareil photo connecté au microscope composéCanonEOS 5DPour la photographie d’embryons de pucerons.
Plateau colorimétrique à 8 cellulesKartell Labware357Pour développer le signal de coloration des embryons de pucerons. Diamètre 95 x 57 mm, profondeur de la cellule 2 mm.
Microscope composé avec optique DICLeica MicrosystemsDMRPour la photographie d’embryons de pucerons montés sur les lames.
DIG Wash and Block Buffer SetSigma-Aldrich (Roche 11585762001Pour bloquer la liaison non spécifique des anticorps. Nous avons dilué la solution de blocage 10x en 1x comme réactif de blocage.
PinceIdeal-tekN/APour la dissection des ovaires des pucerons. Pièce du fabricant n° 5 : 5 SA.
Compte-gouttes en verreN/AN/APour le transfert des ovaires des pucerons de la plaque à splot aux tubes. 150 mm de longueur totale et 5 3/4" de longueur de pointe.
GlycérolSigma-AldrichG5516Pour l’élimination des embryons de pucerons et le montage.
GlycineBioshopN/APour bloquer l’activité enzymatique de la protéinase K (PK).
Chèvre anti-souris IgG conjuguée Alexa Fluor 488InvitrogenA11017Pour la détection de l’anticorps primaire de la souris.
Chèvre anti-lapin IgG conjuguée Alexa Fluor 633InvitrogenA21072Pour la détection de l’anticorps primaire du lapin.
Mélangeur IntelliELMI équipement de laboratoireRM-2MPour améliorer la réaction globale des réactifs avec les ovaires.
Microscopie confocale à balayage laserLeica MicrosystemsSP5Pour la photographie d’embryons de pucerons montés sur les lames avec étiquette florécente.
méthanol  ;Burdick et JacksonAH2304Pour le blanchiment de la peroxydase endogène des embryons.
Lames de microscopeThermo scientific10143560Pour le montage des embryons. Chants rectifiés SUPERFROST, env. 76 x 26 millimètres.
Microscope Lunettes de protectionMarienfeld0101030Pour le montage des embryons sur les lames. Taille 18 x 18 mm. Epaisseur n° 1 (0,13 à 0,16 mm)
Microscope Lunettes de protectionMarienfeld0101050Pour le montage des embryons sur les lames. Taille 22 x 22 mm. Epaisseur n° 1 (0,13 à 0,16 mm)
monoclonal anti-alphatubuline de souris (DM1A)Santa Cruz Biotechnologysc-32293Pour le marquage de la distribution de l’alpha-tubuline des cellules.
Vernis à onglesN/AN/APour sceller les lamelles sur les lames.
Sérum normal de chèvre (NGS)Sigma-AldrichG9023Pour bloquer la liaison non spécifique des anticorps.
Paraformaldéhyde (PFA)VWRMK262159Pour la fixation des ovaires des pucerons.
Phalloidin-TRITCSigma-AldrichP1951Pour le marquage de la distribution de l’actine F sur les embryons.
Solution saline tamponnée au phosphate (PBS)N/AN/AComme solution isotonique pour les ovaires de pucerons.
Compte-gouttes en plastiqueN/AN/APour le transfert des ovaires des pucerons du tube au plateau cellulaire. Contenance 3 ml.
Protéinase KMerck124678Pour créer des pores (poinçonnage) sur la membrane cellulaire et faciliter l’accès des anticorps.
Plaque spot en pyrexN/AN/APour la dissection et les réactions de couleur des ovaires des pucerons sous microscopie. Chaque cavité d’un diamètre de 22 mm et  ; profondeur 7 mm.
SIGMAFAST 3,3'-diaminobenzidine (DAB) comprimés  ;Sigma-AldrichD4168Pour le développement de signaux substrats. Aussi appelé ensemble de comprimés de substrat de peroxydase DAB.
StéréomicroscopeLeica MicrosystemsEZ4Pour la dissection et l’observation des ovaires de pucerons.
Triton-X 100Sigma-AldrichT8787Pour créer des pores (poinçonnage) sur la membrane cellulaire.  ;
VECTASHIELD Elite ABC Kit (Rabbit IgG)Laboratoires vectorielsPK-6101Pour l’amélioration du signal. Y compris d’anticorps secondaires IgG anti-lapin de chèvre biotinylés, de réactifs A et B.
VECTASHIELD Support de montageLaboratoires vectorielsH1000Pour l’élimination des embryons de pucerons et le montage.
anticorps

Références

  1. Blackman, R. L. Reproduction, cytogenetics and development. Aphids: their biology, natural enemies. Minks, A. K., Harrewijn, P. , Elsevier Press. Amsterdam. 163-195 (1987).
  2. Davis, G. K. Cyclical parthenogenesis and viviparity in aphids as evolutionary novelties. J. Exp. Zool. 318, 448-459 (2012).....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Protocole d immunomarquagetraitement la prot inase Kblanchiment au m thanolblocage bas sur le DIGdissection d ovariolesfixation au paraformald hydep n tration des anticorps

Articles connexes