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Article de méthode

In Vitro désassemblage du virus grippal A capsides par Centrifugation Gradient

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DOI :

10.3791/53909

27 mars 2016

Dans cet article

Résumé

Le désassemblage des noyaux du virus de la grippe A lors de l’entrée du virus dans les cellules hôtes est un processus en plusieurs étapes. Nous décrivons une méthode in vitro pour analyser les premiers stades du désenrobage viral. Dans cette approche, la centrifugation par gradient de vitesse est utilisée pour disséquer biochimiquement les étapes qui initient le dévoilement dans des conditions définies.

Résumé

Les processus moléculaires déclenchés par l’acide contrôlent étroitement l’entrée cellulaire de nombreux virus qui pénètrent par le système endocytaire. Dans le cas du virus de la grippe A (IAV), la fusion du virus avec la membrane endosomale ainsi que le désassemblage ultérieur de la capside virale, appelé désenrobage, sont régis par les conditions ioniques à l’intérieur des vésicules endocytaires. Les premières étapes du cycle de vie du virus sont difficiles à étudier car les endosomes ne sont pas directement accessibles expérimentalement, d’où la nécessité d’une approche in vitro. Nous décrivons ici une méthode basée sur la centrifugation par gradient de vitesse de virions purifiés à travers un gradient de glycérol à deux couches, qui permet d’analyser le noyau de l’IAV et sa stabilité. Le gradient contient un détergent non ionique (NP-40) dans sa couche inférieure pour éliminer la membrane virale par solubilisation lorsque le virus se sédimente vers le fond. À pH neutre, les carottes virales sont granulées sous forme de structures stables. Les principaux composants de base, la protéine matricielle (M1) et les ribonucléoprotéines virales (vRNP), peuvent être clairement identifiés dans la fraction granulaire par SDS-PAGE. La diminution du pH à 6,0 ou moins dans la couche inférieure élimine sélectivement M1 de la pastille, suivie de la libération de vRNP dans des conditions plus acides. Les bandes de protéines virales sur les gels colorés à Coomassie peuvent être soumises à une quantification densitométrique pour surveiller les états intermédiaires de désassemblage de l’IAV. Outre le pH, d’autres facteurs qui influencent la stabilité du noyau viral peuvent être évalués, tels que la concentration en sel et les facteurs de désenrobage viraux présumés, simplement en modifiant la couche de glycérol contenant du détergent en conséquence. L’ensemble de la technique présentée permet une analyse quantitative et hautement reproductible du déshabillage viral in vitro. Il peut être appliqué à d’autres virus enveloppés qui subissent des processus de désenrobage complexes.

Introduction

Le virus grippal A (IAV) est un virus enveloppé et appartient à la famille des Orthomyxoviridae. Ses gènes sont codés sur une, de sens négatif, segmenté et de génome à ARN simple brin. Chez l' homme, l' IAV provoque des infections respiratoires, qui se produisent dans les flambées épidémiques saisonnières et porte le potentiel de pandémies mondiales 1. Lors de la liaison à des résidus d'acide sialique sur la surface de la cellule hôte 2, IAV est internalisée par endocytose dépendante de la clathrine et indépendante de la clathrine voies 3-8. Le milieu acide (pH <5,5) dans les vacuoles d' endocytose déclenche u....

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Protocole

1. Préparation de Tampons et Solutions mères

  1. Préparer tampon TMN (MES 20 mM, Tris 30 mM et NaCl 100 mM) en dissolvant 470 mg Tris Hydrochloride, 390 mg MES hydrate et 580 mg de NaCl dans 80 ml ​​ddH 2 O. Régler le tampon à pH 7,4 et l' amener à un volume final de 100 ml avec ddH 2 O.
  2. Préparer trois solutions identiques de tampon 500 mM MES en dissolvant 9,76 g MES hydrate dans 80 ml ​​dH 2 O chacun. Ajuster les tampons à pH 5,8, 5,4 et 5,0 respectivement par titrage avec du NaOH concentré. Amener chaque tampon jusqu'à un volume final de 100 ml avec dH 2 O.
  3. Préparer deux solutions ident....

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Résultats

Comme déjà discuté, l'amorçage dans les endosomes est nécessaire pour rendre le noyau IAV décapsidation compétente. Protonation du noyau affaiblit l'interaction de M1 et vRNPs (composé de l'ARN viral, NP, et la polymérase PB1 complexe / PB2 / PA). Ce processus est lancé lorsque le virus entrant est exposé à un pH de 6,5 (ou inférieur) au début des endosomes (SEE) et continue jusqu'à ce que les fusibles de virus à un pH d'environ 5,0 à LEs.

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Discussion

capsides virales sont des complexes macromoléculaires métastables. Alors que l'assemblage de virions nécessite l'encapsidation et la condensation du génome du virus, l'initiation du prochain cycle de l'infection dépend de démontage de cette structure de capside compact. Les virus ont évolué pour exploiter divers mécanismes cellulaires pour contrôler le cycle de revêtement décapsidation, y compris des récepteurs cellulaires, des chaperons, des enzymes protéolytiques, des forces physiques fournies par les .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Yohei Yamauchi et Roberta Mancini pour nous fournir des réactifs. Le laboratoire AH a été soutenue par les réseaux de formation initiale Marie Curie (ITN), le Conseil européen de la recherche (CER), et par le Fonds national suisse (Sinergia).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
cOmplete&trade ;, comprimés inhibiteurs de protéase sans EDTASigma-Aldrich11873580001La solution mère peut être conservée à 2 à 8 ° ; C pendant 1 à 2 semaines
Acide acétique glacialMerck Millipore100063
Glycérol anhydre BioChemicaAppliChemA1123
Acide chlorhydriqueMerck Millipore100317
Aiguille d’injection longue (21  ; G, 9 cm, biseau ou extrémité émoussée)
MES hydrateSigma-AldrichM8250
MéthanolMerck Millipore106009
NP-40Sigma-AldrichI8896Maintenant disponible dans le commerce sous le nom d’IGEPAL® ; CA-630
NuPAGE 4-12 % Bis-Tris mini-gels, 10  ; puits, 1,0 mmLife TechnologiesNP0321
Tampon d’échantillon NuPAGE LDS (4x)Life TechnologiesNP0008
Tampon courant NuPAGE MOPS SDS (20x)Life TechnologiesNP0001
Bandes indicatrices de pH, pH 4,0-7,0Merck Millipore109542
QC Coloration colloïdale CoomassieBIO RAD1610803
Sodium chlorureMerck Millipore106406
hydroxyde de sodiumMerck Millipore106498
unité de filtration SteritopMerck MilliporeSCGPT05RE
SW41 Ti, ensemble de rotors d’ultracentrifugeuseBeckman Coulter331336
Thinwall, tubes de centrifugation ultra-transparents, 13,2 ml, 14 mm x 89 mmChlorhydrate de Beckman Coulter344059
Tris  ;AppliChemA1087
X31 Virus de la grippe A (H3N2), cultivé dans un œuf, liquide allantoïdien clarifiéVirapurFraîchement décongelé le 4 ° ; L

Références

  1. Taubenberger, J. K., Kash, J. C. Influenza Virus Evolution, Host Adaptation, and Pandemic Formation. Cell host & microbe. 7 (6), 440-451 (2010).
  2. Skehel, J. J., Wiley, D. C. Receptor binding and membrane fusion in virus entry: the influenza....

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Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Centrifugation sur gradient de vitessedésassemblage de la capside viralegradient de glycérolsolubilisation au NP-40déshabillage dépendant du pHanalyse par SDS-PAGEstabilité du cœur viralprotéine de matrice M1ribonucléoprotéines virales